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ISSN 373- 580 X
Bol. Soc. Argent. Bot. 27 (3-4):173-178. 1991
CLADOPHORA SERRANA (ULVOPHYCEAE, CHLOROPHYTA), UNA NUEVAESPECIE
DULCIACUICOLA HALLADA EN LA ARGENTINA
Por ELISA R. PARODI1 y EDUARDO J. CACERES2
Summary Cladophora serrana, (Ulvophyceae, Chlorohyta) a new
fresh water species found in Argentina.Ciadophora serrana nov. sp.
ot the south of the Province of Buenos Aires, Argentina, is
described andillustrated. Details of its life cycle are given. Life
history was found to be diplobiontic and isomorphic. Bothhaploid
gametophytic (n = 18) and sporophytic (2n = 36) plants exhibit
great morphological variations.Syngamy take place between gametes
of same plants, even inside the gametangia before the gametes
arereleased.
Los ejemplares fueron depositados en el Labo¬ratorio de Plantas
Avasculares, Departamento (Je
En la República Argentina es muy escaso el Biología, Universidad
Nacional del Sur. Parte delconocimiento que se tiene de la familia
Cladophora- material fue fijado en F.A.A. scnsu Landowskyceae
(Ulvophyceae). De los tres géneros hallados en (Braunc el al.,
1976) y otra parte fue fijada paraambientes de agua dulce,
Chaetomorpha, recuentos cromosómicos. El resto del material
fueRhizoclonium y Cladophora (Tell, 1985), este últimoes el más
frecuente. A pesar de esto, sólo 5 especies Las observaciones
fueron hechas en plantas re¬lian sido citadas hasta el momento para
el país: C. c¡¿n coleccionadas o en plantas mantenidas en
cul-crispata (Borge, 1901 a, b; Scckt, 1931,1950-56; Mar- (¡vo cn
mcdio natural. Los cultivos fueron rcaliza-tínez Bustos, 1934), C.
glaucens (Hariot, 1889); C. dos a temperatura ambiente e
iluminación naturalglomerata (Nordstedt, 1882; de Toni, 1889;
Carlson, desde el NO o a 20-21°C c iluminación artificial1921;
Martínez Bustos, 1934; Tilden, 1937; Gonzá-
INTRODUCCION
cultivado en medio natural en el laboratorio.
provista por tubos fluorescentes que suministra¬ban 67 pE . m'2
. s'1, con un régimen de 15:9 horasde luz-oscuridad.
lez Guerrero, 1941; Seckt, 1950-1956; Guarrera,1962; Tell,
1972), C. laetevirens (Hariot, 1889) yCladophora sp. (Borge, 1901).
Lamentablemente, enla mayoría de los trabajos solamente existe la
men-
Recuentos cromosómicos: En 10 plantas de cadauna de las
poblaciones estudiadas se efectuaron 15
ción de las especies, sin descripciones, ilustrado- recuentos
por planta. La fijación se llevó a cabo ennes o citas del material
estudiado. el campo en el momento de la colección, en una
mezcla 1:3 de ácido acético glacial y alcohol etíliconueva
especie de Cladophora hallada en cursos absoluto. Se efectuó luego
una postfijación con ai¬
de agua dulce del sur de la provincia de BuenosAires, entre los
37°30' y 41°00' S.
Este trabajo tiene como objetivo dar a conoceruna
cohol etílico 70%. El material fue luego sucesiva¬mente: 1)
hidrolizado por 15 min a 60°C en ácidoclorhídrico 1N; 2) teñido con
colorante de Schiff
MATERIAL Y METODOS (ver Johansen, 1940) durante 2 h en
oscuridad; 3)decolorado durante 20 min cn una mezcla 1:3:3
demetasulfito de sodio, ácido clorhídrico 1N y aguadestilada; 4)
lavado en agua destilada durante 30min y 5) montado en una gota de
solución acéticaal 2% de hematoxilina férrica con la adición
deacetato ferroso (Núñez, 1968).
Dimensiones celulares: En las mismas 10 plantasde cada población
estudiada se midieron el largo ydiámetro de 13 células en cada uno
de los niveles:
Las colecciones fueron hechas en ríos, arroyos,canales de riego,
lagos, etc.
La velocidad de la corriente de agua fue medidacon un molinete
A. OTT Kemptcn, modelo univer¬sal. El límite entre corriente rápida
y lenta fue fija¬do arbitrariamente cn 0,35 m. seg1.
'ÿ2 Laboratorio de Plantas Avasculares. Departamento de
Biolo¬gía. Universidad Nacional del Sur. Perú 670. 8000 Bahía
Blanca.
2 Miembrode la Carrera del Investigador Gentílico de la
Comi¬sión de Investigaciones Gentílicas de la Provincia de Buenos
Aires. y se confeccionó un gráfico (Fig. 1).
eje principal, ramificaciones y células apicales. Lospromedios
máximos y mínimos fueron calculados
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N° de ramificaciones apicales/mm2 = N° decélulas apicales/mm2 --
1.
RESULTADOS Y DISCUSIONa’pice
Cladophora serrana Parodi nov. sp.Figuras1-3
Aquae dulcís hospites. Generationes alternantes,isomorphes.
Gametophytum (n = 18), sporophytum (2n= 36). Tlwllus adultus
adnatus vel libere natans. Fila ecellulis ellongatis composita.
Ramiapicalis inter l/mm2(fluxus aquae minor 0.35 m. sec1) et 9/mm2
(fluxusaquae major 0.35 m . sec1). Gametangia apicales,
vege-tativis. cellulis similis. Isogametae numerosae, ovifor¬mes,
2-flagellatibus,10 pm long., 7 pm lat., per latero-apicalibus
orificiis elabentes. Autofecundatio. Zoospo¬rangia apicales vel
subapicales. Zoosporae numerosae,4-flagellatibus, per
latero-apicalibus orificiis elabentes.
Holotypus. ARGENTINA. Prov. Buenos Aires: Pdo. ãeTomquist, Villa
Ventana, arroyo del Loro, aguas arriba deldique, después del
camping municipal, zona muy corren¬tosa, 19-IV-1989, Parodi 24.
ramificación
Dulciácuícola. Diplobionte, haplodiplonte.Cametófitos (n = 18) y
esporófitos (2n = 36). Iso-mórficos. Meiosis espórica. Talos fijos
o flotantes.Filamentos multicelulares, uniseriados, ramifica¬dos.
Células cilindricas, de tamaño muy variableen cada uno de los tres
niveles: a) eje principal369,25 (± 113,65) pm de largo y 102 (± 28)
pm dediámetro, b) ramificaciones 296 (± 100,33) pm delargo y 64,37
(± 15,37) pm de diámetro y c) célulaapical 229,41 (± 94,73) pm de
largo y 47 (± 14,31)pm de diámetro. Densidad de ramificaciones
api¬cales en función de la velocidad de la corriente del
eje
principal
121 22 23 24muestra ns
Fig. 1.— Cladophora serrana. Barra escala = 100 pm.
Repre¬sentación gráfica del tamaño celular de las
poblacionesestudiadas en los niveles: eje prindpal, ramificación y
ápi¬ce. En cada barra el contorno externo representa el
tamañomáximo promedio y el interno el tamaño mínimo prome- agua, en
corriente lenta (inferior a 0,35 m . seg'1) esdio de la muestra.
Los desvíos no fueron señalados debido 1 (± 0,91)/mm2 y en
corriente rápida (superior a
0,35 m . seg"1) es 9 (± 2,33)/mm2. Gaijietangiossemejantes a
células vegetativas. Isogametas ovoi¬des, biflagcladas, 10 pm de
largo por 7 pm dediámetro mayor.Liberación de gametas por un po¬ro
latero-apical. Fecundación autógama. Zoospo--rangios globosos
formados a partir de células ve¬getativas apicales o subapicales.
Zoosporas tetra-flageladas, expulsadas por un poro
latero-apical.
a que no modificaban la interpretación.
Densidad de ramificaciones apicales: En 20 plantasvivas de cada
población se calculó la densidad deramificaciones apicales. Para
ello las plantas se co¬locaron en una caja de Petri con suficiente
mediopara permitir que flotaran libremente. Sobre lasuperficie del
medio y flotando sobre el ápice delas plantas se colocó una grilla
de cobre de un soloorificio ("one-slot grid") --de las usadas en
micro¬scopía electrónica— de 0,5 x 2 mm (1 mrq2) orien¬tándola de
tal modo que el largo de la aberturafuera paralelo al eje principal
de las plántas. Lascélulas apicales se contaron a través del
orificio y el pdo & Torníju¡st, Dique Paso de hs Pifcdras.
Rotando,número de ramificaciones apicales/mm2fuecalcu- movida por
las olitas, 24-X-1987, Parodi 1; Villa Ventana,lado con la fórmula:
Arroyo del' Loro, a 15 m aguas arriba del dique, agua
Localidad tipo: Arroyo del Loro. Villa Ventana.Partido de
Tornquist. Provinda de Buenos Aires
Fototipo: Figura 3, A (Parodi 24)
Material estudiado: ARGENTINA. Prov. Buenos Aires:
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E. R. Parodi y E. J. Cáceres, Cladophora serrana
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Bol. Soc. Argent. Bot . 27(3-4)(1991)
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I i;V\F
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a \.J
f.prÿr
I*i 1| !ijFig. 3.— Cladopfwra serrana. Esporófito. Barras escala
= 100 pm. A: Talo vegetativo creciendo convelocidad de corriente
superior a 0,35 m . seg'1. Las flechas señalan zoosporangios en
formación. B:Ramificaciones pseudodicotómica (flecha) y
pseudotricotómica (estrella). C: Placa mctafásica diploidecon 36
cromosomas. Barra escala = 10 pm. D: Zóosporas germinando, una de
ellas ya formó el primertabique transversal. E: Zoosporangios
maduros. F: Plántulas bi- y tricelulares.
tes lentas (inferiores a 0,35 m . seg-1), hasta un 1991). Esta
característica hace que se la pueda dife-máximo de 9/mm2 en
corrientes rápidas (muy rendar fácilmente de C. surera Parodi, con
la cualsuperiores a 0,35 m . seg'1) (Parodi y Cáceres,r coexiste,
pues, en iguales ambientes, ésta última
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E. R. Parodi y E. J. Cáccres, Cladophora serrana
presenta siempre más ramificaciones apicales/ perforado y un
gran pirenoide (Fig. 3, D). En lamm2. Asimismo, el tamaño de sus
células es muy figura 3, E se observan varias plántulas bi- y
trice-variable, tanto en el nivel de las células apicales lulares,
en las cuales se distinguen ya numerososcomo en los de las
ramificaciones y eje principal pirenoides.(Fig.1). El análisis de
las fuentes de variación de lasdimensiones celulares y de la
densidad de ramifi- tes a C. glomerata Kütz. en algunos de los
ambien-caciones apicales de ambas especies ha sido estu- tes
estudiados, claramente se diferencia de estadiado previamente
(Parodi, 1990).
Las ramificaciones pueden ser laterales, pscu- señalada como
poseedora de un ciclo de vida ex-d dicotómicas, —debido al fenómeno
de evccción elusivamente diplóntico (Schussnig, 1928; List,(Fig. 3,
B, flecha)— o pseudotricotómicas (Fig. 3, 1930) y no
haplodiplóntico como es el caso de C.B*). El fenómeno de evccción
fue dilucidado por serrana, y en segundo lugar, pues su nivel de
ploi-Brand (1901). Si el movimiento del agua es unidi- día (n = 18;
2 n = 36) difiere de todos los señaladosreccional (ríos, arroyos,
etc.), las ramificaciones para C. glomerata (Némec, 1910;
T'Serclaes, 1922;apicales se mantienen derechas (Fig. 3, A), mien-
List, 1930; Schussnig, 1928, 1944; Geitlcr, 1936; Sin¬tras que si
están sometidas a movimiento de vaivén ha, 1958, Sinha' y Noor,
1968; Wik-Sjóstedt, 1970).u oleaje, los ápices se curvan (Fig. 2,
A) siendo elgrado de curvatura directamente proporcional a la
AGRADECIMIENTOSintensidad del movimiento.
Si bien C. serrana presenta morfótipos semejan-
especie, en primer lugar, pues esta última ha sido
Este trabajo forma parte de la tesis doctoral de E. R.Parodi
presentada en el Departamento de Biología, Uni¬versidad Nacional
del Sur. Para su realizadón se contó conel apoyo del Consejo
Nacional de Investigaciones Científi¬cas y Técnica déla República
Argentina, mediante un "PID3-110-500/88". .
Las células dol filamento presentan un cloro-plasto parietal
reticulado y numerosos pirenoides(Fig. 3, B).
Los gametangios se forman a partir de célulasvegetativas y
poseen su aspecto y sus dimensiones;a la madurez se abren por un
poro latero-apical(Fig. 2, C). La liberación de las gametas es
explosi- .va y puede producirse en varios gametangios si-
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Bih.Till. Sven. Vet. Akad. Handl. Stockholm 27(3): 1-35.
isogametas se conjugan en forma masiva (Fig. 2, C,flechitas). La
fecundación tiene lugar entre game¬tas provenientes de una misma
planta e inclusoentre gametas de un mismo gametangio, antes deser
liberadas. La autogamia había sido descartadapara el género por
Fóyn (1929) al estudiar a C.pellucida (Huds.) Kütz. y C. neesiorum
(Ag.) Kütz.,aunque observaciones posteriores de Higgins(1931) en C.
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Las plántulas originadas por los zigotos se fijanal sustrato y
suelen mantenerse unicelulares hastasuperar las 100 pm de alto
(Fig. 2, D). En ellaspuede observarse un cloroplasto laminar
parietal,aún no reticulado y con varios pirenoides.
En los esporófitos diploides se forman los zoos-porangios a
partir de células vegetativas apicales osubapicales (Fig. 3, A).
Las zopsporas tctraflagela-,das salen por un poro apical o
latero-apical, ya seaque el esporangio esté ubicado apical o
subapical-mente (Fig. 3, C).
Las zoosporas se fijan y germinan. La primeradivisión
transversal ocurre poco después de la fija¬ción y origina plántulas
bicelulares. La célula infe¬rior origina el rizoide y la superior
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