TZWWater Technology Center – Environmental Biotechnology
Green Remediation & Atténuation
naturelle des solvants chlorés :
Identification de la biodégradation
anaérobie et aérobie
Kathrin Rachel Schmidt (1), Andreas Tiehm (1),
Michael Heidinger (2), Siegmund Ertl (2)
(1) Water Technology Center (TZW), Department of Environmental
Biotechnology, Karlsruhe, Allemagne; www.tzw.de
(2) Hydroisotop GmbH, Schweitenkirchen, Allemagne; www.hydroisotop.de
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Atténuation naturelle – Définition
L’Atténuation Naturelle englobe une variété de
mécanismes physiques, chimiques ou biologiques qui,
sous des conditions favorables,
réduisent sans intervention humaine
la masse, la toxicité, la mobilité, le volume ou la concentration
des polluants dans les sols ou les eaux souterraines.
Ces mécanismes in situ comprennent la biodégradation, la
dispersion, la dilution, la sorption, la volatilisation, ainsi que la
stabilisation, la transformation ou la destruction des polluants par
voie chimique ou biologique.
ADEME, 2007: Organo-chlorés aliphatiques – Atténuation naturelle dans les aquifères
Introduction
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Atténuation naturelle – Schéma
Zone non
saturée
Site industriel
Zone
saturée
Zones source
LNAPL
DNAPL
Substratum
Sens d‘écoulement
de la nappe Panache de pollution
Centre de distribution des eaux
parmi les mécanismes d’atténuation naturelle, la biodégradation est le seul processus permettant une perte nette en polluants
Introduction
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Atténuation naturelle – Application
Atténuation Naturelle sous Surveillance, ANS
(Monitored Natural Attenuation, MNA)
fait usage des capacités des mécanismes d‘AN
les processus sont attentivement contrôlée et suivie
Atténuation Naturelle Stimulée
(Enhanced Natural Attenuation, ENA)
fait usage des capacités des mécanismes d‘AN
la biodégradation est stimulée par p.ex. oxygène, substrat…
���� les processus de biodégradation sur un site
spécifique doivent être caractérisés de
manière détaillée
Introduction
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ma
pta
ke
nfr
om
ww
w.m
yg
eo
.info
Biodégradation – Méthodes d’évaluation
Détermination de
Répartition des polluants
Conditions redox dans les eaux souterraines
Bactéries spécialisées par
PCR (polymerase chain reaction)
MPN (most probable number)
Dégradation en microcosmes
Rapports isotopiques
���� schéma réactionnel sur un site
Frankenthal, Allemagne
Introduction
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Biodégradation des chloroéthènes
Oxydation aérobie
CO2
Cl-
H2OH H
C = CH Cl
H H
C = CH Cl
Cl H
C = CCl Cl
Cl H
C = CCl Cl
Cl Cl
C = CCl Cl
Cl Cl
C = CCl Cl
Déchloration anaérobie-réductrice
ComposéorganiqueDonneur
d‘électrons
PCE
TCE
cDCE
CV
éthène
H H
C = CCl Cl
H H
C = CCl Cl
H H
C = CH H
H H
C = CH H
H2
O2
Accepteurd‘électron
Dégradation cométabolique
Dégradation métabolique
Dégradation cométabolique
Dégradation métabolique
sensib
ilitéd
écro
issante
àla
déchlo
ratio
n ré
ductric
e
sensib
ilitécro
issante
àla
dégra
datio
noxyd
atif
Introduction
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� deux sources
(TCE et PCE)
� détection de
métabolites
(cDCE, CV,
sans éthène)
� court panache
Surfer-interpolation: default kriging
PCE > 100 µg/L
TCE > 100 µg/L
cDCE > 100 µg/L
CV > 100 µg/L
0 m 200 m 1200 m400 m 600 m 1000 m800 m 1400 m0 m
200 m
1200 m
400 m
600 m
1000 m
800 m
1400 mRépartition horizontale des chloroéthènes
Polluants
Sens d‘écoulement de la nappe
SourcePCE
SourceTCE
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� contamination
majeur au milieu
� CV détecté
seulement en
profondeur la
plus bas
Surfer-interpolation: default kriging
Répartition verticale des chloroéthènes
0 200 1200 m400 600 10008000 m
200
400
PCE > 100 µg/L TCE > 100 µg/L cDCE > 100 µg/L CV > 100 µg/L
1 m en profondeur
SourceTCE
Sens d‘écoulement de la nappe
SourcePCE
5 m en profondeur
10 m en profondeur
SourcePCE
SourcePCESource
TCE
SourceTCE
Polluants
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Conditions redox dans les eaux souterraines
Redox
moins O2
moins NO3
ORP basplus Mn2+
plus Fe2+
���� Conditions plus aérobies
plus O2
plus NO3
ORP hautmoins Mn2+
moins Fe2+
���� Conditions plus anaérobies
0 200 1200 m400 600 10008000 m
200
400
PCE > 100 µg/L TCE > 100 µg/L cDCE > 100 µg/L CV > 100 µg/LPCE > 100 µg/L TCE > 100 µg/L cDCE > 100 µg/L CV > 100 µg/L
3442
4101 m en profondeur
SourceTCE
Sens d‘écoulement de la nappe
SourcePCE
5 m en profondeur
10 m en profondeur
SourcePCE
SourcePCESource
TCE
SourceTCE
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Oxydation aérobie
CO2
Cl-
H2O
Déchloration anaérobie-réductrice
PCE
TCE
cDCE
CV
éthène
Desulfomonile
Desulfuromonas
Dehalobacter
Dehalococcoides
PCR: détection de l‘ADN des bactéries
� + test très rapide
� - pas de preuve de l’activité
MPN: quantification de la croissance
� + preuve de l’activité au laboratoire
� - test plus longe
Investigation par PCR et MPN – Principe
PCR et MPN
Bactéries étant capablede croissance avec CV
Germes totals en milieu nutritifen milieu peu nutritif
Bactéries nitrifiantes et dénitrifiantes
Bactéries ferro-réductrices
Bactéries sulfato-réductrices
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BP24
BP29
BP37
BP38
BP39
BP40
BP41
BP42
BP46
PCE
TCE
cDCE
CV
éthène
Desulfomonile sp.
Desulfuromonas sp.
Dehalobacter sp.
Dehalococcoides sp.
PCE > 100 µg/L
TCE > 100 µg/L
cDCE > 100 µg/L
CV > 100 µg/L
0 m 200 m 1200 m400 m 600 m 1000 m800 m 1400 m0 m
200 m
1200 m
400 m
600 m
1000 m
800 m
1400 m
0 m
200 m
1200 m
600 m
1000 m
800 m
1400 m
Investigation par PCR – RésultatsPCR = Polymerase Chain Reaction, réaction de polymérisation en chaine
� détection d‘halorespirateurs
différents dans l‘eau souterraine
PCR
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���� L’apparition répandue des bactéries étant capable de dégrader le CV montre le potentiel du site pour ce processus
1,E+00
1,E+01
1,E+02
1,E+03
1,E+04
1,E+05
1,E+06
51
H
51
M
51
B
44
H
44
M
44
B
45
H
45
M
45
B
46
H
46
M
46
B
No des piézomètres et profondeur (H=haut, M=milieu, B=bas)
Germ
es
/ g
mati
ère
sè
ch
e
Germes totalsmilieu nutritif
Germes totalsmilieu peu nutritif
Germesmilieu avec CV
MPN
Investigation par MPN – RésultatsMPN = Most Probable Number, dénombrement microbiologique des bactéries
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Test de dégradation en microcosmes – Principe
Avec le matériel du site (eau
souterraine, sédiment)
Incubation sous conditions du site
aérobie ou anaérobie avec des
différents accepteurs d’électron;
concentrations en polluants, en
sources de carbone et en nutriments
Incubation sous conditions
artificiellement modifiées
autres concentrations en polluants, en
sources de carbone et en nutriments
���� considération de la situation
minimale et maximale (stimulation)
Microcosmes
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Voie de dégradation
Anaérobie –
reductrice
Oxydation
aérobie
Chloro-éthènes
PCE / TCE cDCE / CV
Donneurd‘électrons
Acetate +
HydrogèneChloroéthènes
Accepteurd‘électrons
Chloroéthènes Oxygène
Test de dégradation en microcosmes –Echantillonnage Incubation
sur le site au laboratoire
Microcosmes
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Ch
loro
éth
èn
es, ch
loru
re[µ
M]
0
5
10
15
20
25
30
35
0 7 17 26 31 35 38 45 59 61 63 66
Temps [jours]
� Réduction de PCE/TCE
jusqu‘à cDCE a étésouvent observée
jusqu‘à CV a étérarement observée
� Minéralisation de
cDCE et de CV sous
des conditions
aérobies a été
souvent observée
0
20
40
60
80
100
0 5 7 10 11 12 14 17 19
Temps [jours]
Oxydation aérobieDéchloration anaérobie-réductrice
Microcosmes
Test de dégradation en microcosmes – Résultats
Chloride
cDCE
TCE
PCE
Chlorure
cDCE
TCE
PCE
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Bactériesdégradent 12C plus
rapide que 13C
13C
13C
13C13C
12C12C
12C12C
12C12C
12C
12C12C12C
12C
12C12C
12C
12C
12C
12C 12C12C
12C
13C13C
Composé avecun certain
rapport 13C/12C
Métaboliteest appauvri
en 13C
13C
12C12C
12C12C12C12C
12C12C12C
12C
12C12C
12C12C
13C
Fractionnement isotopique 13C/12C – Principe
Fractionnement isotopique = modifications des
rapports isotopiques pour les composés originaux
et pour les métabolites pendant la biodégradation
Composé original restant est
enrichi en 13C
13C13C
12C
12C
12C
12C12C
12C
13C
13C+
Isotopes
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PCE > 100 µg/L
TCE > 100 µg/L
cDCE > 100 µg/L
CV > 100 µg/L
0 m 200 m 1200 m400 m 600 m 1000 m800 m 1400 m0 m
200 m
1200 m
400 m
600 m
1000 m
800 m
1400 m
0 m
200 m
1200 m
400 m
600 m
1000 m
800 m
1400 m
Sens d‘écoulement de la nappe
SourcePCE
SourceTCE
- 22,3 ‰- 21,2 ‰ - 20,7 ‰
- 19,5 ‰
après Martin et al.,TerraTech 3-4/2006: 14-17
Isotopes
� Enrichissement
isotopique dans le
panache de
pollution en aval
de la source de
pollution
� Indication
qualitative de
biodégradation
Fractionnement isotopique 13C/12C – Résultats
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�� ��E
nri
ch
iss
em
en
t is
oto
piq
ue
pe
nd
an
t la
bio
dé
gra
da
tio
n p
ar
de
s v
oie
s d
iffé
ren
tes
Isotopes
Fractionnement isotopique 13C/12C – RésultatsDéchloration anaérobie-réductrice de PCE
0
10
0 5 10 15 20 25
PC
E,
TC
E, cD
CE
[m
g/L
]
-27
-22
PC
E 1
3C
/12C
[‰
VP
DB
]
PCE mg/L
TCE mg/L
cDCE mg/L
PCE δ13C
0
2
8
10
0 10 20 30 40 50 60
Temps [jours]
cD
CE
[m
g/L
]
-30
70
cDCE mg/LcDCE δ13C
0
2
12
0 2 4 6 8 10
TC
E, c
DC
E [
mg
/L]
-32
-8
TCE mg/L cDCE mg/L
TCE δ13C
0
2
8
10
0 10 20 30 40 50 60
Temps [jours]
VC
[m
g/L
]
-50
50
CV mg/L
CV δ13C
Dégradation aérobie-oxydatif de cDCE
TC
E 1
3C
/12C
[‰
VP
DB
]
cD
CE
13C
/12C
[‰
VP
DB
]
CV
13C
/12C
[‰
VP
DB
]
Déchloration anaérobie-réductrice de TCE
Dégradation aérobie-oxydatif de CV
Intersol 2010
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Déchloration anaérobie-réductrice de PCE
0
10
0 5 10 15 20 25
PC
E,
TC
E, cD
CE
[m
g/L
]
-27
-22
PC
E 1
3C
/12C
[‰
VP
DB
]
PCE mg/L
TCE mg/L
cDCE mg/L
PCE δ13C
0
2
8
10
0 10 20 30 40 50 60
Temps [jours]
cD
CE
[m
g/L
]
-30
70
cDCE mg/LcDCE δ13C
0
2
12
0 2 4 6 8 10
TC
E, c
DC
E [
mg
/L]
-32
-8
TCE mg/L cDCE mg/L
TCE δ13C
0
2
8
10
0 10 20 30 40 50 60
Temps [jours]
VC
[m
g/L
]
-50
50
CV mg/L
CV δ13C
Dégradation aérobie-oxydatif de cDCE
TC
E 1
3C
/12C
[‰
VP
DB
]
cD
CE
13C
/12C
[‰
VP
DB
]
CV
13C
/12C
[‰
VP
DB
]
Déchloration anaérobie-réductrice de TCE
Dégradation aérobie-oxydatif de CV
�� ��L
a d
éte
rmin
ati
on
de
s f
ac
teu
rsd
‘en
ri-
ch
iss
em
en
tis
oto
piq
ue
pe
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t la
qu
an
tifi
-
ca
tio
nd
e l
a b
iod
ég
rad
ati
on
su
r le
sit
e
Isotopes
Fractionnement isotopique 13C/12C – Résultats
ε = -1,5‰ ε = -4,3‰
ε = -7,9 / -15,7‰ ε = -5,7 / -12,9‰
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Schéma réactionnel sur le site de Frankenthal
� 1) Déchloration anaérobie-réductrice de PCE / TCE jusqu‘à cDCE (CV)
� 2) Oxydation aérobie / minéralisation de cDCE (CV)
Aérobie
CO2
Cl-
H2O
H H
C = CH Cl
Cl H
C = CCl Cl
Cl Cl
C = CCl Cl
Anaérobie
PCE
TCE
cDCE
CV
H H
C = CCl Cl
dégradation
métabolique
Schéma réactionnel
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L‘identification des processus de
biodégradation
par des méthodes differentes
- qui ont donné des résultats
correspondantes -
a permis la définition du schéma
réactionnel spécifique pour ce site.
Conclusions
Aérobie
CO2
Cl-
H2O
H H
C = CH Cl
H H
C = CH Cl
Cl H
C = CCl Cl
Cl H
C = CCl Cl
Cl Cl
C = CCl Cl
Cl Cl
C = CCl Cl
Anaérobie
PCE
TCE
cDCE
CV
H H
C = CCl Cl
H H
C = CCl Cl
dégradation
métabolique
Oxydation aérobie
CO2
Cl-
H2OH H
C = CH Cl
H H
C = CH Cl
Cl H
C = CCl Cl
Cl H
C = CCl Cl
Cl Cl
C = CCl Cl
Cl Cl
C = CCl Cl
Déchloration anaérobie-réductrice
ComposéorganiqueDonneur
d‘électrons
PCE
TCE
cDCE
CV
éthène
H H
C = CCl Cl
H H
C = CCl Cl
H H
C = CH H
H H
C = CH H
H2
O2
Accepteurd‘électron
Dégradation cométabolique
Dégradation métabolique
Dégradation cométabolique
Dégradation métabolique
sensib
ilitédécro
issante
àla
déchlo
ratio
n ré
ductric
e
sensib
ilitécro
issante
àla
dégra
datio
noxydatif
Répartition des polluants
Conditions redox de l’aquifère
Bactéries spécialisées par PCR et MPN
Dégradation en microcosmes
Analyse isotopique
Conclusions
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Ministère Fédéral de l’Education et de la Recherche (BMBF)
et Land de Rhénanie-Palatinat pour le soutien financier
nos partenaires de project – les Universités de Göttingen,
Karlsruhe et Kiel, et la municipalité de Frankenthal
nos collègues du TZW –
Tobias Augenstein, Carmen Kraffert,
Silke Kraßnitzer, Axel Müller, Sarah
Mungenast, Heico Schell, Claudia
Stoll et Claudia Zawadsky
et vous pour votre attention!!
Remerciements
Remerciements
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Schmidt K. R., Augenstein T., Heidinger M., Ertl S., Tiehm A. (2010) Aerobic biodegradation of cis-1,2-dichloroethene as sole carbon source: Stable carbon isotope fractionation and growth characteristics. Chemosphere 78(5): 527-532.
Zhao H.-P., Schmidt K. R., Tiehm A. (2010) Inhibition of aerobic metabolic cis-1,2-di-chloroethene biodegradation by other chloroethenes. Water Res.: 44(7): 2276-2282.
Lohner S. T., Tiehm A. (2009) Application of electrolysis to stimulate microbial reductive PCE dechlorination and oxidative VC biodegradation. Environ. Sci. Technol. 43(18): 7098-7104.
Tiehm A., Schmidt K. R., Pfeifer B., Heidinger M., Ertl S. (2008) Growth kinetics and carbon isotope fractionation during aerobic degradation of cis-1,2-dichloroethene and vinyl chloride. Water Res. 42: 2431-2438.
Schmidt K. R., Tiehm A. (2008) Natural attenuation of chloroethenes: Identification of sequential reductive/oxidative biodegradation by microcosm studies. Water Sci. Technol. 58(5): 1137-1145.
Tiehm A., Schmidt K. R. (2007) Methods to evaluate biodegradation at contaminated sites. In: Knödel K., Lange G., Voigt H.-J. (Eds.): Environmental geology – Handbook of field methods and case studies. Springer, Berlin, Heidelberg: 876-911.
Schmidt K. R., Stoll C., Tiehm A. (2006) Evaluation of 16S-PCR detection of Dehalococcoides at two chloroethene-contaminated sites. Water Sci. Technol.: Water Supply 6(3): 129-136.
Références
Références