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PCR Polymerase Chain Reaction
(Reazione a Catena della Polimerasi)
Mullis, K.B. (1990) The unusual origin of the polymerase chain reaction. Scientific American. 262 (4) 56-65.
Kary Mullis
POLYMERASE CHAIN REACTION - PCR
Premio Nobel per la Chimica nel 1993, Kary Mullis è divenuto una leggenda per la scoperta della Reazione a catena della polimerasi (Polymerase Chain Reaction o PCR) una tecnica che ha rivoluzionato il mondo della chimica e della Biologia Molecolare, permettendo lʼamplificazione in vitro di frammenti di DNA, con innumerevoli applicazioni in campo biologico, medico, agrario, e nelle investigazioni della magistratura.
1. E’ un procedimento molto semplice che consente di ottenere un numero elevatissimo di copie di uno specifico segmento di DNA
2. La PCR è una tecnica molto sensibile che consente di rivelare la presenza del DNA o dell’RNA di interesse partendo da quantità minime di materiale biologico
POLYMERASE CHAIN REACTION (PCR)
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Estensione - Forcina di Replicazione 5’
5’ 5’ 3’
3’ 5’ 3’ 3’
Leading Strand (veloce)
Lagging Strand (lento)
3’
5’ 3’
5’ Single Strand Binding proteins (SSB)- Impediscono la rinaturazione del DNA
DNA Polimerasi
III
Okazaki fragment
RNA Primers
Primasi sintetizza primers di RNA
5’ 3’
5’
Elicasi- srotola il DNA (DnaB)
5’
Primers DNA polimerasi
ELEMENTI NECESSARI PER LA REAZIONE DI AMPLIFICAZIONE
DNA STAMPO
DESOSSIRIBOSIO
Base Azotata (Adenina, Timina, Citosina, Guanina,)
DesossiriboNucleotidi trifosfati (dNTP)
1) Frammento di DNA contenente il segmento da amplificare
2) Coppia di inneschi (o primers) per la DNA Polimerasi: oligonucleotidi lunghi 17-30 basi, di sequenza complementare a quelle fiancheggianti il segmento di DNA da amplificare.
3) TAQ DNA POLIMERASI
4) dNTP (N= A, C, G, T)
5) Mg2+
6) Apparecchio per PCR (es. Thermocycler)
ELEMENTI FONDAMENTALI PER LA REAZIONE DI PCR
5’ 5’ 3’ 3’
5’
5’ 3’
3’ 5’
5’ 3’
3’
Primer 1 Primer 2
1. DENATURAZIONE: il DNA viene denaturato a 94°C per separare fra loro i due filamenti che formano la doppia elica.
2. ANNEALING: la temperatura scende a 37-65°C (valore scelto in funzione della composizione in basi e della lunghezza degli inneschi) per consentire l’appaiamento fra gli inneschi e le due eliche di DNA ad essi complementari
3. ESTENSIONE: La temperatura sale a 72°C e la Taq Polimerasi sintetizza i nuovi filamenti di DNA partendo dai due inneschi in direzione 5’→3’utilizzando come stampo le due eliche di DNA.
UN CICLO DI PCR
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94°C
Fase 2: ANNEALING I primers si appaiano alle sequenze complementari sul DNA stampo
37-65°C
72°C
Fase 3: ESTENSIONE La DNA polimerasi allunga gli inneschi e produce 2 nuove catene di DNA
IL PROCESSO SI RIPETE
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Ad ogni ciclo il numero di molecole di DNA “copiato” raddoppia
ANNEALING 37°C - 65°C
ESTENSIONE 72°C
25-30 CICLI
DENATURAZIONE 94°C
DENATURAZIONE 94°C 3 min.
PCR: AMPLIFICAZIONE ESPONENZIALE DEL DNA STAMPO
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Numero di cicli 1 2 3 4 5 6 7 8 9
10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30
Numero di molecole di amplificati 2 4 8
16 32 64
128 256 512
1.024 2.048 4.096 8.192
16.384 32.768 65.536
131.072 262.144 524.288
1.048.576 2.097.152 4.194.304 8.388.608
16.777.216 35.544.432 67.777.216
134.217.728 268.435.456 536.870.912
1.073.741.724
Resa teorica di una reazione di PCR a partire da una singola copia di DNA
Y= N2n
Y= numero molecole di DNA amplificato N= numero molecole di DNA di partenza n= numero dei cicli di PCR
ANDAMENTO TEORICO DELLA PCR
Y = N2 n-1
• CICLO 3 22=4 • CICLO 4 23=8 • CICLO 5 24=16 • CICLO 6 25=32
STESSA FORMULA CON FATTORE DI CORREZIONE
1) Rappresentazione schematica dell’aumento dei prodotti di amplificazione in funzione del numero di cicli di PCR.
2) In questo caso, tra il 15 ed il 22mo ciclo esiste una relazione lineare tra il numero di cicli ed il prodotto di amplificazione ottenuto. Nei cicli successivi viene raggiunto il “plateau”.
CURVA DI REAZIONE PCR
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1. Denaturazione; 94°C 30 secs – 1min
2. Annealing; 37°C - 65°C 30 secs – 1min
3. Estensione/Polimerizzazione; 72°C 1min
OGNI CICLO DI PCR E’ COMPOSTO DA TRE FASI PCR
Elettroforesi su gel di Agarosio
Prodotto finale UV light
3-4 ore
ANALISI ELETTROFORETICHE
L’agarosio è uno zucchero che viene estratto da un’alga marina, ed è un polimero di unità costituite da D-galattosio e 3,6-anidro L-galattosio.
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LA PCR E’ UNA TECNICA DOTATA DI UNA ELEVATA SENSIBILITA’: CONTAMINAZIONI DA DNA POSSONO RAPPRESENTARE UN PROBLEMA
L’IMPORTANZA DI UN
CONTROLLO POSITIVO
E NEGATIVO DELLA REAZIONE
DI SOLITO SI USANO ZONE DI LAVORO DEDICATE,
CAPPE PER PCR AD U.V.
OTTIMIZZAZARE LE CONDIZIONI DI REAZIONE
X
√
• DNA/RNA: TESSUTI, CELLULE, SANGUE, BULBO PILIFERO, SALIVA, LIQUIDO SEMINALE
• DNA POLIMERASI TERMOSTABILE Taq polimerasi
• OLIGONUCLEOTIDI progettati ad hoc!
• BUFFER Tris-HCl (pH 7.6-8.0)
Mg2+
dNTPs (dATP, dCTP, dGTP, dTTP)
OTTIMIZZARE LE CONDIZIONI DI REAZIONE: I COMPONENTI PRINCIPALI
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• DNA/RNA: TESSUTI, CELLULE, SANGUE, BULBO PILIFERO, SALIVA, LIQUIDO SEMINALE
• DNA POLIMERASI TERMOSTABILE Taq polymerase
• OLIGONUCLEOTIDI progettati ad hoc!
• BUFFER Tris-HCl (pH 7.6-8.0)
Mg2+ dNTPs (dATP, dCTP, dGTP, dTTP)
OTTIMIZZAZARE LE CONDIZIONI DI REAZIONE: I COMPONENTI PRINCIPALI DELLA REAZIONE
• DNA/RNA: TESSUTI, CELLULE, SANGUE, BULBO PILIFERO, SALIVA, LIQUIDO SEMINALE
• DNA POLIMERASI TERMOSTABILE Taq polimerasi
• OLIGONUCLEOTIDI progettati ad hoc!
• BUFFER Tris-HCl (pH 7.6-8.0)
Mg2+ dNTPs (dATP, dCTP, dGTP, dTTP)
OTTIMIZZAZARE LE CONDIZIONI DI REAZIONE: I COMPONENTI PRINCIPALI DELLA REAZIONE
OTTIMIZZAZARE LE CONDIZIONI DI REAZIONE: I COMPONENTI PRINCIPALI DELLA REAZIONE
• DNA/RNA: TESSUTI, CELLULE, SANGUE, BULBO PILIFERO, SALIVA, LIQUIDO SEMINALE
• DNA POLIMERASI TERMOSTABILE Taq polymerase
• OLIGONUCLEOTIDI progettati ad hoc!
• BUFFER Tris-HCl (pH 7.6-8.0)
Mg2+ dNTPs (dATP, dCTP, dGTP, dTTP)
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PRIMER DESIGN
USO DI SOFTWARES SPECIFICI
OLIGO Medprobe
PRIMER DESIGNER Sci Ed software
Internet WEB SITE
http://seq.yeastgenome.org/cgi-bin/web-primer
CARATTERISTICHE DEI PRIMERS
• Lunghezza compresa tra 17-30 basi
• Contenuto di G+C pari al 40-50 %
• Valori di Tm simili.
• Evitare sequenze interne complementari
ACTG CAGT 3’ 5’
FORMAZIONE DI DIMERI E DI LOOP
ACTG
3’ TGAC
5’
5’
ACTG CAGT 3’ 5’
3’ TGAC GTCA
CALCOLO DELLA Tm
Tm = 81.5 + 16.6 (log 10 [ J+] + 0.41 (% G+C) - (600/l)
[ J+]= concentrazione di cationi monovalenti
Per esempio: PCR buffer = 60 mM (J+) Primers 20 mer 55% G+C
Tm = 81.5 - 20.3 + 22.6 -30 = 53.8 Ta (annealing) = Tm (3 - 12 °C)
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OTTIMIZZAZARE LE CONDIZIONI DI REAZIONE: I COMPONENTI PRINCIPALI DELLA REAZIONE
• DNA/RNA: TESSUTI, CELLULE, SANGUE, BULBO PILIFERO, SALIVA, LIQUIDO SEMINALE
• DNA POLIMERASI TERMOSTABILE Taq polymerase
• OLIGONUCLEOTIDI progettati ad hoc!
• BUFFER Tris-HCl (pH 7.6-8.0)
Mg2+ dNTPs (dATP, dCTP, dGTP, dTTP)
COMPONENTI VOLUME Concentrazione Finale
10 X PCR Buffer (MgCl2) 5µl 1X
dNTPs (2mM) 5µl 200µM
Upper primer (10pmols/µl) 5µl 1µM
Lower primer (10pmols/µl) 5µl 1µM
DNA Genomico da usare come stampo 500 ng/µl
2µl 1µg
Thermostable polymerase (2U/µl)
0.5µl 1 unit
H2O (50µl di volume Finale) 27.5µl
UN ESEMPIO TIPICO DI REAZIONE
25 – 50 µl in tubini Eppendorf (0.5ml) C1V1=C2V2
5’ 3’ 5’ 3’
Region to be amplified
5’ 3’ 5’ 3’
Design primers with this sequence information
Identical to this sequence
Reverse complement of this sequence
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5’ 3’ 5’ 3’
PCR CYCLE 1
Primers
Taq
Taq 5’
5’ 3’
3’
PCR CYCLE 1
Primers
Taq
Taq
Taq polymerase is thermostable
3’ 5’
5’ 3’
PCR CYCLE 1
Taq Taq
Forward primer anneals to lower strand Reverse primer anneals to upper strand
3’ 5’
5’ 3’
PCR CYCLE 1
Taq Taq
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3’ 5’
5’ 3’
PCR CYCLE 1
Taq
Taq
Taq synthesises DNA in the 5’ to 3’ direction
3’ 5’
5’ 3’
PCR CYCLE 1
Taq
Taq
Taq synthesises DNA in the 5’ to 3’ direction
3’ 5’
5’ 3’
PCR CYCLE 1
Taq
Taq
Taq synthesises DNA in the 5’ to 3’ direction
3’ 5’
5’ 3’
PCR CYCLE 1
Taq
Taq
Taq synthesises DNA in the 5’ to 3’ direction
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3’
5’
5’
3’
5’
3’
5’ 3’
PCR CYCLE 1
3’ 5’
5’ 3’
5’
5’ 3’
3’
PCR CYCLE 2
5’
5’
5’
PCR CYCLE 2