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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR FACULTAD DE … · research was based in the method Kirby Bauer,...

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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR FACULTAD DE ODONTOLOGÍA CARRERA DE ODONTOLOGÍA EFECTO INHIBITORIO DEL ACEITE ESENCIAL DE CÁSCARA DE NARANJA (CITRUS SINENSIS) AL 25, 50 Y 100 % EN CEPAS DE PORPHYROMONAS GINGIVALIS. Trabajo de investigación previo a la obtención del Título de Odontóloga Autor: Cevallos Andrade Andrea Lizeth Tutora: Dra. Sofía Carolina Santórum Chiriboga Quito, septiembre 2017
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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR

FACULTAD DE ODONTOLOGÍA

CARRERA DE ODONTOLOGÍA

“EFECTO INHIBITORIO DEL ACEITE ESENCIAL DE CÁSCARA

DE NARANJA (CITRUS SINENSIS) AL 25, 50 Y 100 % EN CEPAS

DE PORPHYROMONAS GINGIVALIS. “

Trabajo de investigación previo a la obtención del Título de Odontóloga

Autor: Cevallos Andrade Andrea Lizeth

Tutora: Dra. Sofía Carolina Santórum Chiriboga

Quito, septiembre 2017

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DERECHOS DE AUTOR

Yo, Andrea Lizeth Cevallos Andrade, en calidad de autor del trabajo de investigación

EFECTO INHIBITORIO DEL ACEITE ESENCIAL DE CÁSCARA DE

NARANJA (CITRUS SINENSIS) AL 25, 50 Y 100 % EN CEPAS DE

PORPHYROMONAS GINGIVALIS, autorizo a la Universidad Central del Ecuador a

hacer uso de todos los contenidos que me/nos pertenecen o parte de los que contiene esta

obra, con fines estrictamente académicos o de investigación. Los derechos que como

autor me corresponden, con excepción de la presente autorización, seguirán vigentes a

mi/nuestro favor, de conformidad con lo establecido en los artículos 5, 6, 8; 19 y demás

pertinentes de la Ley de Propiedad intelectual y su Reglamento. También autorizo a la

Universidad Central del Ecuador a realizar la digitación y publicación de este trabajo de

investigación en el repositorio virtual, de conformidad a lo dispuesto en el Art. 144 de la

Ley Orgánica de Educación Superior.

_________________________

Andrea Lizeth Cevallos Andrade

C.I: 1003324546

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APROBACIÓN DEL TUTOR DEL TRABAJO DE TITULACIÓN

Yo, Dra. Sofía Carolina Santorum Chiriboga, en mi calidad de tutora del trabajo de

titulación, modalidad Proyecto de Investigación, elaborado por Andrea Lizeth Cevallos

Andrade, cuyo título es: “EFECTO INHIBITORIO DEL ACEITE ESENCIAL DE

CÁSCARA DE NARANJA (CITRUS SINENSIS) AL 25, 50 Y 100 % EN CEPAS

DE PORPHYROMONAS GINGIVALIS”, previo a la obtención del Grado de

Odontólogo: considero que el mismo reúne los requisitos y méritos necesarios en el

campo metodológico y epistemológico, para ser sometido a la evaluación por parte del

tribunal examinador que se designe, por lo que lo APRUEBO, a fin de que el trabajo sea

habilitado para continuar con el proceso de titulación determinado por la Universidad

Central del Ecuador.

En la ciudad de Quito, a los 20 días del mes de Julio del 2017.

__________________________________

Dra. Sofía Carolina Santorum Chiriboga

DOCENTE-TUTORA

C.C: 1003445374

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APROBACIÓN DE LA PRESENTACIÓN ORAL/TRIBUNAL

El Tribunal constituido por Dr. Eduardo Estévez, Dr. Juan Pablo Jaramillo.

Luego de receptar la presentación oral del trabajo de titulación previo a la obtención del

título de Odontólogo presentado por la señorita Andrea Lizeth Cevallos Andrade.

Con el título:

EFECTO INHIBITORIO DEL ACEITE ESENCIAL DE CÁSCARA

DE NARANJA (CITRUS SINENSIS) AL 25, 50 Y 100 % EN CEPAS

DE PORPHYROMONAS GINGIVALIS.

Emite el siguiente veredicto:

Fecha: 20 de Septiembre del 2017

Para constancia de lo actuado firman

Nombre Apellido Calificación Firma

Presidente: Dr. Eduardo Estévez

Vocal 1: Dr. Juan Pablo Jaramillo

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DEDICATORIA

Este sueño hecho realidad está dedicado con mucho

amor a mis padres Adrianita Andrade M. y Ramiro

Cevallos P.; que son la principal motivación e

inspiración en mi vida, y a quienes admiro, respeto y

amo infinitamente, no sería nada sin ustedes.

A mis hermanos Álvaro y María José Cevallos A. que

confiaron siempre en mí y me brindaron su amor y

amistad incondicional.

A mi pequeño sobrino Benjamín Cevallos T. que llego a

este mundo a llenar de amor y alegría mi corazón.

Andrea Lizeth Cevallos Andrade

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AGRADECIMIENTOS

A Dios por darme paz y fé espiritual, cuidar siempre de

mí y toda mi familia.

A mis padres por brindarme su apoyo y amor

incondicional en los momentos más difíciles, por sus

consejos y por sus bendiciones diarias.

A mis hermanos por su cariño, por sus palabras de

aliento y por siempre creer en mí.

A la Universidad Central del Ecuador por abrirme sus

puertas, y a los profesores por contribuir con mi

formación académica universitaria.

De una manera muy especial agradezco a la Dra.

Carolina Santórum por sus tutorías académicas en el

desarrollo de esta investigación, por su tiempo,

paciencia y confianza.

Andrea Lizeth Cevallos Andrade

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ÍNDICE DE CONTENIDOS

DERECHOS DE AUTOR .............................................................................................. ii

APROBACIÓN DEL TUTOR DEL TRABAJO DE TITULACIÓN ....................... iii

APROBACIÓN DE LA PRESENTACIÓN ORAL/TRIBUNAL ............................. iv

DEDICATORIA ............................................................................................................. v

AGRADECIMIENTOS ................................................................................................ vi

ÍNDICE DE CONTENIDOS ....................................................................................... vii

ÍNDICE DE TABLAS .................................................................................................... x

ÍNDICE DE GRÁFICOS .............................................................................................. xi

ÍNDICE DE FIGURAS ................................................................................................ xii

RESUMEN ................................................................................................................... xiii

INTRODUCCIÓN .......................................................................................................... 1

CAPÍTULO I .................................................................................................................. 3

1.1. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA ................................................................................ 3

1.2. OBJETIVOS .................................................................................................................................... 5

1.2.2. OBJETIVOS ESPECÍFICOS .................................................................................. 5

1.3. JUSTIFICACIÓN ........................................................................................................................... 6

1.4. HIPÓTESIS ...................................................................................................................................... 7

1.4.1. HIPOTESIS DE INVESTIGACIÓN ..................................................................................... 7

1.4.2. HIPOTESIS NULA .................................................................................................................... 7

CAPÍTULO II ................................................................................................................. 8

2.1. MARCO TEÓRICO ....................................................................................................................... 8

2.1.1. ENFERMEDAD PERIODONTAL .......................................................................... 8

2.1.1.4.1. Biofilm ............................................................................................................ 10

2.1.1.4.2. Formación Del Biofilm ................................................................................... 11

2.1.1.6.1. Gingivitis ........................................................................................................ 14

2.1.1.6.2. Periodontitis .................................................................................................... 16

2.1.1.8. Control químico de la enfermedad periodontal ................................................. 22

2.1.1.8.1. Gluconato de clorhexidina .............................................................................. 22

2.1.1.8.1.1 Mecanismo De Acción ................................................................................. 22

2.1.1.8.1.2. Usos en Odontología .................................................................................. 23

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2.1.1.8.1.3. Efectos Adversos ........................................................................................ 23

2.1.2. PORPHYROMONAS GINGIVALIS ...................................................................... 25

2.1.3. PLANTAS MEDICINALES ................................................................................... 27

2.1.3.3. Fitoterapia Clásica ............................................................................................. 28

2.1.3.4. Aportes en Odontología ..................................................................................... 28

2.1.4. NARANJA COMÚN O CITRUS SINENSIS .......................................................... 29

2.1.4.1. Descripción Botánica ......................................................................................... 29

2.1.4.2. Taxonomía Reino .............................................................................................. 30

2.1.4.3. Morfología ......................................................................................................... 30

2.1.4.4. Composición Química ....................................................................................... 31

2.1.4.5. Propiedades y usos medicinales ........................................................................ 31

2.1.5.1. Obtención .......................................................................................................... 32

2.1.5.2. Propiedades Fisicoquímicas .............................................................................. 32

2.1.5.3. Composición Química ....................................................................................... 32

2.1.5.4. Propiedades Medicinales ................................................................................... 32

2.1.5.5. Actividad antibacteriana .................................................................................... 33

2.1.5.6. Hallazgos en Odontología ................................................................................. 34

CAPÍTULO III ............................................................................................................. 35

3.1. METODOLOGÍA ........................................................................................................................ 35

3.1.1. Tipo y diseño del estudio ...................................................................................... 35

3.1.2. Población de estudio y muestra ............................................................................ 35

3.1.4. Criterio de inclusión y exclusión .......................................................................... 35

3.1.6. Definición operacional de las variables ............................................................... 38

3.1.7.2. Materiales .......................................................................................................... 39

3.1.8.1. Extracción del aceite esencial de cáscara de naranja por destilación. ............... 40

3.1.8.2. Prueba de difusión por disco en agar ................................................................. 42

3.1.8.2.1. Activación de la cepa bacteriana .................................................................... 42

3.1.8.2.2. Estandarización y preparación del inóculo ..................................................... 44

3.1.8.2.3. Inoculación de las placas ................................................................................ 45

3.1.8.2.4. Colocación de discos ...................................................................................... 47

3.1.8.2.5. Lectura de resultados ...................................................................................... 49

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CAPÍTULO IV .............................................................................................................. 52

4.1. ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS ................................................. 52

4.1.1. Medición y recolección de datos .......................................................................... 52

4.1.2. Análisis de resultados ........................................................................................... 54

4.1.3. Prueba de Normalidad ......................................................................................... 54

4.1.4. Pruebas no paramétricas: Comparación entre sustancias .................................. 57

CAPÍTULO V ............................................................................................................... 68

5.1. DISCUSIÓN .................................................................................................................................. 68

5.2. CONCLUSIONES ....................................................................................................................... 70

5.3. RECOMENDACIONES ............................................................................................................ 71

BIBLIOGRAFÍA .......................................................................................................... 72

ANEXOS ....................................................................................................................... 76

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ÍNDICE DE TABLAS

Tabla 1 Operacional de las variables .............................................................................. 38

Tabla 2 Pruebas de normalidad ..................................................................................... 54

Tabla 3 Comparación entre sustancias ........................................................................... 57

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ÍNDICE DE GRÁFICOS

Gráfico 1 Campana de Gauss aceite al 25% .................................................................. 55

Gráfico 2 Campana de Gauss aceite al 50% .................................................................. 55

Gráfico 3 Campana de Gauss aceite al 100% ................................................................ 56

Gráfico 4 Campana de Gauss Clorhexidina al 0.12% ................................................... 56

Gráfico 5 Comparación de medias ................................................................................. 58

Gráfico 6 Diagrama de caja y bigotes del control negativo ........................................... 59

Gráfico 7 Diagrama de caja y bigotes del aceite al 25% ................................................ 60

Gráfico 8 Diagrama de caja y bigotes del aceite al 50% ................................................ 61

Gráfico 9 Diagrama de caja y bigotes del aceite al 100% .............................................. 62

Gráfico 10 Diagrama de caja y bigotes de la clorhexidina al 0.12%.............................. 63

Gráfico 11 Prueba Kruskal Wallis .................................................................................. 64

Gráfico 12 Prueba dos a dos o de emparejamiento ........................................................ 65

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ÍNDICE DE FIGURAS

Figura 1 Árbol de Naranjo dulce .................................................................................... 29

Figura 2 Fruto del naranjo .............................................................................................. 30

Figura 3 Extracción del Aceite esencial de cáscara de naranja ...................................... 41

Figura 4 Pasos para la activación de la cepa bacteriana (Porphyromonas Gingivalis) .. 43

Figura 5 Cultivo primario colonias de Porphyromonas Gingivalis ................................ 44

Figura 6 Estándar de turbidez de McFarland.................................................................. 45

Figura 7 Cajas petri inoculadas y rotuladas .................................................................... 46

Figura 8 Discos de papel embebidos en sustancias ........................................................ 47

Figura 9 Colocación de discos de papel ......................................................................... 48

Figura 10 Jarra de anaerobiosis ...................................................................................... 49

Figura 11 Medición de halos de inhibición a las 48 horas ............................................ 50

Figura 12 Halos de inhibición a las 48 horas................................................................. 52

Figura 13 Tabla de datos ............................................................................................... 53

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TÍTULO: “Efecto inhibitorio del aceite esencial de cáscara de naranja (Citrus sinensis) al 25,

50 y 100 % en cepas de Porphyromonas gingivalis”

Autor: Andrea Lizeth Cevallos Andrade

Tutor: Dra. Sofía Carolina Santórum Chiriboga

RESUMEN

En la actualidad la medicina natural se ha vuelto una opción de tratamiento muy importante para la

sociedad, es por eso que a lo largo de los años se han realizado múltiples investigaciones científicas

para identificar las propiedades curativas de los productos botánicos que nos brinda la tierra, por esta

razón la presente investigación tuvo como objetivo determinar mediante un estudio in-vitro el efecto

inhibitorio del aceite esencial de cáscara de Naranja (Citrus sinensis) al 25, 50 y 100 %, frente a

cepas de Porphyromonas gingivalis; que es una de las principales bacterias causantes de la

enfermedad periodontal.

Esta investigación se basó en el método de Kirby Bauer, por lo tanto se utilizó 30 cultivos

bacterianos de agar sangre inoculados con Porphyromonas gingivalis, donde se colocó discos de

papel embebidos de aceite esencial en sus tres porcentajes, un control positivo con clorhexidina al

0,12% y un control negativo con agua destilada.

A las 48 horas se procedió a medir los halos de inhibición, y los resultados estadísticos obtenidos

con la pruebas no paramétricas de Kruskal-Wallis determinaron que; hubo diferencia

estadísticamente significativa entre el aceite esencial al 25,50 y 100% comparado con la clorhexidina

al 0,12%. Los resultados obtenidos fueron; aceite al 25% 8,97mm (IC95% 8,49-9,44) (p< 0,05);

aceite al 50% 10,13mm (IC95% 9,71-10,56) (p< 0,05); aceite al 100 % 13,47mm (IC95% 12,52-

14,42) (p< 0,05); y clorhexidina al 0,12% 18,33mm (IC95% 16,72-19,95) (p< 0,05).

Concluyendo así que el aceite esencial inhibe en todas sus concentraciones, y que a mayor

concentración aumenta la eficacia inhibitoria, pero sin embargo no supera la eficacia inhibitoria de

la clorhexidina al 0,12%.

Palabras clave: Enfermedad Periodontal, Porphyromonas gingivalis, citrus sinensis.

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TITLE: “Inhibitory effect of the essential oil made of orange peel (citrus sinensis) at 25.50%

and 100% of the strains of Porphyromona Gingivalis”

Author: Andrea Lizeth Cevallos Andrade

Tutor: Dr. Sofía Carolina Santórum Chiriboga

ABSTRACT

Currently natural medicine has become a very important option for treatments in the society, that is

why along the years there have been many scientific reserachs to identify the healing properties of

botanical products provided by the earth. This research aims at determining through an in-vitro study

the inhibitory effect of orange peel (Citrus sinensis) at 25.50 and 100% against the strains of

Porphyromona gingivalis, which is one of the main bacteria causing the periodontal disease. This

research was based in the method Kirby Bauer, therefore, 30 bacteria cultures of blood agar were

used, inoculated with Porphyromona gingivalis, and these received paper pieces with essential oil in

the three percentages, a positive control with chlorhexidine at 0.12% and a negative control with

distilled water. 48 hours later the inhibition halos were measured, and the statistical analysis obtained

in the non-parametric tests Kruskal-Wallis determined that there was a statistically significant

difference between the essential oil at 25.50 and 100%, when compared to the chlorhexidine at

0.12%. The results obtained were oil at 25%, 8.97mm (IC95% 8,49-9,44) (p< 0,05); oil at 50%,

10.13mm (IC95% 9,71-10,56) (p< 0,05); oil at 100 %, 13.47mm (IC95% 12,52-14,42) (p< 0,05);

and chlorhexidine at 0.12%, 18.33mm (IC95% 16,72-19,95) (p< 0,05). It is concluded that the

essential oil has an inhibitory effect in all the concentrations, and that greater concentrations increase

the inhibitory effectiveness; however, it is not higher than the inhibitory effect of chlorhexidine at

0.12%.

KEY WORDS: PERIODONTAL DISEASE/ PORPHYROMONAS GINGIVALIS/ CITRUS

SINENSIS.

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1

INTRODUCCIÓN

Las enfermedades periodontales son patologías comunes en todo el mundo que atacan a los

tejidos de soporte del diente; es de gran importancia saber que las interacciones bacterianas

con el huésped en la interfase del biofilm con el periodonto desencadenan inicialmente la

inflamación gingival, resultando en gingivitis, que con el tiempo, puede progresar el desgaste

de los tejidos que soportan al diente y esto al estar mediado por el sistema inmune, afecta el

hueso alveolar, lo que se conoce como periodontitis que es la principal causa de pérdida de

dientes en adultos, y contribuye a aumentar la susceptibilidad a otras enfermedades

sistémicas. (1)

Se ha evidenciado científicamente que, la presencia de Porphyormonas gingivalis , se

asocia directamente con la enfermedad periodontal destructiva, y la formación de biofilm

bacteriano en dientes permanentes, que se enriquece de bacterias anaerobias Gram-negativas

las mismas que promueven vías proinflamatorias y da origen a la formación de bolsas

periodontales. (2)

Por otro lado la medicina natural en la actualidad tiene un papel muy importante en

tratamientos alternativos y de complemento en la sociedad, de manera que los aceites

esenciales han sido motivo de investigación ya que son mezclas líquidas, volátiles, naturales

y complejas de compuestos de bajo peso molecular formadas por plantas aromáticas como

metabolitos secundarios, el aceite esencial de cáscara de naranja posee propiedades

medicinales significativas; por lo tanto, puede ser utilizado para la terapia de enfermedades

infecciosas y no infecciosas, la presencia de diferentes compuestos en el aceite hace posible

su uso como agente antimicrobiano que ofrece un bajo riesgo de desarrollo de resistencia

microbiana. (3)

Estudios realizados han demostrado que el aceite esencial de Citrus sinensis tiene

propiedades medicinales entre estas, propiedades antibacterianas, antioxidantes que refuerza

el sistema inmunológico, contiene vitamina C y se ha utilizado tradicionalmente para tratar

dolencias como estreñimiento, calambres, cólicos, diarrea, bronquitis, tuberculosis, tos, frío,

obesidad, trastorno menstrual, angina, hipertensión, ansiedad, depresión y estrés. (4)

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2

La prevalencia de la enfermedad periodontal a nivel mundial es alta, por lo que compromete

un problema en la salud pública; además actualmente, el uso irracional de antibióticos ha

ocasionado resistencias agravando de esta manera las enfermedades causadas por patógenos

bacterianos, y el uso de varios agentes antibacterianos en altas dosis puede causar toxicidad

en seres humanos, es por esta razón que se ha llevado a cabo investigaciones para explorar

alternativas contra cepas bacterianas y de esta manera los aceites esenciales de plantas y sus

principales constituyentes químicos son candidatos potenciales como agentes

antibacterianos, por lo tanto esta investigación aporta con una alternativa terapéutica de

complemento. (5) (4)

Motivo por el cual el presente estudio está enfocada en determinar mediante un estudio in-

vitro el efecto inhibitorio del aceite esencial de Citrus sinensis al 25, 50 y 100 % en cepas

de Porphyromonas gingivalis.

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CAPÍTULO I

1.1. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA

La enfermedad periodontal es muy prevalente en población mundial. La placa subgingival

induce una respuesta inflamatoria e inmune siendo así el factor más importante en el

desarrollo de esta enfermedad. La composición de la placa subgingival ha sido motivo de

algunos estudios, ya que se ha encontrado la presencia de subtipos diferentes de bacterias

que están asociadas con el deterioro periodontal, la profundidad de bolsas periodontales, y

los índices de sangrado. (6)

Es la enfermedad más usual que afecta la cavidad oral después de la caries dental y la

principal causa de pérdida de dientes, lo que afecta la calidad de vida de las personas. Por lo

tanto, el diagnóstico y el control de la enfermedad a tiempo es el principal objetivo de los

odontólogos hoy en día. (7)

En la cavidad oral podemos encontrar más de seiscientas cepas bacterianas que pueden estar

en el biofilm de la placa bacteriana, ya sea por encima o debajo del margen gingival; lo cual

nos indica diversidad bajo varias condiciones clínicas periodontales. (8)

Porphyromona gingivalis es una bacteria Gram negativa, anaerobia estricta que se relaciona

con la aparición y aumento de la periodontitis crónica y agresiva, con frecuencia están

presentes en pacientes con enfermedad periodontal y se encuentran incluso en personas

sanas.(9)

Las biopelículas microbianas de la cavidad oral son grupos de bacterianas de estructuras

tridimensionales, que se unen a una superficie sólida como el esmalte de los dientes, la

superficie de la raíz o implantes dentales y están incrustados en una matriz de exo-

polisacárido. Este biofilm oral sirve como un sistema para la adhesión bacteriana, y

resistencia a los antibióticos. (10)

Se dice que las biopelículas son resistentes a los antibióticos a concentraciones 10-1000

veces mayor que la necesaria para matar las células de vida libre. Este alto nivel de

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resistencia del biofilm hace que estas infecciones sean difíciles de controlar con

antibioticoterapia convencional. Dentro de los principales factores que favorecen la

resistencia a los antibióticos del biofilm incluyen la difusión ineficaz del antibiótico dentro

de la matriz del biofilm, y la presencia de cepas bacterianas resistentes a los antibióticos. La

microbiota y algunos tejidos orales de la cavidad oral puede actuar como un depósito de

microorganismos resistentes a los antibióticos; esto podría explicar el aumento de la

frecuencia de las infecciones resistentes al antibiótico. (11)

Por lo tanto se plantea la siguiente interrogante:

¿Tiene efecto inhibitorio el aceite esencial de cáscara de naranja (Citrus sinensis), frente a

Porphyromonas gingivalis, y cuán eficaz es a diferentes concentraciones?

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1.2. OBJETIVOS

1.2.1. OBJETIVO GENERAL

- Determinar mediante un estudio in- vitro el efecto inhibitorio del aceite esencial

de cáscara naranja (Citrus sinensis) a diferentes concentraciones en cepas de

Porphyromonas gingivalis.

1.2.2. OBJETIVOS ESPECÍFICOS

- Evaluar el efecto inhibitorio del aceite esencial de cáscara de Naranja (Citrus

sinensis) ante cepas de Porphyromonas gingivalis en concentraciones de 25, 50

y 100 %

- Establecer a que concentración se obtiene mayor efecto inhibitorio en cepas de

Porphyromonas gingivalis.

- Comparar el efecto inhibitorio del aceite esencial de cáscara de Naranja (Citrus

sinensis) con clorhexidina al 0,12% sobre cepas de Porphyromonas gingivalis.

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1.3. JUSTIFICACIÓN

De acuerdo con la OMS las periodontopatías, tienen una prevalencia del 60 % en la

población mundial; por lo que representan un problema a diario para los especialistas en

salud bucal. (13)

Estas enfermedades son un problema de gran importancia en la salud pública en especial la

periodontitis, sus signos y síntomas reducen la calidad de vida, ya que altera la función de

masticación y deteriora la estética, causa pérdida dental y discapacidad, es responsable del

edentulismo y disfunción masticatoria, y por estas razones tiene un gran impacto y

repercusiones en la salud de los pacientes.(14)

Un dato importante a tomar en consideración son los efectos secundarios que producen

ciertos agentes antimicrobianos comúnmente utilizados como complemento para tratar esta

enfermedad, como la clorhexidina que, al uso continuo y en proporciones y tiempos mal

administrados por los pacientes puede producir tinción de los dientes y dorso de la lengua

además de alteraciones del gusto. (15)

Por lo tanto, esta investigación aporta con una alternativa terapéutica natural en el

tratamiento de las enfermedades periodontales, ya que algunos pacientes pueden presentar

problemas a la hora de ser tratados con antibióticos y agentes antimicrobianos debido a

resistencias bacterianas y también hipersensibilidad a ciertos fármacos.(16)

La medicina natural hoy en día es utilizada como alternativa para el tratamiento de ciertas

enfermedades, y en esta ocasión el objetivo es investigar a fondo el aceite esencial de cáscara

de naranja que lleva como nombre científico Citrus sinensis, ya que artículos científicos

afirman tener propiedades antibacterianas y puede ser utilizado como una opción de

tratamiento complemento en la enfermedad periodontal, la misma que es causada por varios

microorganismos, entre los más importantes, la Porphyromonas gingivalis. (16)

Por esta razón beneficiaria a la salud pública dando opción natural de bajo costo y fácil

accesibilidad; y de la misma manera podría favorecer al profesional odontólogo

proporcionando una alternativa a la solución y tratamiento de ciertas enfermedades

periodontales. (16)

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1.4. HIPÓTESIS

1.4.1. HIPOTESIS DE INVESTIGACIÓN

- El aceite esencial de cáscara de Naranja (Citrus sinensis), tiene efecto inhibitorio

sobre cepas de Porphyromonas gingivalis.

1.4.2. HIPOTESIS NULA

- El aceite esencial de cáscara de Naranja (Citrus sinensis), no tiene efecto

inhibitorio sobre cepas de Porphyromonas gingivalis.

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CAPÍTULO II

2.1. MARCO TEÓRICO

2.1.1. ENFERMEDAD PERIODONTAL

2.1.1.1. Definición

Mariotti, define a las enfermedades periodontales como una extensa familia de patologías

complejas, que se encuentran relacionadas con la encía y el conjunto de algunas

etiologías.(17)

Se define también como una condición inflamatoria compleja, que se identifica por la

destrucción de los tejidos periodontales blandos y duros que dan soporte al diente en los que

se incluye hueso alveolar, ligamento periodontal y encía. (18)

Son enfermedades causadas por bacterias adheridas a los dientes a través de biofilms

organizados y que se determinan por el sangrado gingival, pérdida de los tejidos de soporte

del diente, y movilidad de los mismos, siendo la principal causa de la halitosis y pérdida de

dientes; estas pueden ser identificadas utilizando algunas técnicas clínicas y su relación con

factores de riesgo y condiciones sistémicas. (19)

La enfermedad periodontal en su forma más leve se manifiesta como gingivitis, que es

causada por el biofilm bacteriano que se acumula en los dientes junto a la encía; pero esta

no afecta las estructuras de soporte subyacentes de los dientes y es reversible; mientras que

la periodontitis si produce pérdida de tejido conectivo y soporte óseo y es una causa

importante de pérdida de dientes. (14)

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2.1.1.2. Manifestaciones Clínicas

La inflamación, es la respuesta fisiológica que presentan clínicamente los tejidos

periodontales ante numerosos tipos de agresiones, siendo la más común la que es ocasionada

por infecciones bacterianas; esta respuesta inflamatoria en su fase aguda es de corta

duración, pero si la lesión persiste la respuesta se convierte en crónica. (20)

Clínicamente, esta inflamación gingival se manifiesta por enrojecimiento, hinchazón,

consistencia esponjosa, textura superficial lisa, brillante y sangrado al sondeo.(21)

A demás con presencia de dolor, movilidad, halitosis, exudado purulento, variaciones en la

oclusión, y desplazamiento de piezas dentarias; estas inflamaciones se caracterizan por ser

progresivas, ya que a la larga afecta el ligamento periodontal y el hueso alveolar, dando lugar

a la formación de bolsas periodontales que favorecen el sangrado y retracción gingival. (22)

2.1.1.3. Epidemiología

Los estudios epidemiológicos han manifestado que más de dos tercios de la población

mundial sufren de una de las formas crónicas de enfermedad Periodontal. (23)

Pihlstrom y colaboradores en su artículo destacan que las Enfermedades Periodontales son

muy frecuentes y pueden afectar hasta el 90% de la población mundial, dentro del cual el

50% se debe a la Gingivitis. (14)

En Suramérica, estudios afirman que el 10 y 50% de las personas adultas presentan

Periodontitis. (24)

Según el artículo publicado por Vásquez Ana en el 2016; la prevalencia de Gingivitis en

adolescentes de Latinoamérica oscila entre el 34.5% a 35.1%; y el último estudio poblacional

realizado en Ecuador data del año 1988 reporta una prevalencia de 30% a 44% de Gingivitis

en población entre 6 a 12 años. (25)

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2.1.1.4. Etiología

La enfermedad periodontal es multifactorial, pero se considera que las bacterias son el

principal factor etiológico, sin embargo, también existen varios factores etiológicos

secundarios que consiguen desempeñar un papel significativo en el desarrollo de la

enfermedad entre estos destacan ranuras de desarrollo en la raíz y restauraciones sobre

extendidas; también factores sistémicos, tales como hormonas y medicamentos; factores

genéticos, como los trastornos inmunitarios congénitos; y por último la deficiencia

nutricional. (21)(14)

López, y colaboradores establece en su artículo que estudios recientes han concluido que la

etiología de la enfermedad periodontal se determina como un desequilibrio entre la respuesta

inmunológica del hospedador y la virulencia bacteriana. (26)

Los principales microorganismos que intervienen en las enfermedades periodontales

incluyen Porphyromonas gingivalis, Prevotella intermedia, Forsythia tannerella, y

Treponema denticola; además, Fusobacterium nucleatum, Eikenella corrodens,

Peptostreptococcus spp, y Campylobacter spp que se han encontrado en bolsas

periodontales. (27)

2.1.1.4.1. Biofilm

Newman, define al Biofilm clínicamente como una estructura, resiliente, amarillo-grisácea

que se adhiere fuertemente a las superficies duras intraorales, incluyendo restauraciones

removibles y fijas.(18)

Los biofilms microbianos son comunidades de microorganismos que se encuentran unidos a

una superficie, y están organizados de manera espacial en una estructura tridimensional

dentro de una matriz extracelular. (28)

Los microorganismos que conforman este biofilm están rodeados por esta matriz extracelular

protectora compuesta de glicoproteínas y polisacáridos extracelulares; por lo tanto, es más

resistente a los antimicrobianos que las bacterias que se encuentran fuera en el mismo

ambiente oral. (21)

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El biofilm se encuentra muy bien organizado y estructurado de tal manera que tiene

permeabilidad a través de canales circulatorios que permiten la entrada de nutrientes y salida

de productos residuos o metabolitos, es decir un sistema circulatorio que satisface las

necesidades nutricionales y respiratorias de este equipo de microorganismos. (21)

2.1.1.4.2. Formación Del Biofilm

El desarrollo del biofilm empieza por la formación de una placa sobre la superficie de diente

que recién se ha limpiado, a esta placa se la conoce como película adquirida; esta comienza

a formarse en segundos por la adsorción de las glicoproteínas salivales sobre el esmalte de

los dientes, el cemento expuesto, la dentina expuesta de la raíz o cualquier otra superficie

dura dentro de la cavidad oral. (29)

Esta película es seguida rápidamente por la unión inicial de colonizadores tempranos que

son los microorganismos Gram positivos facultativos; esta unión implica el reconocimiento

de moléculas receptoras específicas llamadas adhesinas que se proyectan desde superficies

bacterianas. (21)

Las capas subsecuentes de bacterias se unen a las que ya están en su lugar, a través de ciertas

especies de bacterias, estas se coagregan con otras especies bacterianas, basándose en

características compartidas y relaciones simbióticas. (30)

Conforme aumentan las capas de microorganismos en el Biofilm el contenido de oxígeno se

hace escaso, haciendo que el medio ambiente sea más adecuado para la colonización de

especies anaerobias; y este agotamiento conduce a la proliferación de los colonizadores

secundarios o tardíos que son anaerobios Gram negativos y organismos filamentosos.(21)

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2.1.1.5. Patogénesis Periodontal

Este término abarca el origen y desarrollo de la enfermedad periodontal, además de las

variaciones en la estructura y la función del periodonto; y el mecanismo mediante el cual

ciertos factores causan esta enfermedad.(18)

Botero, afirma que las enfermedades periodontales, en todas sus presentaciones clínicas, son

el resultado de la acumulación de microorganismos alrededor del diente con la estimulación

del sistema inmune.(31)

Todo empieza cuando las bacterias generan factores de virulencia y se ponen en relación con

las células epiteliales específicamente con las células del epitelio de unión las que son

responsables de generar defensinas y citoquinas pro-inflamatorias.(32)

Las defensinas son péptidos antimicrobianos que eliminan las bacterias mediante la

destrucción de la superficie, pero al mismo tiempo son de mucha importancia en la obtención

de IL-1 y TNFα, que van a producir cambios vasculares porque aumentan el calibre de los

vasos sanguíneos; además, producen IL-8, una citoquina con actividad quimiotáctica para

polimorfo nucleares, estos pasan por los espacios intercelulares del epitelio de unión y

emergen al surco donde se degranulan, y al mismo tiempo eliminan reactivos del oxígeno

y enzimas como catepsina G, lactoferrina, defensinas, mieloperoxidasa, metaloproteinasas

(MMP-8).(33)

Estos reactivos biológicos son perjudiciales para las bacterias, pero también pueden dañar

los tejidos periodontales. (33)

Después de que es estimulada la respuesta inmune innata, desencadena la respuesta inmune

adaptativa y aparecen en el tejido conectivo linfocitos T CD4 y linfocitos B, que colaboran

a resolver el proceso inflamatorio, esta estimulación de linfocitos toma entre cinco y siete

días en alcanzar su mayor activación.(34)

Los linfocitos T CD4 motivan a las citoquinas (IFNγ, IL-2) para que generen mejor actividad

de macrófagos y coestimulan a los linfocitos B a producir anticuerpos tipo IgG e IgA

neutralizantes. (31)

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Además el surco también cuenta con mecanismos de defensa que ayudan a preservar la salud

periodontal, como, por ejemplo, la barrera anatómica de la mucosa intacta que, con la

descamación fisiológica, remueve microorganismos adheridos al epitelio y evita así su

colonización. (35)

Otro mecanismo de defensa es el líquido crevicular gingival, que actúa como barrera

mecánica mediante la remoción de bacterias y otros componentes, y además como barrera

química porque contiene proteínas antimicrobianas sintetizadas localmente o por

extravasación plasmática. (35)

Newman, determina que ocurren cambios dentro de los tejidos y son apreciables a través del

microscopio como, por ejemplo, la infiltración a los tejidos de múltiples células de defensa

importantes como; neutrófilos, macrófagos, células plamáticas y linfocitos, liberando

extracelularmente de enzimas destructivas que alteran la anatomía normal de los tejidos

conjuntivos; y destaca 4 etapas de desarrollo de la enfermedad, lesión inicial, temprana,

establecida y avanzada.(18)

Porphyromonas gingivalis es considerada una bacteria colonizadora secundaria, que se

encuentra en el surco gingival, llega por inoculación de individuos infectados, a través de la

saliva, y posee la capacidad de adherirse por sus fimbrias de tipo Ib, y II, así como por sus

vesículas de membrana, hemaglutininas, y cápsula, que le permite colonizar el surco,

adaptarse e invadir las células epiteliales en aproximadamente 20 minutos, logrando

replicarse en su interior y diseminarse a las células de alrededor.(36)

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2.1.1.6. Clasificación

2.1.1.6.1. Gingivitis

Es una condición muy común que se caracteriza por la inflamación indolora de las encías

que se acompaña de eritema sangrado al cepillado dental, y edema; es la forma más común

de inflamación inespecífica, representa la primera etapa de la Enfermedad Periodontal y es

reversible. (17)

Es un proceso inflamatorio que se encuentra afectando únicamente a los tejidos

supragingivales. (15)

Las inflamaciones gingivales son una gran familia de patologías complejas, que se

relacionan con la encía y son multifactoriales, lo que les caracteriza es que se encuentran

únicamente sobre la encía; no afectan de ningún modo a la inserción ni al resto del

periodonto, por este motivo se engloban en un grupo independiente al de las periodontitis.

(37)

Signos y síntomas

Existe una respuesta innata, inmune y humoral que se reflejan localmente en los tejidos

periodontales ante bacterias patógenas que se encuentran en el biofilm adherente al diente;

esta respuesta está destinada a contener el estímulo infeccioso y a prevenir la invasión

bacteriana en los tejidos; pero si la infección no puede ser controlada, la liberación local de

citoquinas y enzimas que degradan los tejidos da lugar a daños en la encía. (38)

Los tejidos inflamados presentan signos cardinales de inflamación, como; el enrojecimiento

e hinchazón, sangrado al sondeo que es un indicador importante de la inflamación gingival;

calor, es otro signo cardinal de inflamación y ha sido investigado como una medida

diagnóstica del estado periodontal. (39)

López, y colaboradores aseguran que se caracteriza por enrojecimiento e hinchazón de las

encías que además sangran fácilmente durante el cepillado dental. (26)

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15

Los signos más tempranos de la gingivitis incluyen una pérdida de punteado característico

de la encía adherida más sangrado en el sondeo suave; la encía saludable es rosa coral;

cuando existe inflamación, la encía involucrada se vuelve de color rojo claro, con la

progresión, el área se vuelve más roja y edematosa, a medida que el proceso empeora la

encía involucrada se vuelve más roja brillante o magenta; la encía suele mostrar márgenes

que pueden ser embotados, retrocedidos o hiperplásticos; la inflamación crónica causa

aumento de tamaño gingival significativo debido a edema o fibrosis, el proceso se denomina

gingivitis hiperplásica crónica, el sangrado ocurre fácilmente, y el exudado se puede ver en

el surco gingival. (39)

Diagnóstico

La inspección visual es de gran ayuda para el diagnóstico, aquí se observará una inflamación

de la encía, con alargamiento del contorno gingival por la presencia de edema, además es

roja o azulada, posee temperatura sulcular alta, sangrado al examen de sondaje, estos son los

signos que se asocian a tejidos periodontales sin pérdidas de inserción, o firmes, aunque

reducidos. Para este diagnóstico se utiliza una sonda periodontal, que ayuda a detectar el

componente inflamatorio de las bolsas.; además, con la sonda se determinara la existencia o

no de pérdida de inserción. (37)

La profundidad de sondaje es el espacio que se forma alrededor de los dientes, entre la encía

y la superficie radicular, se realiza midiendo desde el margen gingival libre hasta la

profundidad del surco gingival una encía saludable oscila entre 1 y 3 mm en la gingivitis

esta puede aumentar entre 0,69mm y 1mm o no necesariamente tiene que estar en aumento,

es decir no es un determinante de gingivitis sino más bien la presencia de sangrado al examen

de sondeo es un indicador fidedigno de gingivitis. (31)

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16

Clasificación

La gingivitis puede subdividirse dependiendo de su factor etiológico dentro de las más

importantes encontramos:

a. Gingivitis inducida por placa

b. Gingivitis no inducida por placa (18)

2.1.1.6.2. Periodontitis

Es la inflamación que se extiende al interior del surco gingival; esta enfermedad, a diferencia

de la gingivitis, se caracteriza por una lesión estructural del sistema de inserción, que se

produce por ciertas bacterias, y por la susceptibilidad del hospedador. (37)

Las características histológicas principales son bolsas periodontales, que se localizan desde

la unión epitelial apical a la línea amelocementaria, también existe pérdida de fibras

colágenas, alta concentración de leucocitos polimorfonucleares, y traslado del infiltrado

celular inflamatorio hacia el tejido conectivo. (40)

Factores de riesgo

La mayor prevalencia de periodontitis crónica se asocia con lo siguiente:

• Edad avanzada

• Fumar

• Diabetes mellitus

• Osteoporosis

• Infección por VIH

• Nivel socioeconómico más bajo

Los factores locales también pueden predisponer a los pacientes a defectos periodontales

aislados; estos incluyen la forma y alineación de los dientes, la presencia y calidad de las

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17

restauraciones dentales, el contacto interdental deficiente, la formación de cálculos, la caries

dental subgingival, la oclusión traumática y el hueso alveolar anormal o la anatomía

gingival.(41)

Por el contrario, parece que la presencia de periodontitis significativa puede colocar a los

pacientes en riesgo de un aumento de la prevalencia o mayor severidad de ciertos trastornos

médicos, la periodontitis se ha asociado con un elevado riesgo de enfermedad coronaria,

accidente cerebrovascular, diabetes mellitus progresiva, enfermedades respiratorias y parto

de bebés de bajo peso al nacer. (41)

Signos y Síntomas

Cuando la inflamación gingival se extiende, la encía se separa de los dientes formando

espacios llamados bolsas; en esta situación en epitelio ulcerado que cubre a la bolsa es la

única barrera entre el Biofilm bacteriano y el tejido conectivo, por lo que es posible que

fácilmente las toxinas bacterianas entren y se comuniquen con el torrente sanguíneo. (32)

Diagnóstico

Esta inflamación se extiende dentro del surco gingival, por lo tanto, el diagnostico se basa

en la medición de los espacios que se encuentran entre el diente y la encía los mismos que

en condiciones saludables tienen un valor de 1 a 3 mm; además de la exploración

radiográfica y el registro de cantidad de placa, sangrado gingival y la existencia o no de

supuraciones. (40)

La profundidad de sondaje igual o superior a 4 mm es un signo claro de daño periodontal,

este cambio de surco a bolsa periodontal es uno de los signos importantes de la periodontitis,

ya que se produce por la pérdida de inserción. (31)

La periodontitis se diagnostica actualmente usando radiografía, medidas clínicas de la

profundidad de sondaje, sangrado en el sondeo; sin embargo, estas mediciones clínicas

tradicionales consumen mucho tiempo y producen información limitada porque son

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18

indicadores de enfermedad periodontal previa y no de actividad de la enfermedad

presente.(42)

La evaluación radiográfica es un componente esencial del examen periodontal e

indispensable para establecer un diagnóstico periodontal, ya que nos da información

importante sobre la posición y la arquitectura de la cresta alveolar del hueso; bite-wings se

consideran las radiografías intraorales más precisas para determinar la altura de la cresta

alveolar, cuando existe ausencia de pérdida ósea, la cresta alveolar se localiza generalmente

de 1 a 2 mm apical a la unión amelo- cementaría. (38)

Las radiografías periapicales brindan al clínico información importante sobre la relación

entre corona y raíz, el espacio del ligamento periodontal y la presencia de anomalía

periapical, y algunos estudios han demostrado que las radiografías panorámicas pueden

utilizarse para evaluar la altura del hueso alveolar.(38)

Clasificación

Armitage, clasifica a la periodontitis de la siguiente manera:

Periodontitis Crónica

A. Localizado

B. Generalizado

Periodontitis Agresiva

A. Localizado

B. Generalizado

La Periodontitis como Manifestación de Enfermedades Sistémica

A. Asociado con trastornos hematológicos

1. Neutropenia adquirida

2. Leucemias

3. Otros

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B. Asociado con trastornos genéticos

1. Neutropenia familiar y cíclica

2 Síndrome de Down

3. Síndromes de deficiencia de adhesión de leucocitos

4. Síndrome de Papillon-Lefèvre

5. Síndrome de Chediak-Higashi

6. Síndromes histiocitosis

7. Enfermedad de almacenamiento de glucógeno

8. Agranulocitosis genética infantil

9. El síndrome de Cohen

10. Síndrome de Ehlers-Danlos (Tipos IV y VIII)

11. Hipofosfatasia

12. Otros

C. No especificado de otro modo (NOS)

Enfermedades Periodontales Necrotizantes

A. Gingivitis ulcerativa necrosante (NUG)

B. Periodontitis ulcerativa necrotizante (NUP)

Abscesos del Periodoncio

A. Absceso gingival

B. Absceso periodontal

C. Absceso pericoronal

Periodontitis asociada con lesiones endodónticas

A. Lesiones periodonticas-endodónticas combinadas

Deformidades y Condiciones de Desarrollo o Adquiridas

A. Factores localizados relacionados con los dientes que modifican o predisponen a

enfermedades gingivales inducidas por placa / periodontitis

1. Factores anatómicos del diente

2. Restauraciones y aparatos dentales

3. Fracturas de la raíz

4. Reabsorción de la raíz cervical y lágrimas de cemento

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B. Deformidades y condiciones mucogingival alrededor de los dientes

1. Recesión de tejido gingival / blando

a. superficies faciales o linguales segundo. interproximal (papilar)

2. Falta de gingiva queratinizada

3. Disminución de la profundidad vestibular

4. Freno aberrante / posición del músculo

5. Exceso gingival

6. Color anormal

C. Deformidades y condiciones mucogingival en edéntulos

1. Deficiencia de cresta vertical y / u horizontal

2. Falta de gingiva / tejido queratinizado

3. Aumento de tejido gingival / blando

4. Freno aberrante / posición del músculo

5. Disminución de la profundidad vestibular

6. Color anormal

D. Traumatismo oclusal

1. Traumatismo oclusal primario

2. Traumatismo oclusal secundario

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2.1.1.7. Tratamiento

Existen tres tipos de tratamiento periodontal; en primer lugar el tratamiento inicial,

incluyendo la instrucción de higiene oral , control de placa, cálculo dental y alisado radicular;

después el tratamiento de combinación, incluyendo el tratamiento farmacológico, el

tratamiento quirúrgico, gingivectomía, y la reparación del hueso alveolar; y por último otros

métodos de tratamiento, que incluyen la terapia funcional de oclusión, la extracción del

diente selectivamente, la terapia de soporte periodontal, dejar de fumar, y el control de

enfermedades inmunodepresoras. (43)

El tratamiento de la enfermedad periodontal está dirigido hacia la eliminación de la placa

bacteriana y otros factores, entre estos, el cálculo dental o restauraciones con defectos que

favorecen y dificultan la eliminación. (14)

El procedimiento a utilizar depende de la localización de la placa o el cálculo, y de cuan

avanzado este la enfermedad; las técnicas más habituales son la tartrectomía, que es la

eliminación del cálculo supragingival; y raspado y alisado radicular, en el que se elimina la

placa y cálculo subgingival, de esta manera disminuye el sangrado gingival y la profundidad

de sondaje, además de que incrementa a la recolonización de bacterias Gram positivas o cual

es favorable para la flora bacteriana. (26)

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2.1.1.8. Control químico de la enfermedad periodontal

El control químico de la enfermedad periodontal se realiza con antisépticos orales por lo que

cabe recordar que son antimicrobianos químicos o agentes que puede ser aplicado

tópicamente o subgingivalmente en mucosas, heridas o superficies dérmicas intactas para

destruir microorganismos y para inhibir su reproducción o metabolismo; en odontología, los

antisépticos son muy utilizados como ingredientes activos en enjuagues y dentífricos orales

anti-placa y anti-gingivitis. (18)

El control químico de la placa incluye:

Inhibición del desarrollo de placa

Inhibición de la colonización microbiana en las superficies dentales

Eliminación de placa dental

Transición de la placa "patógena" en una placa "no patógena"(44)

2.1.1.8.1. Gluconato de clorhexidina

Negroni. M, y Lindhe. J; señalan que es una bisbiguadina catiónica que tiene actividad

antibacteriana de baja toxicidad, y fuerte capacidad para adherirse a las mucosas, a la

biopelículas y a los microorganismos, y además tiene un amplio espectro de actividad

antimicrobiana contra; Gram-positivos, Gram-negativos y levaduras. (45)(37)

2.1.1.8.1.1 Mecanismo De Acción

Las moléculas catiónicas del gluconato de clorhexidina son brevemente absorbidas por las

células bacterianas que se encuentran cargadas negativamente, esto hace que se altere la

membrana celular bacteriana lo que determina que el gluconato de clorhexidina se desplace

hasta el interior de la célula, aumentando la permeabilidad de esta y consiente que los

componentes de bajo peso molecular como los iones de potasio sean soltados al exterior.

(45)

Tiene gran afinidad por la pared celular de los microorganismos y cambia las estructuras

superficiales ya que se disipa el equilibrio osmótico y, como resultado, la membrana

citoplasmática se daña, se forman vesículas y el citoplasma se precipita de manera que estas

precipitaciones detienen la reparación de la pared celular y las bacterias ya no son capaces

de recuperarse.(33)

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2.1.1.8.1.2. Usos en Odontología

La clorhexidina es el agente antiplaca más utilizado en el tratamiento y control de la

enfermedad periodontal que es una de las patologías con mayor demanda y común a nivel

mundial; por este motivo se ha convertido en motivo de investigación en Odontología

principalmente en la rama de Periodoncia. (45)

Es utilizada también en tratamientos de endodoncia al 0,12% para irrigación intraconducto

por su efecto bactericida y bacteriostático; se presenta en distintas presentaciones para su

aplicación clínica: pastas o geles al 1%, barnices al 10%, dentífricos al 0,004% y enjuagues

al 0,12% y 10%. (44)

2.1.1.8.1.3. Efectos Adversos

Hasta el momento no existen hallazgos de efectos perjudiciales importantes para las células

de la mucosa oral, por lo cual constituye un elemento beneficioso en el complemento de la

higiene oral. (49)

Durante un prolongado tiempo de uso, la Clorhexidina produce ciertos efectos secundarios,

el más frecuente el cromatismo pardo rojizo o marrón de las piezas dentarias, de ciertos

materiales de restauración y del dorso de la lengua; también puede trastornar la sensación

del gusto después del enjuague y en algunos casos, su uso ha sido asociado al incremento de

cálculos supragingivales. (46)

2.1.1.9. Prevención

La prevención de las enfermedades periodontales se basa en el conocimiento de los factores

causales, está demostrado que, aunque las bacterias por sí solas no son suficientes para

producir la enfermedad periodontal destructiva, son esenciales para que se produzca la

enfermedad periodontal de cualquier tipo, y por tanto es evidente que sin bacterias las

enfermedades periodontales no existen, por lo que el control de las bacterias supone el

control de la enfermedad.

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Por lo tanto se puede prevenir con el control de placa bacteriana y el hábito de fumar; con la

eliminación diaria de placa bacteriana por el mismo paciente, esto lo conseguiremos con la

educación al paciente de un correcto cepillado dental, la higiene interdental y el control

químico de la placa. (37)

2.1.1.9.1. Métodos de prevención

Suprimir las costumbres alimenticias nocivas, una alimentación dulce favorece la caries

dental y primero a la placa dentaria

Hay que evitar las substancias azucaradas y pegajosas, sobre todo entre comidas y más aún

por la noche antes de acostarse.

El cepillado de los dientes y las encías es el mejor procedimiento utilizable para una higiene

oral adecuada. Los componentes presentes en las pastas dentales permiten mantener los

dientes libres de residuos alimenticios.

Los cepillos dentales deber ser de tamaño, forma y textura adecuada, manipulables, fáciles

de lavar, de composición constante y durable. De preferencia con un cabezal que no sea

demasiado voluminoso. Debe limpiar de manera eficaz; por tanto, utilice un cepillo de

mucho pelo y de duración media. Evite las cerdas duras que pueden provocar abrasiones o

traumatismos en el borde gingival y también las cerdas muy blandas que pueden ser

insuficientes ante un sedimento importante de placa. Utilice cerdas de nylon mejor que las

naturales.

Es de vital importancia cepillar a profundidad hasta los rincones más escondidos dentro de

la boca, para mantener la placa bajo control. Procure cambiar su cepillo dental por lo menos

cada 3 meses, recuerde que un cepillo desgastado no limpiará bien sus dientes. Debe cepillar

las 5 caras de cada corona dentaria, así como la totalidad del borde gingival. Una vez

formado el sarro o cálculo dentario no se puede eliminar con el cepillado y necesita de una

profilaxis para su remoción. Finalmente, no debe olvidarse que el mejor recurso existente

para una profilaxis o limpieza oral adecuada, proviene de la visita periódica a su

profesionista dental.

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2.1.2. PORPHYROMONAS GINGIVALIS

2.1.2.1. Taxonomía

Esta bacteria se encuentra dentro del género bacteroides, en un conjunto de bacterias

heterógenas, con características de ser anaerobios estrictos, Gram negativos, no esporulados

de forma bacilar. Existen como doce especies entre las más principales se encuentran; P.

gingivalis, P. asaccharolyticus y P. endodontales; que tienen como características comunes

ser no fermentadores, y utilizan como sustrato el nitrógeno para obtener su energía a partir

de tripticasa y peptona.(36)

2.1.2.2. Estructura y morfología

Es un bacilo corto o cocobacilo, su tamaño es de 0.5 - 0.8 um x 1 - 3.5um, anaerobio estricto,

Gram negativo. A nivel de la membrana externa la pared celular muestra endotoxinas, son

capsulados, no esporulados, sin flagelos y poseen cuantiosas fimbrias. En su superficie

muestra vesículas que tienen una variedad de enzimas de gran importancia con capacidad de

degradar compuestos proteicos. (36)

2.1.2.3. Nutrición

El ecosistema subgingival le proporciona un potencial rédox bajo y aún más inferior las

bolsas periodontales, conserva nutrientes endógenos ricos en péptidos y aminoácidos, P.

gingivalis requiere obligatoriamente hierro para crecer, sin embargo, cuando hay una falta

de hierro en el sistema utiliza hemina (hierro protoporfirina IX); los niveles de hemina en la

cavidad oral son diferentes y el sangrado, motivo de la inflamación gingival, aumenta la

concentración subgingival, de manera que la hemina que se almacena en la membrana

extracelular es una reserva de oxígeno que ayuda a conservar un microambiente anaerobio.

(47)

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26

2.1.2.3. Factores de virulencia

- Cápsula

Está formada por polisacáridos, que presentan un gen codificante de epimerasa epsC

esencial para su síntesis, existen 6 serotipos capsulares de K1 a K6; la cápsula tiene un rol

importante en la evasión del sistema inmunológico, evitando la fagocitosis, opsonización y

accionar del complemento.(36)

- Endotoxina (Lps)

El Lipopolisacárido de la Porphyromonas gingivalis contiene 3 componentes: en su parte

externa polisacáridos, en el centro oligosacáridos y en su interior lípido A, siendo esta última

la porción inmunogénica más activa. (48)

Son moléculas de gran tamaño, formadas por un componente lipídico (lípido A) y un

polisacárido; por lo general se encuentran en la membrana externa de las bacterias Gram

Negativas y actúan como endotoxinas. (18)

- Vesículas De Membrana Externa

Durante la enfermedad, la Porphyromonas gingivalis elimina vesículas que guardan

Lipopolisacáridos, que invaden los tejidos periodontales y activan la elaboración de

citoquinas en macrófagos, fibroblastos, queratinocitos y células endoteliales, que son

reconocidas por las células presentadoras de antígenos, con la capacidad de presentar sus

antígenos a los linfocitos T y liberar una respuesta inmune específica en el huésped. (49)

- Fimbrias

Son estructuras filamentosas que se encuentran en la superficie de la Porphyromonas

gingivalis y que le dan la facultad de invadir los tejidos periodontales y colonizar la cavidad

oral; se compone de una subunidad proteica denominada fimbrilina, codificada por fimA, y

otra subunidad llamada Mfa. (50)

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27

Miden aproximadamente 3.0 um de largo y 5 nm de ancho; estas tienen la capacidad de

unirse a diferentes sustratos, moléculas, y células, como epitelial, fibrinógeno, fibronectina,

lactoferrina, y también presentan propiedades quimiotácticas y de inducción de

citoquinas.(36)

2.1.3. PLANTAS MEDICINALES

2.1.3.1. Antecedentes

A lo largo de los años las plantas medicinales han desempeñado un papel importante en la

salud de las poblaciones humanas; la evidencia arqueológica nos dice que en la prehistoria

los primeros en tener interés y conocimiento en la botánica fueron los chamanes, estos tenían

conocimiento de la ubicación y el uso de plantas medicinales.(51)

Hace 12 000 años se alteró las relaciones humanas con la naturaleza, reduciendo la

biodiversidad de las especies vegetales por personas; sin embargo, en todas partes surgieron

poderosas civilizaciones y permaneció el interés por en las plantas medicinales.

En el antiguo Egipto, Mesopotamia, Creta, México, y China, aparecieron jardines reales que

contenían especímenes con valor medicinal y se escribieron los primeros textos de medicina

natural. Se dice que Aristóteles había mantenido un jardín de hierbas para uso medicinal y

experimentación. (51)

Después de la caída del Imperio Romano, Benedictinos, Monasterios y Abadías de la Edad

Media estos lugares se convirtieron en centros de conocimiento médico en toda Europa, y

en el siglo IX, los jardines físicos empezaron a ser cultivados en terrenos cerrados, en estos

espacios, los médicos y los boticarios sembraron plantas medicinales para las enfermedades

más comunes. (51)

Hoy en la actualidad hay dos conceptos opuestos que frecuentemente se confunden, por lo

que debe diferenciarse fitomedicina y fitoterapia clásica.

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2.1.3.2. Fitomedicina

Es una disciplina que emplea fitomedicamentos en la terapéutica de un estado patológico; es

decir, que la droga vegetal considerada como la parte de la planta medicinal empleada en la

terapéutica, es sometida a criterios investigativos, de preclínica, clínica, toxicología, cambios

mutagénicos, con el fin de determinar el mecanismo de acción, receptores, indicaciones y

contraindicaciones; de manera que su empleo sea seguro y fundamentado

científicamente.(52)

2.1.3.3. Fitoterapia Clásica

Emplea plantas medicinales en la terapéutica de una enfermedad, basándose en el uso

empírico de los mismos, lo cual induce a una información poco certera en cuanto a efecto

terapéutico.(52)

2.1.3.4. Aportes en Odontología

Lippia sidoides más conocido como arbusto de Brasil tiene componentes como timol y

carvacrol con propiedades antibacterianas frente a strptococcus mutans y candida albicans,

de la misma manera los aceites esenciales eucalipto, lavándula y rosmarinos en

microorganismos orales como Streptococcus mutans, Streptococcus sobrinus,

Fusobacterium nucleatum, Porphyromonas gingivalis y Actinobacillus determinaron que los

aceites esenciales inhibieron el crecimiento y la adhesión de Streptococcus mutans el

biofilm. (53)

En el estudio realizado con aceite esencial de Croton cajucara se pudo ver acción

leishmanicida, así mismo se demostró que este aceite inhibe el crecimiento de Candida

albicans, Staphylococcus aureus, Streptoccocus sobrinus, Lactobacillus casei,

Porphyromonas gingivalis y Streptoccocus mutans; microorganismos relacionados con

enfermedades de la cavidad bucal. (53)

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2.1.4. NARANJA COMÚN O CITRUS SINENSIS

La naranja dulce o común corresponde a la familia de las Rutáceas, una familia muy extensa

que contiene 1700 especies de plantas aproximadamente que crecen en países de clima

tropical y templado. Las plantas más conocidas son los cítricos, estas especies están incluidas

en el género Citrus, al cual pertenecen la naranja común Citrus sinensis. (53)

Los frutos cítricos se caracterizan principalmente de ser frutos grandes que llevan grandes

cantidades de ácido cítrico, el cual les provee el característico sabor ácido. Además, todos

los miembros del género Citrus contienen otros componentes que les otorgan aromas muy

profundos. (54)

2.1.4.1. Descripción Botánica

El árbol de Citrus Sinensis mide aproximadamente 9-10 m, tienen grandes espinas en sus

ramas, hojas son alternas, con estrecho margen, pecíolos de 3-5 mm de ancho, 6.5-15 cm de

largo; la forma de las hojas varía desde elíptica, oblonga u ovalados, sin rodeos dentada y

que emiten un fuerte olor característico de cítricos debido a la presencia de aceite

abundante.(12)

Figura 1 Árbol de Naranjo dulce

Fuente: Andrea Cevallos A.

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30

2.1.4.2. Taxonomía Reino

- Plantae División: Clase: Magnoliophyta; Orden: Magnoliopsida; Familia: Sapindales;

Subfamilia: Rutaceae; Citroideae Tribu: Citreae

- Género: Citrus Especies: Naranjo dulce: Citrus sinensis (L.) Naranjo amargo: Citrus

aurantium (L.)(53)

2.1.4.3. Morfología

La naranja es el fruto del árbol de naranjo, un árbol de larga vida, el tronco es corto y

levemente espinoso y sus ramas son algo vigorosas, las hojas son coriáceas, elípticas o

elipticolanceladas, agudas, con el limbo grande, y el pecíolo dotado de alas pequeñas y

estrechas, tiene espinas no muy evidentes; y las flores son aromáticas de color blanco, solas

o agrupadas, con cinco pétalos con o sin hojas; además el fruto es jugoso liso de sabor dulce

o agrio que consta de tres partes: exocarpo, epicarpo o flavedo la parte exterior denominada

piel o cáscara, la cual tiene vesículas con aceites esenciales, mesocarpo o albedo es la parte

media de textura pomposa y color blanco, y el endocarpo o pulpa que es la parte interna que

presenta tricomas, o gajos con jugo.(4)

Figura 2 Fruto del naranjo

Fuente: Andrea Cevallos A.

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2.1.4.4. Composición Química

Citrus sinensis es una rica fuente de metabolitos secundarios que contribuyen a las

actividades farmacológicas atribuidas a esta planta. Existen varios tipos de compuestos

químicos han sido identificados en las frutas, cáscara, hojas, jugo y raíces de C. sinensis, que

incluyen los siguientes grupos: flavonoides, esteroides, hidroxiamidas, alcanos y ácidos

grasos, cumarinas, péptidos, los hidratos de carbono, carbamatos y alquilaminas, los

carotenoides, los compuestos volátiles, y los elementos nutritivos, tales como potasio,

magnesio, calcio y sodio.(55)

Los compuestos químicos de la Naranja proceden biológicamente del ácido mevalónico y se

les clasifica como terpenos, siendo los más numerosos los monoterpenos y los

sesquiterpenos. Estos se utilizan en la industria para la elaboración de perfumes, jabones,

desinfectante. El aceite esencial de naranja está compuesto del 90 % de d–limoneno, en su

mayoritaria normalmente y además, en menor proporción posee terpenos. (54)

2.1.4.5. Propiedades y usos medicinales

Una amplia gama de beneficios potenciales para la salud se ha atribuido a Citrus tales como

el cáncer, antimicrobiano, antioxidante y anti-inflamatoria, profundamente asociada con su

contenido flavonoides. (56)

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32

2.1.5. ACEITE ESENCIAL (CITRUS SINENSIS)

2.1.5.1. Obtención

El aceite esencial de Naranja se localiza en sacos de forma ovalada o en la porción anaranjada

de la cáscara y es una barrera toxica natural para diversos microorganismos e insectos. La

extracción del aceite se realiza normalmente por métodos mecánicos como presión en frío

sin embargo, también se realiza este proceso por medio de hidrodestilación, destilación con

vapor, hidrodestilación asistida por microondas, extracción con solvente y extracción con

fluidos supercríticos. (57)

2.1.5.2. Propiedades Fisicoquímicas

El análisis organoléptico determina que es un líquido oleoso, ligeramente amarillento,

aromático y agradable, volátil y ligeramente picante y el análisis de miscibilidad establece

que es inmiscible en agua miscible en alcohol, hexano, éter etílico y cloroformo. (53)

2.1.5.3. Composición Química

La composición determinada por Cromatografía de Gas/ Espectrómetro de Masa indica que

el aceite esencial del pericarpio del Citrus sinensis; contiene los siguientes componentes

químicos: Limoneno, β-linalol, decanal y 2(10)- pineno. (53)

2.1.5.4. Propiedades Medicinales

La evidencia científica ha evidenciado que el aceite esencial de Naranja tiene propiedades

como antidepresivo, sedante, los aromaterapeutas afirman que este aroma ayuda a mejorar

la comunicación y es muy efectivo en contra de la celulitis, ya que ayuda a activar la

circulación; se utiliza frecuentemente en la industria de fármacos y como cosméticos porque

limpia la piel opaca, contribuyendo la eliminación de excesos de fluidos y toxinas, además

es característico por sus propiedades antibacteriales, antioxidantes y anticancerígenas por lo

que se utiliza en la producción de fármacos. (57)

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33

Este aceite tiene muchas propiedades medicinales, entre ella combate el cólico, malestar

estomacal, cáncer, diurético, es inmuno - potenciador estomacal, tónico para el sistema

digestivo, el sistema inmunológico y la piel; también se utiliza para tratar y prevenir las

deficiencias de vitaminas, resfriados, gripe y escorbuto y ayudar a combatir infecciones

virales y bacterianas; también se encontró que el extracto de cáscara de naranja era efectivo

contra la neumonía por Klebsiella. (58)

2.1.5.5. Actividad antibacteriana

El lípido A al ser la parte hidrofóbica de los lipopolisacáridos que constituyen la pared

celular de las bacterias Gram negativas, ayuda la entrada del aceite esencial de Citrus

sinensis por disolución y provoca la muerte celular por desestabilización de la membrana

externa y la membrana plasmática; además esta propiedad hidrofóbica que tiene el aceite

esencial de Naranja le permite atravesar la pared celular de bacterias Gram negativas a través

de canales compuestos por proteínas llamadas porinas, de esta manera facilita el transporte

de sustancias entre estas antimicrobianos. (59)

Los componentes del aceite esencial de cáscara de naranja ejercen actividad antibacteriana

por que interfiere en la bicapa de fosfolípidos de la membrana celular causando el incremento

de permeabilidad y pérdida de los constituyentes celulares, ya que además destruye el

sistema de enzimas en especial las responsables de la producción de energía celular y

respiración bacteriana. (59)

En altas concentraciones el aceite esencial de Citrus sinensis provoca daños severos de los

componentes estructurales de las células bacteriana ya que ocasiona perdida de homeostasis

y destruye e inactiva el material genético dando lugar a la muerte celular. (59)

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2.1.5.6. Hallazgos en Odontología

En el estudio realizado por; Shetty. S y colaboradores, las concentraciones mínimas de

extractos etanólicos de cáscara de Citrus sinensis inhibieron el crecimiento de patógenos de

caries dentales, el presente estudio también demostró un aumento en la zona de inhibición

con aumento de la concentración y se cree que la potencia antimicrobiana de las plantas se

debe a taninos, saponinas, compuestos fenólicos, aceites esenciales y flavonoides ya que se

sabe que estos compuestos son biológicamente activos y por lo tanto ayudan a las actividades

antimicrobianas de las plantas, es decir estos metabolitos secundarios ejercen actividad

antimicrobiana a través de diferentes mecanismos, tanino es un compuesto que tiene el

extracto de cáscara de Citrus sinensis se han encontrado para formar complejos irreversibles

con proteína rica en prolina, resultando en la inhibición de la síntesis de proteínas

celulares.(58)

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35

CAPÍTULO III

3.1. METODOLOGÍA

3.1.1. Tipo y diseño del estudio

- Experimental: Ya que se manipularon los procedimientos en el laboratorio de

microbiología, siguiendo un protocolo determinado para el efecto inhibitorio del

aceite esencial de cáscara de naranja frente a Porphyromonas gingivalis.

- In vitro: Debido a que este proceso experimental se realizó en un ambiente

controlado en el Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología de la

Universidad Central del Ecuador.

3.1.2. Población de estudio y muestra

- El presente estudio se evaluó a partir de una unidad de sedimento liofilizado de

Porphyromona gingivalis con referencia ATCC 33277 que una vez activada se

distribuyó en 30 cajas petri con agar sangre más sangre O positivo. (Anexo 1)

3.1.4. Criterio de inclusión y exclusión

Criterios de Inclusión:

- Aceite esencial de cáscara de naranja (Citrus sinensis) al 25%, 50% y 100%.

- Cepa de Porphyromonas gingivalis que no haya sido expuesta a alguna solución o

contaminación.

- Cepa de liofilizada de Porphyromonas gingivalis con referencia ATCC 33277.

- Cajas petri de 10 cm con agar sangre más sangre O+.

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Criterios de Exclusión:

- Aceite esencial con diferente concentración a lo establecido.

- Cepa de Porphyromonas gingivalis que haya sido expuesta a alguna solución,

contaminación o manipulación.

- Bacterias que no se activaron

- Cajas petri de mayor tamaño con otro tipo de agar que no fuese agar sangre base

más agar sangre O+.

3.1.5. Conceptualización de las variables

Variable independiente

- Aceite Esencial de cáscara de naranja (Citrus sinensis): Es una sustancia

orgánica que se obtiene del pericarpio de la naranja mediante procesos de

hidrodestilación y está compuesta terpenos y compuestos aromáticos. (63)

Variable dependiente

- Efecto Inhibitorio: Es la capacidad que tienen ciertas sustancias para inhibir el

crecimiento bacteriano de alguna cepa en particular; y determina la concentración

mínima inhibitoria, que se define como la concentración más baja que un compuesto,

extracto o fármaco que inhibe el crecimiento del microorganismo en 24 horas. (68)

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Sustancias control

- Control Positivo (Clorhexidina al 0,12%): La clorhexidina es el principal

antiséptico para el control químico del Biofilm oral y se considera como el agente

Gold standard por su acción antiplaca y antigingivitis superior a la del resto de

antisépticos que existen. (50)

- Control Negativo (Agua destilada): Sustancia dispuesta por dos átomos de

hidrógeno y uno de oxígeno incolora, insípida y pura recibe el nombre de agua; que

se destila es decir se separa una sustancia volátil de otra fija a través de energía

calorífica para luego enfriar su vapor y convertirla nuevamente en un líquido. (60)

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3.1.6. Definición operacional de las variables

Tabla 1. Operacional de las variables

Fuente. Andrea Cevallos A.

VARIABLE DEFINICIÓN

OPERACIONAL TIPO CLASIFICACIÓN

INDICADOR

CATEGÓRICO

ESCALAS

DE

MEDICIÓN

Aceite esencial

de Citrus sinensis

Es una mezcla de varias

sustancias químicas

biosintetizadas por las plantas

de Citrus sinensis, que dan el

aroma característico de

naranja y además posee

ciertas propiedades

medicinales.

Independiente

Cualitativa

Ordinal

25%

50%

100%

1

2

3

Efecto

Inhibitorio

Capacidad que tienen ciertas

sustancias de limitar

el crecimiento y

desarrollo de

microorganismos en este caso

de

Porphyromonas

Gingivalis.

Dependiente

Cuantitativa

Continua

I. Nula (-) si fue inferior

o igual a 8 mm

II. Sensible (Sensible

=+) de 9 a 14 mm

III. Muy sensible (muy

sensible = ++) de 15 a

19 mm

IV. Sumamente sensible

(S.S.= +++) si fue igual

ó superior a 20 mm

Distancia del

halo medida

en milímetros

Sustancias

Control

Sustancias que han sido

probadas bajo método

científico su acción de inhibir

o no el crecimiento de

Porphyromonas gingivalis

Independiente Cuantitativa

1.- Control negativo:

Agua destilada

2.- Control positivo:

Clorhexidina

(mm)

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3.1.7. Recursos materiales

3.1.7.1. Infraestructura

- Se utilizó el Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología de la

Universidad Central del Ecuador y el laboratorio de operaciones unitarias de la

Facultad de Química de la Escuela Politécnica Nacional. (Anexo 2 y 3)

3.1.7.2. Materiales

Materiales para la extracción del aceite esencial de cáscara de naranja.

- Tanque extractor

- Condensador

- Florentino o separador

- Material biológico (11.6 kg de Cáscara de Naranja )

- Materiales de bioseguridad: guantes, gorro, mascarilla y mandil.

Materiales para la determinación del efecto inhibitorio

- Jarra de anaerobiosis

- Sobres generadores de anaerobiosis

- 31 medios de cultivo de agar sangre humana O+

- Incubadora

- Pinzas

- Mechero

- Hisopos estériles

- Cajas Petri estériles de vidrio

- Material biológico:

- Cepa de Porphyromonas gingivalis ATCC33277

- Aceite esencial de cáscara de naranja

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Materiales de bioseguridad

- Guantes

- Gorro

- Mascarilla

- Mandil.

3.1.8. Procedimiento

3.1.8.1. Extracción del aceite esencial de cáscara de naranja por destilación.

- Se pesaron 11.6 Kg de cáscara de naranja fresca, muestra que fue donada por la

Escuela Politécnica Nacional.

- Se procedieron a lavar las cáscaras de naranja con agua purificada.

- A continuación, se cortaron pedazos pequeños de aproximadamente 2cm de ancho x

2cm de largo de cáscara de naranja.

- El material vegetal se colocó en el tanque extractor con 20 litros de agua donde

mediante ebullición a 91°C se vaporizó la mezcla durante 3 horas, rompiendo así las

moléculas vegetales para liberar el aceite esencial.

- Este vapor pasó a continuación al condensador, y después a un florentino donde se

separó el agua del aceite por diferencia de densidades.

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Figura 3. Extracción del Aceite esencial de cáscara de naranja por destilación con arrastre de

vapor

Fuente: Andrea Cevallos A.

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42

3.1.8.2. Prueba de difusión por disco en agar

3.1.8.2.1. Activación de la cepa bacteriana

- Se realizó la activación como lo indica la casa comercial de la siguiente manera:

- Se dejó que la bolsa de KWIK-STIK™ sin abrir se equilibre a temperatura ambiente,

y después se abrió la bolsa rasgándola por la muesca y se retiró la unidad KWIK-

STIK™.

- Se retiró la parte de la lengüeta de la etiqueta y la misma que se pegó a la placa del

cultivo primario o a la ficha de control de calidad.

- Se presionó solo una vez la ampolla en la parte superior del KWIK-STIK™ (justo

por debajo del menisco del líquido de la ampolla que se encontraba en la tapa) para

liberar el líquido hidratante.

- Sosteniendo verticalmente se golpeó ligeramente en una superficie dura para facilitar

que pase el fluido al fondo de la unidad que contiene el gránulo.

- Se dejó que el fluido hidratante fluya a través del eje del hisopo y dentro de la parte

inferior de la unidad que contiene el gránulo.

- Después se procedió a apretar la parte inferior de la unidad, con el fin triturar por

completo el gránulo hasta que la suspensión sea homogénea.

- Se saturó de inmediato el hisopo con el material hidratado y se transfirió al medio de

agar.

- Se inoculó la placa de cultivo primario enrollando suavemente el hisopo sobre un

tercio de la placa, haciendo un estriado para facilitar el aislamiento de colonias.

- A continuación, el cultivo primario se dejó en incubación a 35º C por 7 días en una

jarra de anaerobiosis con sobres para anaerobiosis. (70) (Anexo 4)

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Figura 4. Pasos para la activación de la cepa bacteriana (Porphyromonas Gingivalis)

Fuente: Andrea Cevallos A.

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3.1.8.2.2. Estandarización y preparación del inóculo

- A los 7 días se observó el crecimiento de las colonias bacterianas.

Figura 5. Cultivo primario colonias de Porphyromonas Gingivalis

Fuente: Andrea Cevallos A.

- Una vez obtenido el cultivo primario, se tomó de 3 a 5 colonias de la placa, se sembró

en un medio líquido de Muller Hinton y se incubó a 35ºC durante 2 horas.

- A las 2 horas se comparó con el estándar de turbidez de McFarland al 0.5 .

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Figura 6. Estándar de turbidez de McFarland

Fuente: Andrea Cevallos A.

3.1.8.2.3. Inoculación de las placas

- A partir de la estandarización, se inoculó las placas de agar deslizando el hisopo con

el inoculo por la superficie del agar tres veces sin dejar ninguna zona libre, rotando

la caja petri cada vez y pasándola por último por la periferia del agar para conseguir

una siembra uniforme.

- Se dejó secar de 3 a 5 minutos antes de depositar los discos en los medios de cultivo.

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- Las 30 muestras fueron previamente rotuladas con números guías de la siguiente

manera:

1 Control negativo (Agua destilada)

2 Aceite esencial de cáscara de naranja al 25%

3 Aceite esencial de cáscara de naranja al 50%

4 Aceite esencial de cáscara de naranja al 100%

5 Control positivo (Clorhexidina 0,12%)

Figura 7. Cajas petri inoculadas y rotuladas

Fuente: Andrea Cevallos A.

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3.1.8.2.4. Colocación de discos

- Se procedió a colocar los discos de papel previamente embebidos con cada sustancia

para esto se utilizó cajas petri vacías; cada uno con aceite esencial de cáscara de

naranja (Citrus sinensis) en sus respectivas concentraciones 25 %, 50% y 100%;

además clorhexidina al 0,12 % y agua destilada, como control positivo y control

negativo respectivamente.

Figura 8 Discos de papel embebidos en sustancias

Fuente: Andrea Cevallos A.

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48

- Se colocaron los discos de papel a una distancia no menor de 15mm entre sí y a 1,5

cm del borde de la placa.

- Se presionaron ligeramente sobre la superficie del agar para que contacten

perfectamente.

Figura 9 Colocación de discos de papel

Fuente: Andrea Cevallos A.

-

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49

- Se procedió a incubar las placas invertidas dentro de una jarra de anaerobiosis a

35°C.

Figura 10 Jarra de anaerobiosis

Fuente: Andrea Cevallos A.

3.1.8.2.5. Lectura de resultados

- Al cabo de 48h se observaron los resultados.

- Se midieron los halos con una regla Hi antibiotic Zone Scale.

- Los resultados se anotaron en la tabla diseñada para la recolección de datos.

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Figura 11 Medición de halos de inhibición a las 48 horas

Fuente: Andrea Cevallos A.

3.1.9. Manejo desustancias y materiales de desechos

- El manejo de sustancias y materiales se llevó a cabo en el Laboratorio de Microbiología

de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador y en el Laboratorio

de Unidades Operacionales de la Facultad de Química de la Escuela Politécnica

Nacional, en los cueles se siguieron los protocolos y principios establecidos por La

Organización Mundial de la Salud en el MANUAL DE BIOSEGURIDAD EN EL

LABORATORIO.

- El manejo de desechos se realizó tal como lo establece “El reglamento de Manejo de

Desechos Infecciosos para la red de servicios de Salud en el Ecuador”; realizado por el

Ministerio de Salud Pública Del Ecuador. (Anexo 5 y 6)

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3.1.10. Aspectos Bioéticos

Este trabajo de investigación se realizó de manera in vitro, dentro del laboratorio de

Microbiología la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador, que se

encuentra sujeto a normas bioéticas y de bioseguridad como se fundamentan en el principio

de Beneficencia ya que va en favor de solucionar problemas futuros producidos por ciertos

patógenos, los otros aspectos bioéticos no se aplica en esta investigación, ya que es un

estudio in vitro, y no implica riesgo ya que no se utilizará especies vivas a excepción de la

cepa.

Se contó con las respectivas autorizaciones y certificados. (Anexo 2 y 3)

3.1.11. Bondad Ética

En el presente estudio in vitro se midieron los halos de inhibición, los mismos que

demostraron la susceptibilidad de Porphyromonas gingivalis frente al aceite esencial de

cáscara de naranja en tres distintas concentraciones, 25, 50 y 100%; y de esta manera puede

contribuir con una opción de tratamiento de complemento para la enfermedad periodontal.

3.1.12. Confidencialidad

Los resultados que se obtuvieron en esta investigación pertenecen al autor y a la Universidad

Central Del Ecuador.

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52

CAPÍTULO IV

4.1. ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS

4.1.1. Medición y recolección de datos

Este estudio se realizó tomando como referencia el método de antibiograma disco-placa

basado en el trabajo de Bauer, Kirby y colaboradores es uno de los métodos que el National

Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS) recomienda para la determinación

de la sensibilidad bacteriana a los antimicrobianos.

Por lo tanto al cabo de las 48 horas de incubación del inóculo con los discos de papel

embebidos con las respectivas sustancias, se procedió a la medición de los halos de

inhibición circunscritos alrededor de los discos de papel de manera manual con ayuda de la

regla Hi antibiotic Zone Scale.

Los datos obtenidos de la medición de los halos, se registraron y organizaron en una tabla

diseñada en Microsoft Excel.

Figura 12 Halos de inhibición a las 48 horas

Fuente: Andrea Cevallos A.

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53

Figura 13 Tabla de datos

Fuente: Andrea Cevallos A.

La actividad se consideró en función a lo descrito por el Dr. C. Duraffourd y el Dr. JC Lapraz

de la Sociedad Francesa de Fitoterapia y Aromaterapia:

- Inhibición nula (-) si fue inferior o igual a 8 mm

- Sensibilidad límite (sensible = +) de 9 a 14 mm

- Sensibilidad media (muy sensible = ++) de 15 a 19 mm

- Sumamente sensible (S.S. = +++) si fue igual o superior a 20 mm. (61)

CULTIVO

MICRO BIO LÓ GICO

PORPHYROMONAS

GINGIVALIS

DISCO DE

PAPEL # 1

Control

negativo

DISCO DE

PAPEL # 2

Aceite al 25%

DISCO DE

PAPEL # 3

Aceite al 50%

DISCO DE

PAPEL # 4

Aceite al

100%

DISCO DE

PAPEL # 5

Control

positivo

Muestra # 1 0 10 12 16 24

Muestra # 2 0 10 11 15 27

Muestra # 3 0 10 12 22 26

Muestra # 4 0 8 10 16 23

Muestra # 5 0 8 10 12 22

Muestra # 6 0 9 10 12 25

Muestra # 7 0 8 9 12 22

Muestra # 8 0 8 11 13 22

Muestra # 9 0 11 9 16 24

Muestra # 10 0 11 11 16 16

Muestra # 11 0 10 12 17 16

Muestra # 12 0 11 10 14 23

Muestra # 13 0 10 11 14 21

Muestra # 14 0 11 12 15 16

Muestra # 15 0 8 10 15 14

Muestra # 16 0 8 10 12 15

Muestra # 17 0 8 8 12 13

Muestra # 18 0 8 9 12 15

Muestra # 19 0 8 10 12 16

Muestra # 20 0 10 11 13 20

Muestra # 21 0 8 9 10 14

Muestra # 22 0 7 9 10 14

Muestra # 23 0 8 10 12 15

Muestra # 24 0 8 10 12 15

Muestra # 25 0 10 11 11 15

Muestra # 26 0 8 8 12 16

Muestra # 27 0 8 9 12 15

Muestra # 28 0 8 10 12 15

Muestra # 29 0 8 9 11 15

Muestra # 30 0 11 11 16 16

DIÁMETRO DE LA ZO NA DE INHIBICIÓ N (mm)

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54

4.1.2. Análisis de resultados

En primer lugar para verificar que las muestras tomadas provienen de una población con

distribución Normal, se realizó las pruebas de Kolmogorov - Smirnov y la prueba de Shapiro

– Wilk, la misma que reportó cuervas asimétricas en el estudio.

Si las muestras provienen de poblaciones con distribución normal entonces se realizan

pruebas paramétricas: T student, ANOVA.

Si las muestras No provienen de poblaciones con distribución normal entonces se realizan

pruebas no paramétricas (orden, signos): Mann Whitney, Kruskal Wallis, Wilcoxon

Para cada prueba de Hipótesis, se compara el valor de significación con el 0,05 (95% de

confiabilidad), si el nivel de significación es superior a 0,05 se acepta Ho (hipótesis inicial),

si es inferior a 0,05 se acepta Ha (hipótesis alternativa).

4.1.3. Prueba de Normalidad

Ho: Las muestras provienen de poblaciones con distribución Normal

Ha: Las muestras NO provienen de poblaciones con distribución Normal

Tabla 2 Pruebas de normalidad

Advertencias

Control negativo es constante.

Pruebas de normalidad

Kolmogorov-Smirnov Shapiro-Wilk

Estadístico gl Sig. Estadístico gl Sig.

Aceite al 25% 0,343 30 0,000 0,783 30 0,000

Aceite al 50% 0,180 30 0,014 0,921 30 0,028

Aceite al 100% 0,251 30 0,000 0,857 30 0,001

Control positivo 0,305 30 0,000 0,845 30 0,000

Fuente: Colaboración Ing. Jaime Molina

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55

En la prueba de Normalidad de Kolmogorov-Smirnov, los valores del nivel de significación

(Sig) son inferiores a 0,05 (95% de confiabilidad), por tanto se acepta Ha, esto es las

muestras NO provienen de poblaciones con distribución Normal, entonces para la

comparación de grupos se utiliza pruebas no paramétricas: Kruskal Wallis.

Gráfico 1 Campana de Gauss aceite al 25%

Fuente: Colaboración Ing. Jaime Molina

- No se asemeja a la curva Normal

Gráfico 2 Campana de Gauss aceite al 50%

Fuente: Colaboración Ing. Jaime Molina

- No se asemeja a la curva Normal

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56

Gráfico 3 Campana de Gauss aceite al 100%

Fuente: Colaboración Ing. Jaime Molina

- No se asemeja a la curva Normal

Gráfico 4 Campana de Gauss Clorhexidina al 0.12%

Fuente: Colaboración Ing. Jaime Molina

- No se asemeja a la curva Normal

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57

4.1.4. Pruebas no paramétricas: Comparación entre sustancias

Ho: (hipótesis nula) Las muestras proceden de poblaciones con la misma distribución de

probabilidad (Medias similares)

Ha: (hipótesis alternativa) Existen diferencias respecto a la tendencia central de las

poblaciones.

Tabla 3 Comparación entre sustancias

Fuente: Colaboración Ing. Jaime Molina

Descriptivos de las muestras

MEDIDAS

n Media

Desviación

estándar

Error

estándar

95% del intervalo de

confianza para la media

Mínimo Máximo

Límite

inferior

Límite

superior

Control negativo 30 0,00 0,000 0,000 0,00 0,00 0 0

Aceite al 25% 30 8,97 1,273 0,232 8,49 9,44 7 11

Aceite al 50% 30 10,13 1,137 0,208 9,71 10,56 8 12

Aceite al 100% 30 13,47 2,543 0,464 12,52 14,42 10 22

Control positivo 30 18,33 4,326 0,790 16,72 19,95 13 27

Total 150 10,18 6,495 0,530 9,13 11,23 0 27

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58

Gráfico 5 Comparación de medias

Fuente: Colaboración Ing. Jaime Molina

En el gráfico #1 se puede observar la comparación de medias de las diferentes muestras

tomadas, en las que se observa que el aceite al 25% tiene una media de inhibición de 8, 97

es decir que ya existe sensibilidad, mientras que el aceite al 50% la media es de 10,13 que

es un valor mayor a la del aceite al 25% y en este caso nos indica que Porphyromona

gingivalis se muestra sensible a esta concentración.

Mientras que la media del aceite al 100% es de 13,47 es decir supera a la de aceite al 25% y

a la del aceite al 50%, pero sin embargo no iguala a la del control positivo que es de 18,33.

No obstante esta figura nos indica que el tamaño del halo de inhibición es directamente

proporcional a la concentración del aceite, es decir a mayor concentración mayor es el

diámetro del halo de inhibición.

En la gráfica se observa que los valores de aceite al 25%, 50% y 100% tienen valores

intermedios entre el control positivo y negativo, para verificar si esta diferencias son

significativas se utiliza la prueba no paramétrica de Kruskal Wallis.

0,00

8,9710,13

13,47

18,33

0,00

2,00

4,00

6,00

8,00

10,00

12,00

14,00

16,00

18,00

20,00

Control negativo

Aceite al 25% Aceite al 50% Aceite al 100%

Control positivo

Comparacion de medias

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59

4.1.5. Prueba Kruskal Wallis

En estadística, la prueba de Kruskal-Wallis es un método no paramétrico para probar si un

grupo de datos proviene de la misma población.

Por lo que a continuación se detalla mediante gráficos de cajas a y bigotes cada sustancia:

Control negativo

Gráfico 6 Diagrama de caja y bigotes del control negativo

Fuente: Colaboración Ing. Jaime Molina

Podemos observar claramente que el control negativo perteneciente al agua destilada es una

constante.

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60

Aceite al 25%

Gráfico 7 Diagrama de caja y bigotes del aceite al 25%

Fuente: Colaboración Ing. Jaime Molina

Este gráfico pertenece al aceite esencial al 25% donde nos indica que el valor mínimo de

inhibición es 7, el máximo es 11 y la media es 8 es decir que el 50% de los datos es 8 que

nos indica que el aceite esencial al 25% ya tiene efecto inhibitorio.

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61

Aceite al 50%

Gráfico 8 Diagrama de caja y bigotes del aceite al 50%

Fuente: Colaboración Ing. Jaime Molina

El gráfico # 4 nos interpreta datos pertenecientes al aceite esencial al 50% donde se puede

observar que el valor mínimo de inhibición es 8, el valor máximo es 12 y la media es 10 lo

que quiere decir que el 50% de las muestras tuvo una inhibición de 10.

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Aceite al 100%

Gráfico 9 Diagrama de caja y bigotes del aceite al 100%

Fuente: Colaboración Ing. Jaime Molina

Este gráfico representa al aceite al 100% y se puede ver que el dato mínimo es de 10 y el

máximo es de 17, por lo tanto el valor de la media recae en 12 lo que nos indica que el 50%

pertenece a 12 y este valor nos indica que P. Gingivalis se muestra sensible al aceite esencial

al 100%

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Control Positivo

Gráfico 10 Diagrama de caja y bigotes de la clorhexidina al 0.12%

Fuente: Colaboración Ing. Jaime Molina

Este gráfico que pertenece a la Clorhexidina al 0,12% como control negativo en la que

claramente se puede ver que el valor mínimo es mucho mayor que el aceite y es de 15

mientras que el máximo es de 27, siendo la media de 16, por lo tanto quiere P. Gingivalis es

sumamente sensible a la clorhexidina.

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Gráfico 11 Prueba Kruskal Wallis

Fuente: Colaboración Ing. Jaime Molina

De la Prueba de Kruskal-Wallis, el valor del nivel de significación (Sig. asintótica (prueba

bilateral) = 0,000) es inferior a 0,05 (95% de confiabilidad), luego se acepta Ha, esto es,

existen diferencias respecto a la tendencia central de las poblaciones. No todas las medias

de las muestras son similares.

Es decir que hay diferencias en la forma de distribución de cada una de ellas, lo que nos

indica esta figura es la ubicación de las medias dentro del rango de 95% de confiabilidad

con un poder de significancia menor al 0.05 lo que indica que mi estudio es real.

Podemos observar que las medias marcan puntos diferentes a excepción de las del aceite al

25% con la del aceite al 50%, esta dos casi si asemejan es decir que estadísticamente casi no

habría diferencia.

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65

4.1.6. Prueba dos a dos o de emparejamiento

Para determinar cuáles son similares o diferentes se hace la prueba dos a dos:

Gráfico 12 Prueba dos a dos o de emparejamiento

Fuente: Colaboración Ing. Jaime Molina

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66

En el gráfico 8 de la prueba dos a dos se detalla el valor de significancia estadística entre

sustancias, en la que previamente se debe saber que cuando existe una significancia mayor

a 0,05 indica que son similares y no es estadísticamente significativo; mientras que si hay un

valor de significancia menor a 0,05 indica que NO son similares y es estadísticamente

significativo.

Por lo tanto en este estudio se observa que entre el aceite al 25% y el aceite al 50% hay un

valor se significancia estadística de 0,147 que es mayor al 0,05; es decir que entre estas dos

sustancias no existe diferencia significativa y son similares; lo cual nos estaría indicando que

las dos sustancias tiene casi igual eficacia de inhibición bacteriana.

Pero también esta prueba de emparejamiento muestra valores de significancia menores a

0,05 entre las siguientes sustancias:

Control negativo y Aceite al 25%

Control negativo y Aceite al 50%

Control negativo y Aceite al 100%

Control negativo y Control positivo

Aceite al 25% y Aceite al 100%

Aceite al 25% y Control positivo

Aceite al 50% y Aceite al 100%

Aceite al 50% y Control positivo

Aceite al 100% y Control positivo

Lo que quiere decir que estas sustancias NO son similares y es estadísticamente significativo;

por lo tanto vemos que entre el control negativo y el resto de sustancias hay deferencia

significativa, lo cual nos indica que a diferencia del control negativo el resto de sustancias si

tuvieron efecto inhibitorio.

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67

Entre el aceite al 25%, el aceite al 100% y el control positivo también existe diferencia

significativa, teniendo más eficacia de inhibición el aceite al 100% y el control positivo; y

sucede de la misma manera con el aceite al 50% comparado con el aceite al 100% y el control

positivo, hay diferencia significativa, y el aceite al 100% y el control positivo tienen mayor

eficacia de inhibición.

Además al comparar el aceite al 100% con el control positivo existe diferencia significativa,

entonces se puede concluir que a pesar de existir inhibición con el aceite al 100% no supera

la eficacia de inhibición de la clorhexidina al 0,12% que es el control positivo.

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68

CAPÍTULO V

5.1. DISCUSIÓN

A partir de los hallazgos encontrados en este estudio aceptamos la hipótesis de la

investigación planteada es decir, el aceite esencial de cáscara de Naranja (Citrus sinensis),

tiene efecto inhibitorio sobre cepas de Porphyromonas gingivalis ATCC33277.

Estos resultados guardan relación con lo que sostienen Hussain en el 2015, en el que

confirmaron el potencial antimicrobiano de la cáscara de (Citrus sinensis) contra patógenos

periodontales; los datos estadísticos de la prueba no paramétrica entre sustancias del

presente estudio muestran que existe diferencia estadística del aceite esencial en sus tres

concentraciones y con los controles, y que los halos de inhibición del aceite al 100% tienen

un límite inferior de 12.52 mm y un límite superior de 14.2mm lo que quiere decir que la

cepa de Porphyromonas gingivalis se muestra muy sensible al aceite esencial del cáscara de

naranja al 100%.(16)

Guerra, en el 2014, luego de comparar los análisis estadísticos determina que las bacterias

mantuvieron un mismo comportamiento de inhibición de crecimiento, frente a las

concentraciones de aceite esencial utilizados, de esta manera, observó que el

comportamiento de P. aeruginosa y E. coli, no mostraron diferencias significativas (P>0,05)

al comparar las concentraciones de aceite esencial entre 10 y 50%, lo cual podría indicar que

la concentración más baja (10%) tendría el mismo efecto inhibitorio que la concentración

más alta (50%); ocurriendo lo mismo en las concentraciones de 60 a 100%, en la cual una

concentración de 60% sería igualmente efectiva que la de 100%, teoría que concuerda con

el presente estudio donde la prueba estadística de emparejamiento dos a dos indica que entre

el aceite al 25% y aceite al 50%son similares. (59)

Shetty, en el 2016, encontró que el extracto etanólico caliente de (Citrus sinensis) era más

eficaz y con mayor zona de inhibición que el etanol frío contra patógenos de las caries

dentales, en todas las concentraciones, los extractos etanólicos calientes mostraron una

mayor zona de inhibición que la etanólica fría contra Streptococcus mutans y Lactobacillus

Acidophilus; los extractos de agua fría y caliente inhibieron el crecimiento de

microorganismos a concentraciones muy altas de 34,9 y 32 mg / ml contra Sterptococcus

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mutans, y concentración mínima inhibitoria de extractos etanólicos de cáscara de Citrus

sinensis osciló entre 12-15 mg / frente a los patógenos de las caries dentales. (58)

Finalmente en la presente investigación se determinó que a mayor concentración del aceite

mayor es el efecto inhibitorio de esta manera el aceite al 25% tuvo una media de 8,97 mm,

el aceite al 50% una media de 10,13 mm y el aceite al 100% una media de 13,47 lo cual

comparado con los valores estándar de National Committee for Clinical Laboratory

Standards (NCCLS), indican sensibilidad de Porphyromonas gingivalis ATCC33277 al

aceite esencial de Citrus sinensis, pero aun así la Clorhexidina al 0,12% sigue siendo mejor

antibacteriano ya que la media de esta fue de 18,33mm.

A demás que la prueba de emparejamiento en este estudio demostró valores de significancia

estadística menores a 0.05 entre todas las sustancias a excepción de la comparación entre

aceite al 25% y aceite al 50% donde el valor de significancia fue mayor al 0.05 lo que quiere

decir que entre estas dos sustancias no existe diferencia significativa y por lo tanto son

similares y su eficacia de inhibición es la misma.

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70

5.2. CONCLUSIONES

- El aceite esencial de cáscara de Naranja (Citrus sinensis), al 25, 50 y 100%, inhibe

el crecimiento bacteriano in- vitro de Porphyromonas gingivalis ATCC33277.

- Los halos de inhibición del aceite esencial de Citrus sinensis al 25% tuvieron un

promedio de 8,97 mm, al 50% un promedio de 10,13 mm y al 100% de 13,47 mm

frente a la cepa Porphyromonas gingivalis ATCC33277, es decir que existió

sensibilidad.

- El efecto inhibitorio del aceite esencial de cáscara de Naranja (Citrus sinensis) ante

cepas de Porphyromonas gingivalis ATCC33277 es directamente proporcional al

porcentaje de concentración del aceite, es decir que el aceite esencial al 100% tiene

mayor eficacia inhibitoria que al 25 y 50 %.

- El efecto inhibitorio de la Clorhexidina al 0.12 % es mayor sobre cepas

Porphyromonas gingivalis ATCC33277 a diferencia del aceite esencial de cáscara de

Naranja (Citrus sinensis).

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5.3. RECOMENDACIONES

- Se recomienda continuar con este tipo de investigaciones in-vitro con el fin de

obtener mayor información acerca de las propiedades medicinales que poseen las

plantas que en su mayoría son desconocidas.

- Hacer el mismo estudio para probar sensibilidad ante diferentes microorganismos

patógenos de la cavidad oral causantes de enfermedades comunes como caries dental

y candidiasis oral.

- Obtener muestras de Porphyromonas gingivalis aisladas a partir de muestras de

pacientes, para luego ser sometidas a las mismas sustancias y evaluar y comparar los

resultados.

- Realizar cromatografías químicas para tener mayor detalle de las sustancias

biológicas activas del aceite esencial de Citrus sinensis responsables del efecto

inhibitorio bacteriano.

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ANEXOS

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ANEXO 1

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ANEXO 2

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ANEXO 3

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ANEXO 4

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ANEXO 5

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ANEXO 6

MANUAL DE DESECHOS

Para realizar la correcta manipulación de desechos se seguirán parámetros establecidos en el Reglamento de

manejo de desechos infecciosos para la red de servicios de salud en el Ecuador realizado por el Ministerio de

Salud Pública, por lo cual se cita los siguientes artículos:

Art. 4. Para efectos del presente reglamento, los desechos producidos en los establecimientos de salud se

clasifican en:

a. Desechos generales o comunes.

b. Desechos infecciosos.

c. Desechos especiales.

B.-Desechos infecciosos.

Son aquellos que contienen gérmenes patógenos que implican un riesgo inmediato o potencial para la salud

humana y para el ambiente.

Son desechos infecciosos

b.2 Desechos anátomo-patológicos: órganos, tejidos, partes corporales que han sido extraídos mediante cirugía,

necropsia u otro procedimiento médico

Art.10.- Los desechos infecciosos y patológicos serán colocados en recipientes plásticos de color rojo con fundas

plásticas de color rojo.

Art.26.-

Los desechos serán recolectados, debidamente clasificados y empacados para transportarlos desde los sitios de

generación a los almacenamientos intermedio y final.

Art.28.- El tratamiento de los desechos infecciosos consiste en la inactivación de la carga contaminante

bacteriana y/o viral en la fuente generadora

Art. 29.- Los métodos de tratamiento de los desechos infecciosos son:

a. Esterilización (autoclave): Mediante la combinación de calor y presión proporcionada por el vapor de

agua, en un tiempo determinado.

B.-Desinfección química: Mediante el contacto de los desechos con productos químicos específicos.

Art.35.-La disposición final es un método de confinación de los desechos infecciosos y especiales generados en

las instituciones de salud, que se realizará de acuerdo a lo establecido en el presente reglamento.

Art.44.-Es Obligatorio que todo el personal que manipula los desechos infecciosos, cortopunzantes, especiales

y comunes utilicen las medidas de protección de acuerdo a las normas nacionales e internacionales.

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ANEXO 7

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ANEXO 8

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