UNIVERSIDAD RICARDO PALMA CICLO ACADÉMICO FACULTAD DE MEDICINA HUMANA GUIA PRÁCTICA DE LABORATORIO DE FARMACOLOGÍA 2010-II ---------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------- --------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------- Pág. PROFESORES: Dra. H. JURUPE CH. Dra. V. HERENCIA R. Dra. J. M. ROBLES E. Dr. C. CONTRERAS V. 1 UNIVERSIDAD RICARDO PALMA FACULTAD DE MEDICINA HUMANA GUÍA PRACTICA DE LABORATORIO DE FARMACOLOGIA 2010-II PROFESORES: Dra. Hilda Jurupe Chico Coordinadora del Curso Dra. Vilma Herencia Reyes Coordinadora de Práticas Dra. Monica Robles Esquerre Profesora de Práticas de Laboratorio Dr. Carlos Contreras Valdivia Profesor de Práticas de Laboratorio Lima - Perú
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FACULTAD DE MEDICINA HUMANA GUIA PRÁCTICA DE LABORATORIO DE FARMACOLOGÍA 2010-II
Formar integralmente profesionales competitivos a nivel internacional, a través de
programas académicos multidisciplinarios, permanentemente actualizados y con énfasis en
la investigación aplicada, y mecanismos de inserción temprana en el mercado laboral.
Ofrecer soluciones innovadoras a la problemática del país y de las regiones, que atiendan necesidades de sectores productivos y sociales.
VISIÓN URP
Ser la primera universidad del Perú con reconocimiento internacional, promotora del desarrollo integral de la persona y del país.
MISIÓN FAMURP
Formar profesionales médicos con sólida vocación humanista basada en valores, con la
exigencia académica necesaria para lograr profesionales altamente calificados y competitivos para afrontar los retos que exige nuestra población en el campo de la salud.
Contamos para ello con una moderna infraestructura y tecnología educativa de avanzada,
respaldados por una plana docente de reconocida experiencia y trayectoria profesional, con
planes curriculares permanentemente actualizados y respetuosos de los estándares de
acreditación que nos permiten una constante superación.
VISIÓN FAMURP
Ser reconocidos como la Facultad de Medicina de mayor prestigio en el país, con acreditación
internacional, por su exigencia académica en la formación de médicos-cirujanos; por
brindar una sólida formación holística basada en valores y sus egresados reconocidos por su
capacidad y creatividad para afrontar los problemas de salud del país y preparados para
proyectarse a nivel internacional manteniendo vigente nuestra identidad nacional.
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La farmacología (del griego, pharmacon (φάρμακον), fármaco, y logos (λόγος), ciencia)
es la ciencia que estudia el origen, las acciones y las propiedades que las sustancias químicas ejercen sobre los organismos vivos. La farmacología se encarga del estudio de los fármacos, sea que ésas tengan efectos beneficiosos o bien tóxicos. Tiene aplicaciones clínicas cuando las sustancias son utilizadas en el diagnóstico, prevención, tratamiento y alivio de síntomas de una enfermedad. También podemos hablar de Farmacología: como el estudio unificado de las propiedades de las sustancias químicas y de los organismos vivientes y de todos los aspectos de sus interacciones, orientado hacia el tratamiento, diagnóstico y prevención de las enfermedades. La Farmacología Experimental es una rama investigativa, preclínica, necesaria para el futuro uso de cualquier medicamento, provee las bases para el empleó racional de los fármacos, realiza la investigación de la acción del fármaco sobre los diversos órganos, así como su farmacocinética y demás propiedades farmacológicas.
La presente guía de práctica de laboratorio recopila cuidadosamente sencillos métodos farmacológicos experimentales que son aceptados por asociaciones e instituciones dedicadas a la investigación farmacológica que permitirá al estudiante comprobar la acción de diversos grupos de fármacos así como estimular sus aptitudes de observación crítica. Los experimentos se han considerado tomando en cuenta los materiales, reactivos e infraestructura existente.
Cada Práctica de laboratorio incluye: Introducción. Logro. Puntos importantes para el conocimiento y revisión del alumno antes de la práctica. Objetivos. Materiales (biológico y farmacológico), métodos y procedimientos que se deben desarrollar cuidadosamente durante la práctica. La guía de laboratorio debe ser revisada minuciosamente antes de iniciar la práctica. Al finalizar el curso y el desarrollo de la guía de práctica de laboratorio el estudiante habrá desarrollado habilidades en la manipulación del material biológico, observación de los efectos farmacológicos, obtención de resultados y la discusión de los mismos; y destrezas que en adelante le permitirán aplicar en la terapia farmacológica.
Los Profesores del Curso
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Semestre : 2010 - II Actividad : PRÁCTICA DE LABORATORIO Naturaleza del Curso : OBLIGATORIO Profesores : Mg. J. Hilda Jurupe Chico (Coordinadora del Curso)
Q.F. Vilma E. Herencia Reyes (Coordinadora de Práctica) Q.F. J. Mónica Robles Esquerre Med. Cirujano Carlos Conteras Valdivia
COMPETENCIAS DE LAS PRÁCTICAS DE LABORATORIO EN EL CURSO DE
FARMACOLOGÍA Los Estudiantes de la facultad de Medicina Humana, al finalizar cada clase de práctica de laboratorio serán capaces de:
Dominio de los conceptos específicos de la farmacología, modelo experimental pre-clinico y de los fármacos, integrando los conceptos de farmacocinética y farmacodinamia de los grupos farmacológicos y terapéuticos de mayor utilización clínica.
Desarrolla habilidades y destrezas en la intervención, participación, manejo del modelo experimental, manipulación de animales e interpretación de los resultados observados en cada práctica, que les permita desarrollar líneas de investigación científica, para asegurar su autoformación en forma sostenida.
METODOLOGÍA Se motivará al estudiante a una participación activa de las clases de práctica de laboratorio:
Evaluaciones escritas y orales al inicio de cada practica de laboratorio del tema correspondiente Manejo de la Guía de Practica de Laboratorio Preparación de los materiales biológicos y farmacológicos Dominio del modelo experimental y administración de los fármacos a los animales de experimentación Observación de los resultados de acuerdo a los parámetros señalados en el modelo experimental. Interpretación de los resultados observados Discusiones y conclusiones de la práctica de laboratorio.
EVALUACIÓN: Evaluación de Competencias mediante los listados de verificación, que forman parte del silabo. Los estudiantes serán evaluados en forma grupal e individual, considerando la valoración cognoscitiva, procedimental y actitudinal: * EVALUACIÓN EXPERIMENTAL (Prácticas de 02 a 12) Área cognoscitiva: Conocimientos teórico (escrito y oral) 30% Área Procedimental: Manejo de la Guía de Practica de Laboratorio y
Ejecución experimental (30%) e informe grupal (20%) 50% 90% Área Actitudinal: Asistencia y puntualidad, cumplimiento de las normas de
bioseguridad, Sentido de colaboración y responsabilidad 20%
* EVALUACIÓ DE INVESTIGACIÓN (Prácticas 13, 14 y 15) Trabajo de Investigación: Presentación de Proyecto, ejecución, presentación de
monografía con CD y sustentación (de acuerdo a programación). 10%
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PROGRAMACIÓN DE PRÁCTICAS DE LABORATORIO - FARMACOLOGÍA 2 010 – II
SEMANA
N°
PRACTICA
N°
NOMBRE DE LA PRACTICA
FECHA
RESPONSABLES
OBSERVACIONES
01
02
03
04
05
06
07
08
P.L N° 01
P.L N° 02
P.L N° 03
P.L N° 04
P.L N° 05
P.L N° 06
P.L N° 07
P.L N° 08
PRINCIPIOS GENERALES DE FARMACOLOGIA EXPERIMENTAL: Presentación INTERACCIONES DE FÁRMACOS SISTEMA NERVIOSOS AUTONOMO: ADRENERGICOS – COLINERGICOS – BLOQUEADORES REVISION DE ARTICULOS – ELABORACION DE PROYECTOS DE INVESTIGACION ANTICONVULSIVANTES FARMACOLOGIA DE LA UNION NEUROMUSCULAR REVISION DE ARTICULOS – DISEÑO DE MODELO EXPERIMENTAL. DIURÉTICOS
23 al 27
Agosto
30 al 31 Agosto y 01 al 03
Setiembre 30 Agosto Feriado *
06 al 10 Setiembre
13 al 17 Setiembre
16, 17 y 18 Set. CONGRESO
INT. DE CIRUGÍA Y MEDICINA
20 al 24 Setiembre
***
27 al 30 Setiembre y 01
Octubre
04 al 08 Octubre
08 Octubre Feriado *
05 Octubre Día de la Medicina
Peruana 07, 08 Y 09 Oct.
Congreso de Educación Médica -
ASPEFAM
11 al 15 Octubre
NOTAS DE P.L. y SEM. A REGISTRO OFICIAL
Profesores Asignados para cada Sub-Grupo Introducción: Profesor Evauación: Oral y Escrita – Alumnos Ejecución Modelo Exerim.: Alumnos Discusión y Conclusiones: Profesor y Alumnos Profesor y Alumnos (E, Ex, D y C) Profesor y Alumnos (E, y D) Profesor y Alumnos(E, Ex, D y C) Profesor y Alumnos (E, Ex, D y C) Profesor y Alumnos (E y D) Profesor y Alumnos (E, Ex, D y C)
ANTICOAGULANTES PROYECTO DE INVESTIGACION APROBADO Y ENTREGADO - SOLICITUD DE MATERIALES. FARMACOLOGIA DIGESTIVA I – TRÁNSITO INTESTINAL FARMACOLOGIA UTERINA EJECUCION DEL TRABAJO DE INVESTIGACION EJECUCION DEL TRABAJO DE INVESTIGACION ENTREGA DE LAS MONOGRAFIAS DE LOS TRABAJOS DE INVESTIGACION y SUSTENTACIÓN. RECUPERACIÓN DE PRÁCTICA DE LABORATORIO
PROMEDIOS DE PRÁCTICA PROMEDIOS FINALES ENTREGA DE ACTAS
“FELIZ NAVIDAD y VENTUROSO
AÑO NUEVO”
18 al 22 Octubre
***
25 al 29 Octubre
01 al 05 Noviembre
01 Noviembre Feriado *
08 al 12 Noviembre
***
15 al 19 Noviembre
22 al 26 Noviembre
29 al 30 Noviembre y
01 al 03 Diciembre
06 al 10 Diciembre
08 Diciembre Feriado *
13 al 17 Diciembre
20 al 24 Diciembre
Profesor y Alumnos (E, Ex, D y C) Profesor y Alumnos (E y D) Profesor y Alumnos (E, Ex, D y C) Profesor y Alumnos (E, Ex, D y C) Alumnos y Profesor (E, Ex, D y C) Alumnos y Profesor (E, Ex, D y C) Alumnos y Profesor (Presentación y sustentación) Alumnos y Profesor (E, Ex, D y C) Coordinación de Practica Coordinación del Curso
(CALIFICADA) *** Informe de cada Profesor al Coord. del Curso (Asistencia a P. Lab., Sem. y avance académico y otros). * Reprogramación de actividades.
p.D. Todo alcance que no se mencione en la presente guía de Práctica de Laboratorio, se publicara en la
vitrina de FARMACOLOGIA, que se ubica en el tercer piso del complejo de Laboratorios. Por lo tanto los alumnos estarán siempre vigilantes a las publicaciones en la vitrina.
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INTRODUCCION: Los experimentos de Farmacología se realizan en su mayor parte en los denominados animales de laboratorio. Las experiencias en animales vivos deben realizarse con un planteamiento bien definido. Cuando la experiencia a desarrollar produzca un sufrimiento mayor que el originado por la técnica disponible, el animal deberá ser anestesiado. La muerte del animal, cuando sea necesario deberá ser siempre verificada. La selección de la especie animal depende del tipo de ensayo, los más usados son mamíferos de mayor similitud biológica y fisiológica con el hombre (rata, ratón, cobayo, conejo, perro, primates, etc.). Con el objetivo de reducir la variabilidad esperada en un ensayo es conveniente usar animales de una sola raza, de una sola cepa si fuera necesario, igualmente el sexo puede ser un factor determinante en los resultados.
TIPOS DE ENSAYO:
In vivo: Es el que se realiza en el animal intacto, presenta la ventaja que permite observar el efecto global en todo el organismo, pero tiene el inconveniente de estar sujeto a variables Farmacocinéticas y mecanismos reguladores
In vitro: En este caso se emplean porciones aisladas de un órgano o tejido (útero, intestino, aurícula, músculo estriado, etc.) al que se administra una concentración conocida del fármaco por un tiempo determinado; este ensayo permite una observación y registro directo del fenómeno farmacológico, lo que conduce a resultados más fidedignos. In situ: Son ensayos realizados en un órgano determinado pero conservando las conexiones
normales y el funcionamiento del organismo MANTENIMIENTO DEL ÓRGANO AISLADO: Al órgano aislado es necesario proporcionarle los elementos indispensables para su, mantenimiento y estabilidad, esto incluye:
- Temperatura: 37°C 1°C, a no ser que por condiciones especiales se requiera menor temperatura.
- Electrolitos esenciales - Material energético: glucosa, ácidos grasos - pH - Gases: Oxígeno o mezcla de oxígeno y CO2 El líquido que rodea al órgano debe ser isotónico con la célula para evitar que se deseque o muera, debe contener sales semejantes al medio interno.
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- Sáquelo de la jaula, tomándolo del tercio superior de la cola o colocando los dedos bajo su cuerpo y conseguir que suba a la palma de la mano.
- Colóquelo encima de la jaula, aprisione la cola entre la palma de la mano y los dedos meñique y anular y firmemente con la misma mano tome la piel del dorso del cuello. Así puede realizar la inyección intraperitoneal (I.P.) e intragástrica (con sonda).
- Para la administración I.P. use una aguja calibre 26 de bisel corto. La administración intragástrica se realiza mediante una cánula introduciéndola suavemente en el esófago (2 – 3 cm.)
b) Manejo de la rata:
Sáquela de la jaula tomándola suavemente del cuerpo o de la cola, y apóyela sobre la jaula.
Cuando el animal éste tranquilo colocar la palma de la mano sobre el dorso y cerrar los dedos pulgar, índice y medio, alrededor del cuello y meñique alrededor del tórax, tratando de no asfixiarla.
Para evitar accidentes es recomendable hacer estas maniobras utilizando un pedazo de tela.
Para la administración intraperitoneal (I.P.) e intramuscular (I.M.) estirar con la otra mano los cuartos traseros y presentar el abdomen para que otra persona inyecte. Para la vía I.P. se hará en el cuadrante inferior a la izquierda de la línea media. Para la administración I.M. el fármaco se deposita en la parte posterior de los cuartos traseros.
Para la administración oral use una sonda metálica con el extremo en forma de oliva, deslizándola suavemente a través del esófago.
c) Manejo del conejo:
Tomar con una mano la piel del cuello y hombros y con la otra mano presione por debajo del tren posterior.
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Tomarlo del dorso a nivel del cuello y apoyar con la otra mano las patas traseras.
e) Manejo de palomas y Pollos :
Tomarlo de las alas para evitar su fuga
Apoyarse con la mano izquierda para cogerlos de las patas y evitar que puedan lastimar al experimentador; cogerlo adecuadamente para que no cause daño en el manipulador del animal.
Luego de haber sujetado las alas y las patas un segundo experimentador(a) podrá administrar la solución del fármaco.
II.- CÁLCULO DE VOLUMEN Y DOSIS: INTRODUCCION:
En los experimentos farmacológicos se emplean soluciones de fármacos de diferentes concentraciones y la administración de las mismas a los animales de experimentación se hace en relación a su peso y se expresa en "mg/kg.", lo que quiere decir miligramos de sustancia activa
por kilo de peso del animal. Para lo cuál es necesario recordar las unidades de pesas y medidas (metrología) que se usan, siendo en nuestro país actualmente oficial para los preparados farmacéuticos; el sistema métrico decimal; los principios fundamentales de metrología son la base para pruebas farmacológicas, en muchos experimentos se usan cantidades muy pequeñas de peso o volumen debiendo usarse fracciones de las unidades respectivas (mg, ug, ml.).
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La concentración de las soluciones se puede expresar en (%) o por ciento (0.1%, 2%, 10%) y también en forma de razones o fracciones (1:1,000 ó 1/1,000, 1:10,000 ó 1/10,000) esto último significa 1ml. de líquido o 1 gr. de sólido disuelto en cantidades suficientes de solvente para hacer 1,000 y 10,000 ml respectivamente de solución.
Para expresar las soluciones en porcentaje las farmacopeas han adoptado el siguiente criterio para las prescripciones farmacéuticas.
Porcentaje peso en volumen (P/V): Para soluciones de sólidos o gases en líquido y expresa el número de gramos de un constituyente activo en 100 ml. de solución, sin tener en cuenta si el solvente es agua u otro líquido aunque por lo general es agua.
Porcentaje volumen en volumen (V/V): Para soluciones de líquidos, expresa el número de ml de un constituyente activo en 100 ml. de solución.
Porcentaje peso en peso (P/P): Para mezclas de sólidos, significa número de gramos de sustancia activa en 100 gr. de producto final.
Igualmente se emplea especialidades farmacéuticas, generalmente en forma líquida, de concentración conocida a partir de las cuales se preparan soluciones de menor concentración. SISTEMA DE CÁLCULO: 1. Calcular la dosis del fármaco a administrar a un animal de experimentación:
a) Cálculo en miligramos: Conociendo los mg de fármaco por cada kilogramo de peso (mg/kg.) se calcula primero los mg que serán necesarios para lograr el efecto, tomando como referencia el peso del animal.
b) Cálculo de volumen a administrar: Una vez calculada la cantidad total de fármaco en miligramos y como esta se encuentra en solución, es necesario saber cuántos ml. debe tomarse para administrar al animal la cantidad requerida del medicamento, para lo que hay que tener en cuenta la concentración de la solución.
2. Preparar una solución más diluida partiendo de otra de concentración conocida:
a) Calcular primero la cantidad de soluto necesario para preparar el volumen de solución que se necesita.
b) Determinar en que volumen de la solución patrón o de reserva donde está contenido esa cantidad requerida.
Ejemplos: 1) Un perro que pesa 10 kg. al cuál se le administrara una solución de Pentobarbital Sódico 10%
(10g/100mL.), siendo la dosis de 60 mg/kg. ¿Cuál es el volumen a administrar? Formula: Vol. = Peso animal (kg) X Dosis (mg/kg.) Concentración sol. (mg/mL.) Vol. = 10 kg. X 60 mg/kg. 100 mg/1mL. Vol. = 6,0 mL.
2) ¿Cuantos ml de solución de Adrenalina al 0.1% se le administrara a una rata de 180 gr.
Siendo la dosis de 1mg/kg. Dosis: 1 mg/kg.
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1,0 mg. --------------- 1,0 mL. 3,3 mg. ---------------- X
X = 3,3 mL. Formula:
Vol. Peso A.(kg.) X Dosis (mg/kg.) Concentración sol. (mg/mL.)
Vol. 11 kg. X 0,3 mg/kg. 1,0 mg/mL.
Vol. 3,3 mL.
III.-CUESTIONARIO
1. A una rata de 185 g. Se administra una solución de Ranitidina cuya concentración es 16mg/mL. Siendo la dosis 115mg/kg. ¿Cuál es el volumen a administrar?
2. A una rata de 230 g. Se le administró 0,6 mL. De una solución de Indometacina cuya
concentración es 20 mg/mL. ¿Cuál fue la dosis? 3. A un ratón de 22g. Se le administra 0.1 mL. De una solución de Fenobarbital cuya
concentración es 6mg/mL. ¿Cuál es la dosis?.
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INTERACCIONES DE FÁRMACOS: SINERGISMO - ANTIDOTISMO
INTRODUCCIÓN: Las interacciones farmacológicas, se refiere a la modificación de las acciones profilácticas, terapéuticas y diagnosticas de un fármaco por el empleo de otro fármaco en forma simultánea o concomitante. Un fármaco al alterar la respuesta de otro fármaco en forma cuantitativa, ya sea aumentando la respuesta farmacológica (sinergismo) o disminuyendo la misma (antagonismo). A mayor número de fármacos utilizados existe mayor probabilidad de interacciones medicamentosas.
EXPERIMENTO N° 01. SINERGISMO
I.- LOGRO:
Al finalizar la práctica el alumno será capaz de: INTERPRETAR LOS FENÓMENOS DE SINERGISMO POR ADMINISTRACIÓN SIMULTÁNEA DE FÁRMACOS.
II.- PUNTOS IMPORTANTES PARA EL ALUMNO (antes de la práctica): 1.- Generalidades sobre interacciones 2.- Definición de Sinergismo 3.- Tipos de Sinergismo
4.- Farmacología de Adrenalina y cocaína para los efectos que se observaran en la práctica 5.- Desarrollar el cuestionario
III.- OBJETIVO: OBSERVAR LOS FENOMENOS DE SINERGISMO POR ADMINISTRACIÓN SIMULTÁNEA DE FÁRMACOS.
IV.- MATERIAL Y METODOS: 1.- Material:
Animal: 01 conejo de preferencia albino / cada mesa de P.L. Fármaco: Cocaína Sol. 10 mg/mL.
a) Medir el diámetro pupilar basal y determinar la sensibilidad corneal, aspecto de la conjuntiva.
b) Instilar en el saco conjuntival derecho 2 gts. de sol. de cocaína. Después de 5 minutos, medir el diámetro pupilar y controlar la sensibilidad corneal y aspecto de la conjuntiva.
c) Instilar 2 gts. De adrenalina en ambos ojos, esperar 05 minutos, hacer los controles correspondientes.
d) Registrar los datos y hacer el análisis del sinergismo para su discusión.
SINERGISMO: COCAINA - ADRENALINA
DIAMETRO PUPILAR
Otras Observaciones
(congestión, sensibilidad y color de
la conjuntiva) Basal Cocaína Adrenalina Cocaína +
Adrenalina
Ojo Derecho
++++++++++ ++++++++++
Ojo Izquierdo
+++++++ +++++++
+++++++++ +++++++++
Análisis del Sinergismo: ..........................................................................................................................
Tipo de Sinergismo:......................................................................................................................................
EXPERIMENTO Nº 02: ANTIDOTISMO
I.- LOGRO: Al finalizar la práctica el alumno será capaz de:
INTERPRETAR LOS FENÓMENOS DE ANTIDOTISMO POR ADMINISTRACIÓN SIMULTÁNEA DE FÁRMACOS.
II.- OBJETIVO: OBSERVAR LOS FENOMENOS DE ANTIDOTISMO POR ADMINISTRACIÓN SIMULTÁNEA DE FÁRMACOS.
III.- MATERIALES
Material Biológico : 02 Palomas de 400 a 500 gr. / por cada sub-grupo de P.L. Material Farmacológico : Cianuro de Potasio (KCN) Sol. 1 mg/mL. Nitrito de Sodio (NaNO2) Sol. 20 mg/mL.
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Otros : 01 jeringa de 1 mL (por cada sub-grupo de P.L.) 01 jeringa de 5 mL (por cada sub-grupo de P.L.)
Guantes por cada alumno (obligatorio)
1. PROCEDIMIENTO a) Tomar datos básales: capacidad de volar, caminar, tipo de respiración y posición del cuello. b) Administrar Cianuro de Potasio 4 mg/Kg. Por Vía I.M. profunda en el músculo pectoral. c) Observar síntomas tóxicos: aleteo, ataxia, cambios de respiratorios, posición del cuello,
pueden producirse convulsiones , vómitos y anotar PL . d) Producidos algunos de estos signos, administrar inmediatamente Sol. de Nitrito de Sodio 40
mg/Kg. Por Vía E.V. rápida, utilizando la vena marginal del ala. e) Observar la recuperación. f) Anote y discuta los resultados.
ANTIDOTISMO NITRITO DE SODIO – CIANURO DE POTASIO
Peso: Paloma 1: ........................ g. (CONTROL NEGATIVO) Peso: Paloma 2: ........................ g. (TRATAMIENTO)
FARMACOS
VOL. (mL.)
ESTADO BASAL
PL
PARAMETROS DE EVALUACION
OBSERVA-CIONES
CAPACIDAD DE VOLAR
CAPAC. DE CAMINAR
TIPO DE
RESPIRA-CIÓN
POSICIÓN
DEL CUELLO
Paloma 1 KCN
Normal
Paloma 2 KCN + NaNO2
Normal
Discusión de lo observado:............................................................................................................. .............................................................................................................................................................
C.- CUESTIONARIO:
1. ¿Qué es Farmacodinamia? Y ¿Cuál es la Farmacodinamia de cocaína para los EFECTOS que se estudiaran en práctica de laboratorio?
2. ¿Cómo actúa el Nitrito de sodio para antagonizar los efectos tóxicos del Cianuro?
p.D. Solo se recibirá máximo 03 páginas del cuestionario.
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SISTEMA NERVIOSO AUTONOMO: ADRENERGICOS - COLINERGICOS - BLOQUEADORES ADRENERGICOS Y COLINERGICOS
INTRODUCCION: Los fármacos autonómicas imitan o modifican las acciones de los transmisores neurohumorales liberados por las fibras autónomas en los ganglios o células efectoras, según esto se clasifican en: adrenérgicos, bloqueadores adrenérgicos, colinérgicos y bloqueadores colinérgicos, diversos métodos pueden utilizarse para poner de manifiesto las acciones de estas drogas ya que son muchos los fenómenos que se desencadenan al excitar las terminaciones nerviosas simpáticas y parasimpáticas, además conociendo la respuesta de los impulsos efectores a los impulsos nerviosos autónomos es posible preveer las acciones de estos fármacos
EXPERIMENTO Nº 01 : SNA - COLINERGICOS
I.- LOGRO: Al Finalizar la práctica el alumno será capaz de: 1. Analizar los efectos de la estimulación colinérgica. Respuestas muscarinicas en presión
arterial y motilidad intestinal. 2. Analizar el bloqueo de los receptores muscarínicos. Analizando el efecto nicotínico sobre
presión arterial.
II.- PUNTOS IMPORTANTES PARA EL ALUMNO (antes de la práctica):
1. Anatomía y fisiología del S.N. Parasimpático 2. Receptores Colinérgicos: localización, tipos, diferenciación. 3. Farmacología de: acetilcolina, neostigmina.
III.- OBJETIVOS: 1. Evidenciar los efectos de los estimulantes colinérgicos. Respuestas muscarinicas en presión
arterial y motilidad intestinal. 3. Demostrar el bloqueo de receptores muscarínicos. Evidenciar efecto nicotínico sobre presión
arterial.
IV.- PROCEDIMIENTO:
Analizar los grafico propuestos para determinar la siguiente secuencia.
a) Efectos Colinérgicos:
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b) Efectos Potenciadores de la Neostigmina: Neostigmina 0.03 mg/Kg. Sol. 0.5 mg/mL. Esperar 5 minutos Acetilcolina (1) 0.0001 mg/Kg. Sol. 0.01 mg/mL.
Discusión de los gráficos observados:........................................................................................... ............................................................................................................................................................. .............................................................................................................................................................
EXPERIMENTO Nº 02 : SNA - ADRENERGICOS
I.- LOGRO: Al Finalizar la práctica el alumno será capaz de: 1. Dimensionar los efectos de los fármacos adrenérgicos sobre la presión arterial.
II.- PUNTOS IMPORTANTES PARA EL ALUMNO (antes de la práctica) 1. Anatomía y Fisiología del Sistema Simpático. 2. Receptores adrenérgicos: localización y función. 3. Farmacología de: adrenalina, Etilefrina ,orciprenalina.( O Isoxsuprina )
III.- OBJETIVOS:
1. Comprobar los efectos de los fármacos adrenérgicos sobre la presión arterial.
IV.- PROCEDIMIENTO Graficar el registro basal de presión arterial Adrenalina 0.0015 mg/Kg. Orciprenalina o Isoxsuprina 0.05 mg/Kg. Etilefrina 0.05 mg/Kg.
Observar las gráficas de los supuestos efectos al estimular los receptores correspondientes: Tome nota para la discusión del: Periodo de Latencia y Duración del Efecto.
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Discusión de los gráficos observados:.......................................................................................... ............................................................................................................................................................. .............................................................................................................................................................
EXPERIMENTO N° 03: BLOQUEADORES COLINERGICOS y ADRENERGICOS
I.- LOGRO:
Al Finalizar la práctica el alumno será capaz de:
1. Analizar el bloqueo de receptores muscarínicos. Representar el efecto nicotínico en presión arterial.
2. Analizar la disminución y/o modificación de respuestas adrenérgicas por administración de bloqueadores.
II.- PUNTOS IMPORTANTES PARA EL ALUMNO (antes de la práctica):
1. Tipos de Bloqueadores colinérgicos 2. Tipos de Bloqueadores adrenérgicos 3. Farmacología de la Atropina, Terazocina y Propanolol.
III.- OBJETIVOS: 1. Demostrar el bloqueo de receptores muscarínicos. Evidenciar efecto nicotínico sobre presión
arterial. 2. Comprobar la disminución y/o modificación de respuestas adrenérgicas por administración de
bloqueadores.
IV.- PROCEDIMIENTO:
Analizar los gráficos propuestos para determinar la siguiente secuencia. 1. Bloqueo del Receptor Muscarínico:
Administrar: ATROPINA 1.0 mg/Kg. diluir 5 veces el volumen de Atropina.
Administrar la solución lentamente.
2. Control del Bloqueo Muscarínico: Administrar: ACETILCOLINA 0.0001 mg/Kg. Sol. 0.01 mg/mL. ACETILCOLINA 0.1 mg/Kg. Sol. 1 mg/mL.
Discusión de los gráficos observados:…...................................................................................... .............................................................................................................................................................
CUESTIONARIO 1. Explicar: ¿Cuales son los receptores adrenérgicos?. ¿Donde se localizan? Y ¿Cuál es su vía de
transducción de señales para cada tipo de receptor adrenérgico?. ¿Cuales son los receptores colinérgicos?. ¿Donde se localizan? Y ¿Cuál es su vía de transducción de señales para cada tipo de receptor colinérgicos?
2. Señale ¿Qué efectos producen los agonistas adrenérgicos indicados en la presente práctica de
laboratorio en Presión Arterial y motilidad Intestinal? Y ¿Cuáles son sus mecanismos de acción para dichos efectos?
3. Señale que efectos producen los antagonistas colinérgicos y antagonistas adrenérgicos indicados
en la presente practica de laboratorio a nivel cardiovascular y motilidad intestinal? Y ¿Cuáles son los mecanismos de acción para dichos efectos?
p.D. Solo se recibirá máximo 04 páginas del cuestionario.
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REVISION DE ARTICULOS – ELABORACION DE PROYECTO DE INVESTIGACION
I.- INTRODUCCION: La revisión de artículos, nos permite obtener información específica y afianzar los contenidos de
las clases teóricas y prácticas, para ello es necesario hacer uso de buscadores especializados. La investigación bibliográfica fortalecerá, la elaboración del proyecto de investigación.
II.- PUNTOS IMPORTANTES PARA EL ALUMNO (antes de la práctica):
1. Búsqueda de artículos en revistas especializadas. 2. Leer el artículo completo y elaborar un resumen y comentario.
III.- OBJETIVOS: 1. IDENTIFICAR BIBLIOGRAFÍA ESPECIALIZADA Y LA BÚSQUEDA DE ARTICULOS DE
TEMAS ESPECÍFICOS. 2. BUSQUEDA DE ARTÍCULOS DE INVESTIGACIÓN PRECLÍNICA, CON MODELOS
EXPERIMENTALES REPRODUCIBLES.
IV.- DISCUSIÓN PARA LA PRESENTACIÓN DE ARTICULOS PARA LA PRESENTACIÓN DEL PROYECTO DE INVESTIGACIÓN
1. Artículos de investigación preclínica 2. Modelos experimentales aplicables y reproducibles.
V.- METODOLOGIA DE LA REVISION DE ARTICULOS:
1. Presentar los artículos en la clase de práctica de laboratorio, 2. Comentar, en cada mesa de trabajo. 3. En cada mesa de trabajo definir un tema para su trabajo de investigación. 4. Presentar el(los) objetivo(s) de su proyecto de investigación.
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Son Fármacos que suprimen selectivamente las crisis convulsivas, sin provocar mayor depresión del sistema nervioso en general (hipnosis, analgesia, etc.). Experimentalmente es posible provocar crisis convulsivas semejantes a las crisis típicas de la epilepsia humana, mediante diversos tipos de excitaciones: traumáticas, eléctricas, químicas, acústicas, etc., siendo posible medir la aptitud del anticonvulsivante para alterar el umbral convulsivo.
II.- LOGRO
Al Finalizar la práctica el alumno será capaz de: Evaluar el grado de protección anticonvulsivante de los fármacos utilizados en la práctica frente a las convulsiones inducidas por pentilenotetrazol.
III.- PUNTOS IMPORTANTES PARA EL ALUMNO (antes de la Practica)
1. Bioquímica y Neurotransmisor en el S.N.C. 2. Convulsiones, etiología, tipos. 3. Farmacología de pentilenotetrazol. Características de las Convulsiones. 4. Farmacología de la Fenitoína, Diazepam, Fenobarbital. 5. Desarrollar el cuestionario
IV.- OBJETIVO
Evaluar el grado de protección anticonvulsivante de los fármacos utilizados en la práctica frente a las convulsiones inducidas por pentilenotetrazol.
1. Observar la actividad espontánea, reflejo de enderezamiento de cada uno de los ratones y luego calcular el volumen de cada Fármaco que inyectará por Vía I.P. en el orden siguiente: Suero Fisiológico 10 mL/kg. Fenitoina 30 mg/kg. Diazepam 3 mg/kg. Fenobarbital 50 mg/Kg
2. Esperar 15 minutos y hacer las observaciones como en el paso N° 1
3. Administrar Pentilenotetrazol 100 mg/kg. Vía S.C. Anotar la hora. 4. Observar el grado de protección comparando: P.L., INTENSIDAD de las convulsiones
(Leve, Moderado e Intenso) y Tipo de Convulsiones con respecto al control.
5. Cada Mesa (sub-grupo) trabajara con su grupo control (S.F.) y los tratamientos
6. Tabular y comentar los resultados.
ANTICONVULSIVANTES FRENTE A PENTILENOTETRAZOL
RATON
PESO (g)
FARMACOS
Vol.
(mL.) TTOS
ADM. PTZ (mL.)
P.L.
INTENSIDAD
CONVULSIONES ( L – M – I)
OBSERVACIONES
SUERO FISIOLOGICO
(Control)
FENITOINA (Tratamiento)
DIAZEPAM (Tratamiento)
FENOBARBITAL
(Tratamiento)
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Discusión de lo observado:............................................................................................................. ............................................................................................................................................................. .............................................................................................................................................................
VII.- CUESTIONARIO:
1. ¿Cuál es la farmacocinética de Fenitoina, Fenobarbital y Diazepam? 2. ¿Cuál es el mecanismo de acción de Pentilenotetrazol PTZ (pentilenetetrazol o cardiazol)
para Inducir convulsión experimental? Y ¿Qué fármaco(s) utilizados en clase considerando su mecanismo de acción protegerán dicha acción del PTZ?
p.D. Solo se recibirá máximo 03 páginas del cuestionario.
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I.- INTRODUCCION: Los bloqueadores Neuromusculares (BNM) son fármacos que interrumpen la transmisión del impulso nervioso en la unión mioneural, provocando parálisis y relajación muscular en forma reversible. Han recibido el nombre de drogas curarizantes debido al curare (término genérico aplicado a diversos extractos vegetales), usado durante siglos como veneno de flechas, que contienen alcaloides cuaternarios o terciarios con propiedades bloqueantes neuromusculares EXPERIMENTO: FARMACOS CON ACCION EN PLACA MIONEURAL : IN VIVO
II.- COMPETENCIA
Al Finalizar la práctica el alumno será capaz de: 1. DIMENSIONAR LAS MANIFESTACIONES QUE INDUCE LA ADMINISTRACIÓN DE UN
FÁRMACO NO DESPOLARIZANTE VS. DESPOLARIZANTE EN EL POLLO. 2. VALORAR LOS EFECTOS DE LOS ANTICOLINESTERÁSICOS SOBRE LAS
MANIFESTACIONES DE AMBOS GRUPOS DE FÁRMACOS.
III.- PUNTOS IMPORTANTES PARA EL ALUMNO (antes de la práctica):
1. Fisiología de la Unión Neuromuscular 2. Grupos Farmacológicos de Bloqueadores Neuromusculares. 3. Mecanismo de Acción de los Bloqueadores Neuromusculares. 4. Farmacología de la Succinilcolina y Vecuronio. 5. Desarrollar el cuestionario
IV.- OBJETIVOS
1. DIFERENCIAR LAS MANIFESTACIONES QUE INDUCE LA ADMINISTRACIÓN DE UN FÁRMACO NO DESPOLARIZANTE VS. DESPOLARIZANTE EN EL POLLO.
3. OBSERVAR LOS EFECTOS DE LOS ANTICOLINESTERÁSICOS SOBRE LAS MANIFESTACIONES DE AMBOS GRUPOS DE FÁRMACOS.
V.- MATERIALES:
1. Biológico:
04 Pollos pequeños 600 – 850 gr. / grupo de sub-grupo de P.L.
1. Pesar y marcar los pollos. 2. Inyectar a un pollo 100 ug/Kg. De succinilcolina y al otro 200 ug/Kg de Vecuronio: por Vía
Intramuscular (IM), administrar lentamente hasta ver efecto. 3. Observar cuidadosamente los efectos especialmente en cuello, párpados y patas, anotar
tiempo de presentación de efectos. 4. A los otro dos pollos administrar por Vía I.M. 150 ug/Kg. de Neostigmina y 10 minutos
después, la Succinilcolina y el Vecuronio a las dosis y Vía indicadas. 5. Anotar las diferencias en relación a lo observado anteriormente. NOTA: Puede administrarse Atropina 250 ug/Kg. Vía IM. Junto con la Neostigmina.
RESULTADOS
POLLO
PESO
POLLO (g.)
VOLUMEN FÁRMACO
(mL.)
P.L.
(seg. y/o min.)
APARIENCIA
OBSERVACIONES
Parpados
Cuello
Patas
Otros
A) SUCCINILCOLINA
B) VECURONIO
D) NEOSTIGMINA +
SUCCINILCOLINA
E) NEOSTIGMINA
+ VECURONIO
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Discusión de lo observado:............................................................................................................. ............................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................. .............................................................................................................................................................
VII.- CUESTIONARIO: 1. Fisiología en la unión neuromuscular. 2. Dentro de la farmacodinamia de los Bloqueadores Neuromusculares , indicar. ¿Cuál es el orden
de sensibilidad de los músculos ante la administración de un bloqueador competitivo o un bloqueador despolarizante?
3. Indicar ¿Cuál es el Mecanismo de acción de Succinilcolina? Y como consecuencia a dicho
mecanismo de acción ¿Qué Rams puede presentar y cómo se puede controlar la hipertermia maligna?
p.D. Solo se recibirá máximo 04 páginas del cuestionario.
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REVISION DE ARTICULOS – DISEÑO DE MODELO EXPERIMENTAL
I.- INTRODUCCION: La revisión de artículos, nos permite obtener información específica y afianzar los contenidos de
las clases teóricas y prácticas, para ello es necesario hacer uso de buscadores especializados. La investigación bibliográfica fortalecerá, la elaboración del proyecto de investigación y principalmente la búsqueda del modelo experimental para plantearlo en el proyecto de investigación.
II.- PUNTOS IMPORTANTES PARA EL ALUMNO (antes de la práctica):
1. Búsqueda de artículos en revistas especializadas, identificando el modelo experimental. 2. Leer el artículo completo y extraer el modelo experimental para su posible aplicación en el
trabajo de investigación.
III.- OBJETIVOS: 1. IDENTIFICAR BIBLIOGRAFIA ESPECIALIZADA Y ARTICULOS DE INVESTIGACIÓN
PRECLINICA. 2. ELEGIR EL ARTÍCULO DE INVESTIGACIÓN PRECLINICA, CUYO CON MODELO
EXPERIMENTAL SEA REPRODUCIBLE Y APLICABLE.
IV.- METODOLOGIA DE LA REVISION DE ARTICULOS:
1. Presentar los artículos ya elegidos en la clase de práctica de laboratorio, 2. Presentar el modelo experimental. 3. En cada mesa de trabajo se definirá su Modelo Experimental para Presentar en su
Proyecto.
V.- FORMATO PARA LA PRESENTACION DEL PROYECTO DE INVESTIGACIÓN La plantilla para presentación del PROYECTO DE INVESTIGACIÓN (diseño experimental) es la siguiente:
1. Título del trabajo de investigación 2. Autores 3. Asesores 4. Descripción del estudio 5. Antecedentes y fundamentación científica 6. Hipótesis (si el estudio lo requiere) 7. Objetivos 8. Metodología del trabajo: Materiales, métodos, metodología para el análisis de los resultados 9. Presupuesto 10. Referencias Bibliográficas
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I.- INTRODUCCION: Los diuréticos son fármacos que aumentan el volumen de orina excretado por los riñones, siendo útiles en el alivio del edema y la ascitis que frecuentemente acompañan a enfermedades cardiacas, renales y hepáticas. (Insuficiencia cardiaca congestiva, síndrome nefrótico, hipertensión, etc.)
II.- LOGRO:
Al finalizar la práctica el alumno será capaz de: ANALIZAR LOS EFECTOS DE LOS DIURÉTICOS UTILIZADOS EN EL MODELO EXPERIMENTAL.
III.- PUNTOS IMPORTANTES PARA EL ALUMNO (antes de la práctica):
1. Fisiología del manejo de los líquidos corporales por el riñón. 2. Fármacos Diuréticos: Clasificación y Mecanismos de Acción. 3. Características Farmacológicas de: Furosemida, Hidroclorotiazida. 4. Desarrollo del cuestionario
IV.- OBJETIVO:
EVIDENCIAR LOS EFECTOS EN EL VOLUMEN URINARIO DE LOS FÁRMACOS DIURÉTICOS UTILIZADOS EN EL EXPERIMENTO.
V.- MATERIALES:
1. Material Biológico: 02 Ratas 180 – 200 g. / cada mesa de P.L. 2. Material Farmacológico:
Hidroclorotiazida Sol. 10 mg/mL. (N.C. DIURACE)
Furosemida Sol. 10 mg/mL. (N.C. LASIX)
Suero Fisiologico sol. 1 mg/mL. 3. Otros:
Jaulas metabólicas
Sonda orogástrica
03 jeringas de 1 mL. (por cada subgrupo) y 02 jeringas de 10ml.
Guantes por cada alumno (obligatorio)
VI.- PROCEDIMIENTO:
1. Someter a ayuno por 24 horas sin privación de agua.
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2. Hidratar con suero fisiológico (20 ml/kg.) tibio, usando la Vía Oral y Vía IP. 3. Colocar las ratas en jaulas metabólicas (02). 4. Recolectar orina basal durante 40 minutos: registrar el volumen.
5. Administrar los fármacos Vía IP: Hidroclorotiazida 10 mg/kg. Furosemida 10 mg/kg. 6. Recolectar orina post-administración de fármacos, durante 40 minutos: registrar el volumen. 7. Tabular, comparar y discutir los resultados.
CUADRO Nº 01: Actividad diurética de las ratas:
RATA PESO (gr)
ADMINISTRACION DE FARMACOS
MEDICIONES
DE VOLUMEN (mL.) DE ORINA
OBSERVACIONES
FARMACO
VOL. (mL.)
40’
BASAL
80’
TTO.
FUROSEMIDA
HIDROCLOROTIAZIDA
CUADRO Nº 02: Resumen:
FÁRMACOS
mL. / kg. / h.
OBSERVACIONES
BASAL
TRATAMIENTO
FUROSEMIDA
HIDROCLOROTIAZIDA
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1. ¿Cómo se clasifican los diuréticos según lugar de acción? .Esquematizar señalando lugar
de acción y señalando los nombres de los diuréticos que correspondan. 2. Según Mecanismos de acción ¿Cómo se clasifican los diuréticos que se utilizarán en la
práctica de laboratorio?. Señale además sus Rams. p.D. Solo se recibirá máximo 03 páginas del cuestionario.
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I.- INTRODUCCION: Varios factores de la coagulación son dependientes de la vitamina K para su síntesis, por ello algunos de los anticoagulantes orales (cumarinas) interfieren con la biosíntesis de tales factores, en tanto otros como heparina, ejercen su efecto anticoagulante “In Vivo” e “In Vitro” por inhibir uno o más factores de la coagulación.
II.- LOGRO:
Al finalizar la práctica el alumno será capaz de: VALORAR LA ADMINISTRACIÓN DE LA HEPARINA “In Vivo” EN ANIMALES DE EXPERIMENTACION.
III.- PUNTOS IMPORTANTES PARA EL ALUMNO (antes de la práctica):
1. Cascada de la coagulación, vía intrínseca y vía extrínseca. 2. Clasificación de las heparinas 3. Farmacología de los Anticoagulantes 4. Desarrollo del cuestionario
IV.- OBJETIVO:
DEMOSTRAR SI LA ADMINISTRACIÓN DE LA HEPARINA “In Vivo” MODIFICA EL TIEMPO DE COAGULACIÓN EN EL RATÓN.
V.- MATERIAL:
1. Material Biológico: 03 Ratones por cada mesa de P.L. 2. Material Farmacológico:
Heparina Sol. 100 UI /mL.
Protamina Sol. 1mg/ml
Suero fisiologico Sol. 0.1 mL/10 g.
Jeringas Sol. 1 mg/mL.
Un cronometro o reloj con segundero.
Cuadro de vidrio 15 X 15 cm.
Una hoja de rasurar.
Capilares sin heparina
Guantes por cada alumno (obligatorio)
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VI.- PROCEDIMIENTO: 1. Marcar y pesar los ratones 2. Ejecute tres marcas transversales con un plumón fino a una distancia de 2.5, 4.5 y 6.5 cm., a
partir del extremo del capilar; Extremo A (que se denomina al extremo del capilar marcado con una línea de color azul) que se denominaran marcas 1, 2 y 3.
3. Datos básales para cada ratón:
ANTES DE ADMINISTRAR LOS TRATAMIENTOS TOMA DE MUESTRA DE SANGRE: Sujete e inmovilice al ratón y sumerja la cola del ratón
en un baño con agua a 40ºC para dilatar la vena. Inmediatamente seque la cola y corte el extremo terminal de la misma con la hoja de rasurar sobre la superficie de vidrio. Coloque el extremo A del capilar en contacto con la parte sangrante de la cola; llene por capilaridad el tubo hasta la marca 1.0. Si no es posible, la técnica anterior, tome la muestra de sangre de
uno de los ojos por capilaridad hasta la marca 1 del capilar. 4. Datos Post-Tratamiento:
Separa en grupos de 02 ratones por cada mesa y administrar por vía IP:
Control: S.F. 0.1 mL./10 g. peso
Heparina: Dosis: 1000 UI/kg.
Heparina + Protamina (Dosis Protamina: 1000 UI/kg.) 5. Luego de 15 minutos de la administración de cada una de las soluciones.
TOMA DE MUESTRA DE SANGRE: (ídem a los datos básales) 6. Anote el tiempo de coagulación y analice los resultados.
TABLA 1: Recolección de datos:
PESO DEL
RATÓN (g.)
FÁRMACOS
BASAL
Tiempo de Coagulación
(min. y/o seg.)
VOL. SOL.
Fármacos a Administrar
(mL.)
HORA DE
ADMINISTRACIÓN
TRATAMIENTO
Tiempo de Coagulación
(min. y/o seg.)
CONTROL
Suero Fisiológico
TRATAMIENTO
Heparina
TRATAMIENTO
Heparina + Protamina
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TABLA 2: Resultados del tiempo de coagulación (min. y/o seg.)
FÁRMACOS
TIEMPO DE COAGULACIÓN (min. y/o seg.)
OBSERVACIONES
BASAL
TRATAMIENTO
CONTROL
Suero Fisiológico
TRATAMIENTO
Heparina
TRATAMIENTO
Heparina + Protamina
Discusión de los resultados:............................................................................................................ ............................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................. .............................................................................................................................................................
VII.- CUESTIONARIO:
1. ¿Rol fisiológico de la heparina? 2. Señale ¿Cuáles son las diferencias farmacocinéticas entre la Heparina de bajo peso
molecular (HBPM ) y la Heparina no fraccionada (HNF)? 3. ¿cuál es el mecanismo de acción tanto de HBPM y HNF? y ¿Qué factores de la coagulación
inhiben principalmente? p.D. Solo se recibirá máximo 03 páginas del cuestionario.
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PROYECTO DE INVESTIGACIÓN APROBADO Y ENTREGADO – SOLICITUD DE MATERIALES
I.- INTRODUCCION:
Los trabajos de investigación, son desarrollados por los alumnos con la asesoría de su profesor de práctica de laboratorio, y además podrán elegir otro asesor de preferencia profesor del curso o si el modelo experimental lo amerita, podrán elegir otro docente de la facultad. Presentaran su proyecto, lo desarrollaran en el Laboratorio de Farmacología, se prepara una monografía que será entregada al finalizar el proyecto, según programación la misma que quedara en el archivo del laboratorio.
II.- LOGRO: . Al finalizar el trabajo de investigación el alumno será capaz de:
DISEÑAR Y EJECUTAR PROYECTOS DE INVESTIGACIÓN DE TIPO PRE-CLINICO.
III.- OBJETIVOS: .
1. INCENTIVAR A LA INVESTIGACIÓN PRE-CLÍNICA DE SUSTANCIAS CON ACTIVIDAD FARMACOLÓGICA
2. DESARROLLAR HABILIDADES Y DESTREZAS EN MANEJO DE INFORMACIÓN BIBLIOGRAFICA, MODELOS EXPERIMENTALES Y DISEÑO DE PROYECTO DE INVESTIGACIÓN.
IV.- INSTRUCCIONES GENERALES
1. Los alumnos son responsables de adquirir su material biológico. 2. El grupo de trabajo elaboraran la lista de material farmacológico, sales, material de vidrio y/o
equipos requeridos; presentaran a su profesor, para que él solicite a la coordinación de prácticas. El Laboratorio les otorgara las sales, equipos y fármacos con que cuenta en stock, en caso de no contar en el stock o con el stock necesario deberá ser adquirido por el grupo de alumnos.
3. El profesor responsable de cada grupo de práctica, supervisara y monitoreara la ejecución del
proyecto; 4. Toda entrega de materiales se hará con cargo, para el desarrollo del experimento dentro del
laboratorio bajo la supervisión del profesor y responsabilidad de profesor y alumnos. 5. El desarrollo de la parte experimental del proyecto debe realizarse en el laboratorio de
farmacología, NO se permitirá realizar en otros laboratorios o fuera de la facultad y/o universidad, salvo que el trabajo lo amerite, con previa autorización de la Coordinadora del Curso.
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6. El uso del Laboratorio deberá ceñirse a su horario de práctica así como también al horario del
curso. 7. El préstamo de materiales para fuera del laboratorio (en caso de ser necesario) deberá ser
coordinado previamente por el profesor responsable, el mismo que solicitara la autorización a la coordinadora de prácticas del curso.
8. El material de vidrio u otros que se rompan, deterioren o se pierdan deberán ser repuestos por
los responsables antes del quinto examen de teoría.
9. Los alumnos podrán dejar su material biológico en el BIOTERIO por el tiempo que dure el desarrollo del proyecto, con la responsabilidad de alimentarlos (alimento y agua) y estar atentos de su cuidado; al concluir el experimento deberán retirarlos.
10. Cada vez que los alumnos usen el laboratorio deberán dejarlo en condiciones óptimas de
limpieza y orden.
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Existen fármacos que pueden alterar el flujo activo del soluto y agua, y agentes que pueden producir, evacuación del intestino cuando se requiere desde el punto de vista médico. Aunque el tratamiento farmacológico inespecífico de la diarrea se conserva como norma clínica, conocer los tipos de esta alteración ayudará al médico a saber en que momento emplear antidiarreicos inespecíficos y cuando recurrir a los agentes más específicos. Para tratar con eficacia la diarrea se cuenta con opioides que tienen actividad mínima en el sistema nervioso central, a menudo se usan en combinación con antibióticos dirigidos contra una causa infecciosa (p/e. diarrea del viajero y la relacionada con el SIDA).
II.- LOGRO:
Al finalizar la práctica el alumno será capaz de: VALORAR LA UTILIZACION DE LOPERAMIDA EN LA DIARREA
III.- PUNTOS IMPORTANTES PARA EL ALUMNO (antes de la práctica):
1. Fisiología de la motilidad del músculo liso intestinal. 2. Loperamida. Efecto Constipante. Mecanismo de Acción. Farmacodinamia. Usos terapéuticos. 3. Farmacología de Metilcelulosa. 4. Desarrollo del cuestionario
IV.- OBJETIVO:
OBSERVAR E INTERPRETAR LA ACCIÓN DE LOPERAMIDA SOBRE EL TRÁNSITO INTESTINAL.
V.- MATERIAL:
1. Material Biológico: 02 Ratones / por cada mesa de P.L. 2. Material Farmacológico: Loperamida Sol. 1 mg/Ml. (Veh. Metilcelulosa sol. 0.2%)
(N-.C. LOPERAMIDA 1 mg. Tab.IMODIUM 2 mg. Cáp.) Metilcelulosa Sol. 0.2% Carbón activado Sol. 5% en goma de tragacanto al 5%.
3. Equipos: Cánula orogástrica para ratones Tecnopor (plancha A4) 20 cm x 15 cm Alfileres. Equipo de disección 01 pliego de Papel Kraff Cinta métrica 03 Jeringas de 1 ml
Guantes por cada alumno (obligatorio)
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Pesar y marcar los ratones, Luego administrar por vía intragástrica:
A un ratón Metilcelulosa sol. 0.2 % 0.1 mL./ 10 gr. de peso. A otro ratón Loperamida 10 mg/kg.
Anote los datos en la tabla I. Después de 30 min. Administrar por la misma vía la suspensión de carbón 0.1 ml/10 g. de
peso. Anote la hora de administración en la tabla I. Después de 30 min. Sacrificar a los animales por dislocación cervical. Realice una laparotomía y remueva el tracto gastrointestinal completo (desde el estómago
hasta el ciego). Mida a partir del píloro la distancia recorrida por la suspensión de carbón (se distingue por el
color negro del contenido intestinal). Esta medida indicará el tránsito intestinal. Anote el desplazamiento para cada intestino en la columna de la tabla I.
En la tabla II anote los resultados obtenidos en todos los grupos y se calcula la medida de los controles y los tratados.
TABLA I
GRUPOS
EXPERIMENTALES
PESO
(g.)
VOLUMEN
ADMINISTRAR ((mL.)
HORA ADM. FÁRMACOS
HORA ADM.
CARBÓN
HORA
DE SACRIFICIO
DESPLAZAMIENTO DEL CARBÓN (cm.)
Ratón
Metilcelulosa (control)
Ratón
Loperamida
TABLA II
GRUPOS EXPERIMENTALES
DESPLAZAMIENTO OBSERVADO
1
2
3
4
5
6
X
PROMEDIOS
Metilcelulosa
(Control)
X
X
X
Loperamida
X
X
X
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Los oxitócicos estimulan el músculo liso del útero, dependiendo la respuesta de la influencia de hormonas estrogénicas y progestacionales; las primeras aumentan la respuesta mientras que la progesterona disminuye la capacidad de respuesta y coordinación. El estudio experimental de los oxitócicos se puede realizar "In Vivo", sobre el útero "In Situ" o "In Vitro" sobre el órgano aislado y en la evaluación de los mismos es necesario establecer duración, amplitud y frecuencia de las contracciones.
II.- LOGRO: . Al finalizar la práctica el alumno será capaz de:
PREDECIR LOS DIFERENTES EFECTOS REFERIDOS AL RITMO, INTENSIDAD Y FRECUENCIA DE LAS CONTRACCIONES UTERINAS PRODUCIDAS POR LA ADMINISTRACION DE FÁRMACOS.
III.- PUNTOS IMPORTANTES PARA EL ALUMNO (antes de la práctica):
1. Fisiología de las contracciones Uterinas 2. Oxitocina. Ergonovina : Farmacocinética y Farmacodinamia. 3. Isoxuprina, Sulfato de Magnesio: Farmacocinética y Farmacodinamia. 4. Estudios experimentales de órganos aislados 5. Desarrollo del cuestionario
IV.- OBJETIVOS: OBSERVAR LOS DIFERENTES EFECTOS REFERIDOS AL RITMO, INTENSIDAD Y
FRECUENCIA DE LAS CONTRACCIONES UTERINAS PRODUCIDAS POR LOS FÁRMACOS UTILIZADAS EN LA PRÁCTICA.
V.- MATERIAL:
Material Biológico : 01 Rata 180 – 230 g. por cada sub-grupo de P.L. Material Farmacológico: Ergonovina Sol. 10 – 4 M (N.C. ERGOTRATE)
Isoxuprina Sol. 10 -5 M (DILATOR Amp.) Oxitocina Sol. 10 – 6 M (PITOCIN Amp.) Sulfato de Magnesio Sol. 10 – 5 M Liquido Nutricio Sol. JALON
Equipo : Baño para órganos aislados a 38° C
Bomba de aire
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Quimógrafo Papel ahumado 02 Jeringas de 1 ml. Por mesa Guantes por cada alumno (obligatorio)
VI.- PROCEDIMIENTO:
1. Sacrificar la rata mediante un golpe en la nuca. 2. Disecar con cuidado el útero. 3. Dividir las dos astas. 4. Atar un hilo a cada extremo y montar la preparación en el baño con líquido nutricio a la
temperatura indicada. 5. Permitir la estabilización de la preparación durante 20 a 30 minutos. 6. Observar un trazado basal en el quimografo durante dos minutos. 7. Añada 0.2 mL. de los fármacos, permitiendo que cada fármaco actúe por dos minutos. Lavar
la preparación antes del segundo basal para agregar los siguientes fármacos. Orden de administración de los fármacos:
Discusión de lo observado:............................................................................................................. ............................................................................................................................................................. ............................................................................................................................................................. .............................................................................................................................................................
VIII.- CUESTIONARIO:
1. Señale los efectos tanto de Ergonovina y Oxitocina en útero y ¿Cuáles son sus mecanismos de acción y sus aplicaciones clínicas?
2. ¿Qué mecanismos de acción presentan Isoxsuprina y Sulfato de magnesio para su efecto
Tocolítico?. p.D. Solo se recibirá máximo 03 páginas del cuestionario.
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EJECUCION DEL TRABAJO DE INVESTIGACION, PRESENTACION DE
MONOGRAFIA Y SUSTENTACION
I.- INTRODUCCION:
La ejecución de proyecto de investigación es responsabilidad del equipo de trabajo, el mismo que deberá ceñirse a las condiciones señaladas en las Practicas de laboratorio Nº 04, 07 y 10; los mismos que son desarrollados por los alumnos con la asesoría y supervisión de su profesor de práctica de laboratorio. Preparan una monografía que será entregada al finalizar el proyecto, según programación la misma que quedara en el archivo del laboratorio.
II.- LOGRO: . Al finalizar el trabajo de investigación el alumno será capaz de:
DISEÑAR Y EJECUTAR PROYECTOS DE INVESTIGACIÓN DE TIPO PRE-CLINICO.
III.- OBJETIVOS: .
1. Incentiva a la investigación pre-clínica de sustancias con actividad farmacológica 2. Desarrollar habilidades y destrezas en manejo de información bibliográfica, modelos
experimentales e interpretación de los resultados. 3. Sustentar ante el auditorio el resultado de su investigación
IV.- INSTRUCCIONES GENERALES
1. Los alumnos son responsables de adquirir su material biológico y el resto de materiales se solicitara previa coordinación con la coordinación de prácticas.
2. El Profesor Responsable de cada grupo de práctica, supervisara y monitoreara la ejecución del proyecto; así mismo velara por la buena marcha dentro del laboratorio.
3. La entrega del proyecto, ejecución y entrega de monografía más cd deben cumplirse de acuerdo a la programación de practicas de laboratorio (pág. 05).
4. Los alumnos sustentaran los resultados de su investigación ante el(los) profesor(es) de práctica(s) de laboratorio
5. La evaluación, será de acuerdo a los criterios de evaluación señalados en la (pág. 04).
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6. Todo alcance que no se mencione en la presente, se publicara en la VITRINA DE FARMACOLOGIA, que se ubicara en el tercer piso del complejo de Laboratorios. Por lo tanto los alumnos estarán siempre vigilantes a las publicaciones en la vitrina.
V.- FORMATO PARA EL INFORME DEL TRABAJO DE INVESTIGACION (MONOGRAFIA)
La presentación y sustentación del trabajo de investigación se realizara la última semana de práctica de laboratorio (semana 14) tal como se señala en la programación.
La plantilla para presentación del trabajo de investigación (monografía) es la siguiente:
1. Título: Breve y representativo del contenido del trabajo de investigación 2. Autores, Coautores y Asesores 3. Resumen: En español y en inglés, con un límite de 200 palabras, consignando las palabras
claves, al final del resumen. 4. Introducción: Exposición breve de los antecedentes y del objetivo del trabajo. 5. Materiales y Métodos: Descripción concreta y precisa de las características de la muestra y
de la metodología usada en el estudio. 6. Resultados: Expresión de los hallazgos en forma clara, evitando las interpretaciones, salvo
las de alcance estadístico. Se pueden presentar en forma de tablas y/o figuras (gráficos, dibujos, fotografías, etc.)
7. Discusión de los resultados: Interpretación de los resultados, comparándolos con la
experiencia de otros autores, exponiendo las sugerencias, postulados o conclusiones a los que llegue el autor.
8. Conclusiones: Si el o los autor(es) lo creen conveniente 9. Bibliografía: En orden alfabético señalando: autor, nombre del texto o revista, año, edición, y
páginas. En caso de revistas señalar el nombre del artículo.
UNIVERSIDAD RICARDO PALMA CICLO ACADÉMICO
FACULTAD DE MEDICINA HUMANA GUIA PRÁCTICA DE LABORATORIO DE FARMACOLOGÍA 2010-II
Goodman y Gilman (2006) .Bases Farmacológicas de la Terapéutica. 11ava. Edición .Editorial McGraw Hill - Interamericana. 2 Tomos.
Katzung Bertram (2005) Farmacología Básica y Clínica. 9ma Edición. México, Editorial El Manual Moderno.
b) Bibliografía Complementaria:
Flores J., Armijo J. A., Mediaville(2003) Farmacología Humana 4ta. Edición. Editorial M. Masson.
Litter Manuel (1991) Farmacología Experimental y Clínica. 7ma. Edición. Editorial El Ateneo
Velasco M:, A. P. Lorenzo; A. Moreno; C. Leza, (y otros) (2004) , Velásquez Farmacología Básica y Clínica. 1ra. Edición. Editorial Mc Graw Hill Interamericana.
