UNIVERSIDAD EARTH
Evaluación de la aplicación de microorganismos eficaces (EM) y derivados de este, en el manejo de la Sigatoka negra (Mycosphaerella fijiensis) en el
cultivo de banano bajo un sistema agroforestal
Fernando Moya
Trabajo de Graduación presentado como requisito parcial para optar al título de Ingeniero Agrónomo con el grado de Licenciatura
Guácimo, Costa Rica
Diciembre, 2001
ii
Trabajo de Graduación presentado como requisito parcial para optar al título de Ingeniero Agrónomo con el grado de Licenciatura
Profesor Asesor Shuichi Okumoto, M.Sc.
Profesor Coasesor Pánfilo Tabora, Ph. D.
Decano Daniel Sherrard, Ph.D.
Candidato Fernando Moya
Diciembre, 2001
iii
DEDICATORIA
Con este trabajo he culminado una etapa trascendental en mi vida, este se
lo dedico enteramente a mi país Ecuador, que es quien a través de mis padres y
familia me motivó a seguir adelante, persiguiendo un solo ideal, ideal que significa
un compromiso moral y ético ante la sociedad que demanda de hombres íntegros,
capaces de rescatarla.
Además, dedico este trabajo a las personas que creyeron en mi, aun
cuando en etapas difíciles de mi vida mostré debilidad, a las personas que no se
detuvieron a medir el apoyo que me brindaron cuando más lo necesitaba.
Para finalizar, dedico este trabajo a mi persona, para darme cuenta que con
amor y esfuerzo se pueden alcanzar las cosas y para comprometerme en un reto
más grande con la sociedad y darme cuenta que si bien es cierto esta es la
finalización de una etapa de mi vida pero es también el primer paso de un gran
cambio
iv
AGRADECIMIENTO
En primer lugar agradezco a mi familia por el apoyo que me brindó durante
los cuatro años de mi carrera y por haberme dado la oportunidad de estudiar en
una gran universidad como esta.
Agradezco también a los profesores que no fueron mezquinos y me
brindaron todos sus conocimientos y aportaron en gran parte en mi desarrollo
profesional. Quiero prolongar un agradecimiento a mis profesores asesores del
proyecto, Shuichi Okumoto y Pánfilo Tabora por la ayuda que me brindaron
durante la realización del mismo, como también a Eleasib, trabajador de la
universidad EARTH que me ayudó desinteresadamente en el campo.
Además agradezco a mis amigos que durante cuatro años nos acoplamos y
formamos una familia muy unida.
Para finalizar quiero expresa mi agradecimiento a Ingrid Sánchez y su
familia, por haberme abierto las puertas de su hogar y hacerme parte de este.
Significó un apoyo infinito para mi, gracias.
v
RESUMEN
La sigatoka negra ( Mycosphaerella fijiensis) es la enfermedad más
importante en el cultivo de banano y su control representa el 25 % del costo de
producción. Tradicionalmente se ha recurrido a herramientas química para su
control, que están creando un desequilibrio ambiental y social. Como una
alternativa de control amigable con el ambiente, se encuentra el control biológico,
que se basa en el uso de microorganismos antagónicos con el patógeno o que
permite un mejor desarrollo de la planta que la hace más resistente a la
enfermedad. Este experimento tiene como objetivo evaluar el uso de
microorganismos eficaces aplicados con un fijador natural, en el control de la
sigatoka negra. El experimento se llevó a cabo en la finca agrocomercial de la
Universidad EARTH, en un cultivo de banano del clon Williams bajo un sistema
agroforestal. Los tratamientos usados fueron EM 1 al 1%, desechos líquidos de la
planta de papel de pinzote fermentados con EM a una concentración del 10% y
EM – 5 al 1 %. Como resultados se obtuvo que todos los tratamientos presentan
control, sin embargo el EM 1 es el mejor. Además los tratamientos EM – 1 y
desechos líquidos muestran un estímulo en el desarrollo de hojas. Como
conclusión, el uso de EM es factible en el combate de la sigatoka negra, además
el uso de los desechos líquidos en el combate de la enfermedad es una buena
alternativa en el manejo de desechos para la planta de papel.
Palabras claves:
Sigatoka negra, EM 1, EM 5 y desechos líquidos, papel, pinzote, banano
Moya, F. 2001. Evaluación de la aplicación de microorganismos eficaces
(EM) y
derivados de este, en el manejo de la Sigatoka negra (Mycosphaerella
fijiensis) en el cultivo de banano bajo un sistema agroforestal. Trabajo de
graduación Universidad EARTH. Guácimo, CR. 39 p.
vi
ABSTRACT
The black leaf streak (Mycosphaerella fijiensis) is the most important
disease in bananas, and its control represents 25% of the production cost.
Traditionally this disease has been controlled with chemicals that have created an
environmental and social disequilibrium. An environmentally friendly alternative is
biological control based on the use of antagonistic microorganisms that allow better
plant growth and resistance to disease. In this experiment an evaluation was made
on the use and application of effective microorganisms (EM) with a natural fixerr, in
the control of black leaf streak. The experiment was carried out in the
agrocomercial banana farm of EARTH University using the clone Williams under
an agro forestry system. The treatments were EM – 1 at 1%, liquid wastes of the
paper processing plant, fermented with EM - 1 in a concentration of 10% and EM -
5 at 1%. Results obtained demonstrated that all the treatments controlled the
disease, nevertheless the EM - 1 was the best. In addition EM - 1 and liquid
wastes showed some stimulant effect in the development of leaves. In conclusion,
the use of EM as a control of black leaf streak is a good alternative. In addition the
use of the liquid wastes in the control of the disease is also a good alternative in
the handling of wastes for the paper processing plant.
Word Key: black leaf streak, effective microorganisms (EM), liquid wastes.
Moya, F. 2001. Evaluación de la aplicación de microorganismos eficaces
(EM) y
derivados de este, en el manejo de la Sigatoka negra (Mycosphaerella
fijiensis) en el cultivo de banano bajo un sistema agroforestal. Proyecto de
graduación Universidad EARTH. Guácimo, CR. 39 p.
vii
TABLA DE CONTENIDO
Página DEDICATORIA................................................................................................................ III AGRADECIMIENTO.......................................................................................................IV RESUMEN .........................................................................................................................V ABSTRACT .......................................................................................................................VI TABLA DE CONTENIDO ..............................................................................................VII LISTA DE FIGURAS .......................................................................................................IX LISTA DE ANEXOS .........................................................................................................X
1. INTRODUCCIÓN........................................................................................................ 1
2. OBJETIVOS ................................................................................................................. 4
3. REVISIÓN DE LITERATURA .................................................................................. 5 3.1.1. La Importancia del Banano y el Impacto de la Sigatoka Negra. ....................... 5 3.1.2. Taxonomía, Biología y Sintomatología .............................................................. 6
3.2. EL AGROECOSISTEMA BANANERO Y LAS ENFERMEDADES ........................................ 9 3.3. LA IMPORTANCIA DE LA BIODIVERSIDAD EN LA AGRICULTURA............................... 9 3.4. MICROORGANISMOS EFICACES (EM) .................................................................. 10 3.5. MANEJO DE LA SIGATOKA NEGRA CON MICROORGANISMOS EFICACES (EM) ..... 13
4. MATERIALES Y MÉTODOS.................................................................................. 14 4.1. LOCALIZACIÓN DEL EXPERIMENTO ........................................................................ 14 4.2. MATERIAL EXPERIMENTAL .................................................................................... 14 4.3. TRATAMIENTOS ..................................................................................................... 14
4.3.1. Experimento...................................................................................................... 15 4.4. PREPARACIÓN DE TRATAMIENTOS.......................................................................... 15 4.5. APLICACIÓN DE TRATAMIENTOS ............................................................................ 17 4.6. DISEÑO EXPERIMENTAL......................................................................................... 17 4.7. VARIABLES EVALUADAS Y ANÁLISIS ESTADÍSTICO ................................................ 17 4.8. MANEJO AGRONÓMICO .......................................................................................... 18
5. RESULTADOS Y DISCUSIÓN................................................................................ 19 5.1. ENSAYOS PRELIMINARES ....................................................................................... 19
5.1.1. Selección del Fijador........................................................................................ 19 5.1.2. Determinación de la concentración de desecho líquido para la aplicación.... 20
5.2. FASE EXPERIMENTAL ............................................................................................. 20
6. CONCLUSIONES ...................................................................................................... 30
7. RECOMENDACIONES ............................................................................................ 31
8. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS ..................................................................... 32
viii
9. ANEXOS ..................................................................................................................... 34
ix
LISTA DE FIGURAS
Figura 1. Escala de Stover modificada por Gauhl (1989) citado por (Marín y Romero, 1992) .........................................................................................8
Figura 2. Comparación de los promedios ponderados de infección entre tratamientos a través del tiempo ............................................................21
Figura 3. Comparación de los promedios ponderados de infección (PPI) entre los tratamientos ...........................................................................................22
Figura 4. Promedio de la hoja más joven enferma durante el periodo del experimento. ..........................................................................................24
Figura 5. Comparación de los promedios de la hoja más joven enferma (HMJE) entre los tratamientos.............................................................................25
Figura 6. Observación de número de hojas por tratamiento durante el periodo del experimento. ..........................................................................................27
Figura 7. Comparación del promedio de hojas en los diferentes tratamientos......28
x
LISTA DE ANEXOS
Anexo 1. Ensayo preliminar 1: concentración de fijador........................................35
Anexo 2. Ensayo Preliminar 2: concentración de desechos líquidos ....................35
Anexo 3. Análisis estadístico del efecto de los tratamientos en la supresión de la enfermedad. Prueba Duncan .................................................................36
Anexo 4. Efecto de los tratamientos en cuanto a HMJE, según la prueba Duncan...............................................................................................................36
Anexo 5. Efecto de los tratamientos en el número total de hojas..........................37
Anexo 6. Análisis químico del EM y desechos líquidos.........................................37
1
1. INTRODUCCIÓN
El banano y el plátano, siendo uno de los principales cultivos del trópico
presenta como principal problema la enfermedad conocida como sigatoka negra
(Mycosphaerrella fijiensis MORELET), esta enfermedad ataca las hojas de las
plantas, produciendo un deterioro de las mismas, el cual esta reduce la
productividad como la calidad de la fruta al favorecer la maduración prematura de
los racimos.
El costo por hectárea en control para el año 1991 según Marín y Romero
(1992) fue de 600 – 800 dólares. Este costo se ha incrementado hasta $1500 por
ha, especialmente en las condiciones de la finca de Empresa Agrocomercial de la
Universidad EARTH (Quiroz, 2001), representando este, en 25 % del costo de
producción. Con respecto al daño morfológico que este hongo puede causar a la
planta, es muy grave, podría estar en el 50% de reducción del área fotosintética
provocando pérdidas drásticas en la producción (Ploetz, 1990)
El control de esta enfermedad ha demandado el uso excesivo de
agroquímicos, los cuales han provocado resistencia por parte del patógeno hacia
los mismo, tal es el caso de la resistencia presentada hacia el fungicida Benomil
que se reportó en Costa Rica en 1983 (Romero, y Marín, 1990). También han
modificado el medio ambiente de forma negativa, sin mencionar, que han sido
vinculados con efectos teratogénicos y/o mutagénicos de animales, lo cual podría
2
causar malformaciones congénitas y cáncer en los bananeros o vecinos de las
fincas (Romero, y Marín, 1990).
Como una alternativa de manejo en banano está el uso de
sustancias orgánicas las cuales permitan el control de la sigatoka negra y así se
evite la contaminación en el ecosistema. El uso de microorganismos eficaces (EM)
fue probado como trabajos de graduaciones y han presentados resultados
aceptables en el control del patógeno M. fijiensis ( Moino, H. 1998).
Este proyecto de investigación, pretende formular una alternativa de manejo
de la enfermedad basado en la aplicación de microorganismos eficaces los cuales
actuarán de forma directa, atacando al agente causal de la enfermedad y de forma
indirecta, fortaleciendo a la planta para que ésta presente una resistencia a la
enfermedad. Esto porque el banano y el plátano son unos de los cultivos más
importantes en el trópico, constituyen una fuente muy grande de alimento para el
mundo. Las áreas destinadas para el banano son de alrededor de 10 millones de
hectáreas cuya producción fluctúa entre los 88 millones de toneladas métricas al
año (Picq, et al, 2000). Solo el 13 % del banano y plátano producido se exporta, lo
cual no disminuye la importancia económica que esta cifra representa para los
países productores. El 83 % de la exportación es de América Latina, 11% de Asia
y 3% de África central y del este, lo que indica que es un fuerte rubro en sus
economías. Alrededor de 200 millones de personas tienen asegurado la
alimentación y el sustento económico a causa de la producción bananera. La
importancia nutricional radica en que el banano y plátano son fácilmente digerido
3
por infantes, convirtiéndose así en el primer alimento sólido ingerido por estos. La
composición nutricional de esta fruta se basa en un alto contenido de
carbohidratos y por lo contrario, bajo contenido de grasas, haciéndolo especial
para dietas con bajo contenido de grasas. (Picq, et al, 2000).
Una de las alternativas en el mercado bananero es el mercadeo que según
ANAO (1994) citado por Herrera (1995) el 5% de los consumidores están
dispuestos a consumir productos orgánicos, pero estudios de demanda en el
mercado americano han demostrado una tendencia de aumento hacia el consumo
de estos productos. En un estudio realizado por Green Seal (Ahmad, 1993:11
citado por Herrera (1995), se determinó que cuatro de cada cinco personas,
estarían dispuestos a pagar más por productos certificados (entre ellos
certificaciones orgánicas). En otro estudio de la Green Shopping Revolution, 1990
(Ahmad, 1993 citado por Herrera, 1995), reveló que el 59% de los entrevistados
estaría dispuesto a comprar en un supermercado orgánico, de estos el 12% se
manifestó estar dispuestos y el 45% es probable.
4
2. OBJETIVOS
EL objetivo general, fue el evaluar el efecto de EM 1, desechos líquidos
fermentados de la planta de papel de pinzote de banano en la Universidad
EARTH, y por ultimo el EM 5 en el manejo de la sigatoka negra en banano bajo
un sistema agroforestal.
En el estudio preliminar sobre fijadores naturales en la aplicación de los
tratamientos el objetivo fue determinar cual es el más viable avaluando sus
consecuencias fisiológicas y fitotóxicas. Además se estudió el comportamiento de
la sigatoka negra durante la etapa de vida del banano luego de las aplicaciones de
los tratamientos
5
3. REVISIÓN DE LITERATURA
3.1.1. La Importancia del Banano y el Impacto de la Sigatoka Negra.
El banano ocupa el segundo lugar en producción entre las frutas al nivel
mundial. Durante el siglo anterior, el banano, sufrió un desarrollo desmesurado
que solo ha sido interrumpido durante las dos guerras y la crisis económica de los
años treintas. Desde 1900 hasta 1990, el mercado del banano se ha expandido
dieciocho veces pasando de 2.3 millones de TM a 9 millones de TM (Soto, 1997).
En Costa Rica, la actividad bananera genera anualmente alrededor de $600
millones de divisas, da empleo a más de 150.000 personas y paga impuestos de $
40 millones anuales (Soto, 1997). Otros países como Ecuador, Honduras,
Colombia, Panamá y Filipinas tiene el banano como uno de los importantes
generadores de divisas y se esta amenazado por la enfermedad devastadora que
es la Sigatoka Negra (Mycosphaerella fijiensis).
Según Rhodes (1964) citado por Gauhl (1992) la sigatoka negra fue
descubierta en Fiji durante 1963 como “black leaf streak” como también en el
distrito de Sigatoka. Una década después de su descubrimiento, se detectó en
Honduras una enfermedad más virulenta, cuyo patógeno presentaba
características tanto de M. musicola como de M. fijiensis y fue descrita como M.
fijiensis MORELET var. difformi. (Mulder y Stover 1976 citado por Gauhl 1992).
La enfermedad se diseminó rápidamente por los países vecinos y llegó a
Costa Rica durante 1979 y en 1982 atacó los cultivos de plátano y banano en las
tierras bajas del Atlántico (Araya 1882 citado por Gauhl 1992)
La sigatoka negra en Costa Rica, no solo representa el mayor problema
fitopatológico, sino que tiene una incidencia directa en la economía del sector
bananero. Según CORBANA (1993) citado por González (1995), el impacto
económico causado por la enfermedad en Costa Rica entre los años 1983 y 1993,
6
aumentó en un 41% y por ende el costo de protección en un 156%, es decir que
se invierte $46 millones anualmente en el control de la enfermedad. Según Stover
(1986) citad por Gauhl (1992), en Centroamérica, el costo que se invierte en el
control de la enfermedad, representa un 27% del costo de producción de la fruta, y
en el caso del cultivo del plátano, las perdidas se estiman entre el 50 y 100%.
3.1.2. Taxonomía, Biología y Sintomatología
El agente causante de la enfermedad conocida como Sigatoka Negra,
pertenece a la clases Ascomycetes, sub clase Loculoascomycetidae, orden
Donthideales, familia Dophideaceae, género Mycosphaerella, especie fijiensis
(Alexopoulus y Mims, 1979 citado por González, 1995). El hongo se reproduce en
forma sexual y asexual durante su ciclo de vida. La fase asexual se presenta en el
desarrollo de las primeras lesiones, en donde se observa un numero bajo de
conidióforos que salen de los estomas principalmente en el envés de la hoja.
La fase sexual, siendo esta la más importante en el desarrollo de la
enfermedad porque se producen un gran número de ascósporas en estructuras
llamadas seudotecios o peritecios. Las ascósporas de la sigatoka son diseminada
por el viento, estas al caer en la superficie de las hojas, en la hoja candela y dos
hojas más jóvenes principalmente, requieren de una temperatura y humedad
adecuada para su germinación. Al germinar las esporas, estas emiten un tubo
germinativo que penetra por los estomas de la hoja, luego coloniza las células
vecinas y producir el síntoma característico de pizca, mancha y necrosis (Marín y
Romero, 1992)
Los síntomas de la enfermedad se desarrolla en seis etapas que se
describirán a continuación (Meredith y Lawrence, 1969, citado por Gonzáles,
1995)
7
Estado de mancha inicial: pequeñas manchas de color pardo rojizo,
sobre la superficie abaxial de aproximadamente 0.25 mm de longitud, que se
encuentran con mayor intensidad en el margen izquierdo de este sector de la hoja.
Primer estado de estría: Las manchas se extienden lateralmente y se
fusionan, formando estrías paralelas a las venas secundarias de la hoja. En este
estado se facilita la visibilidad de las estrías en la superficie abaxial.
Segundo estado de estría: las estrías se alargan ligeramente y presenta
un cambio de color, de pardo rojizo a pardo oscuro o casi negro.
Primer estado de mancha: en este estado las estrías se extienden aun
más lateralmente formando manchas fusiformes o elípticas de color pardo oscuro
y están rodeadas por un halo claro, pardo y acuoso.
Segundo estado de mancha: el centro de la lesión se hunde y mantiene el
color oscuro. Algunas veces aparece un ligero amarillamiento alrededor de la
misma.
Estado de mancha madura: el centro de lesión es necrosa y presenta una
coloración grisácea y aumenta el hundimiento. La mancha es circundada por un
halo angosto de color pardo oscuro o negro y de forma bien definido. Al aumentar
el número de lesiones, se observa la paulatina coalescencia de esta sobre la hoja.
Esto sucede después de las 3 o 4 semana que empiezan los síntomas.
El cultivo del banano requiere de una constante revisión del estado sanitario
de la plantación. Se ha considerado que la metodología de Stover modificado por
Gauhl (1989) es la más adecuada para este fin.
La evaluación de la incidencia y severidad de la enfermedad por medio de
esta metodología, permite información detallada de la situación sanitaria (Marín y
Romero, 1992).
8
El método consiste de una estimación visual de las hojas que están
afectadas, que están próximas a la floración, sin que estas sean bajadas. Para
esta evaluación, se toma en cuenta todas las hojas presentes, excepto la hoja
candela y las agobiadas.. La hoja N°1 es la más cercana a la hoja candela, el
conteo se facilita por la disposición en espiral de las hojas. En la estimación del
área foliar afectada se debe tomar en cuenta todos los síntomas de la
enfermedad en cada hoja y calcular el porcentaje de la hoja cubierta por los
síntomas. Para lograr este objetivo, es necesario contar con un patrón o modelo
que divide la hoja en porciones porcentuales (Figura 1).
Figura 1. Escala de Stover modificada por Gauhl (1989) citado por (Marín y Romero, 1992)
9
3.2. EL AGROECOSISTEMA BANANERO Y LAS ENFERMEDADES
La agricultura bananera simplifica la biodiversidad para alcanzar la forma
extrema del monocultivo, agregando al agroecosistema una dependencia directa
con el humano. En la modernización agrícola, los principios agro ecológicos son
desestimados, creando así una inestabilidad en los agro ecosistemas, conllevando
a problemas de plagas, salinización y erosión del suelo, etc. (Altieri, 1992). La
expansión de plagas en los cultivos está en relación directa con la extensión de
sistemas de monocultivos a expensas de la biodiversidad que a menudo provee
un servicio ecológico de auto-regulación de las fuerzas biológicas..
El grado de biodiversidad en los agro ecosistemas depende de la diversidad
de la vegetación dentro y fuera del agro ecosistemas, la permanencia de los
cultivos en el ecosistema, la intensidad del manejo y el grado de aislamiento del
agroecosistema de la vegetación natural.
Por lo tanto un agroecosistema que sea más diverso, más permanente,
aislados y manejados con bajos insumos, presentará una mayor biodiversidad.
Hay que indicar que los agro ecosistemas son dinámicos, es decir, están sujeto a
cambios que dependen de factores biológicos, culturales, socioeconómico y
ambientales, que influyen positiva o negativamente a la incidencia de plagas.
3.3. LA IMPORTANCIA DE LA BIODIVERSIDAD EN LA AGRICULTURA
En la agricultura la biodiversidad está limitada a un pequeño número de
plantas y animales domésticos (Altieri, 1992). El mundo presenta solamente 12
especies de cultivos de grano, 23 especies de cultivos hortícolas y cerca de 35
especies de árboles productores de frutas y nueces. Comparando la biodiversidad
que se presenta en 1440 millones de hectáreas de suelo agrícola contra una
hectárea de un bosque tropical que hay 100 especies, se podría entender el efecto
de la agricultura con la biodiversidad.
10
Otro efecto de la agricultura en la biodiversidad, es la dependencia del
agroecosistema al humano, por ejemplo, la acción de los insectos depredadores y
parásitos, son remplazados por pesticidas, la preparación de camas y siembra de
semilla, reemplaza la diseminación natural, hasta la descomposición de la materia
orgánica es remplazada por la cosecha de los frutos (Altieri. 1992).
También afecta la agricultura a la biodiversidad a través de factores
externos como es el uso de agroquímicos, que si bien es cierto, aumentan la
producción pero cada vez van minando la sustentabilidad de la agricultura (Altieri ,
1992). En EEUU los costos ambientales y sociales se estima en $850 millones
anuales y cerca del 27% de los suelos agrícolas presentan problemas de
salinidad.
La consecuencia más evidente que se presenta en la disminución de la
biodiversidad es la incidencia de plagas. Al existir los monocultivos, se rompe el
equilibrio en el ecosistema es decir no existe biodiversidad vegetal que sustente
los microorganismos antagónicos a las plagas (Altieri, 1992). El hombre al
modificar comunidades de plantas para satisfacer las necesidades alimenticias de
ellos, exponen estas a daños intensos de plagas y enfermedades que
generalmente se agrava al realizar más modificaciones (Altieri, 1992).
La biodiversidad se refiere a todos los seres vivos que interactúan dentro de
un ecosistema, siendo la agricultura la actividad humana que ocupa del 25 al 30%
de los suelos del mundo, es indispensable estudiarla ya que la afecta
directamente.
3.4. MICROORGANISMOS EFICACES (EM)
Los microorganismos eficaces (EM) son una mezcla de culturas benéficas
(bacterias ácido lácticas, levaduras, actinomicetos y hongos de la fermentación),
que pueden inocular el suelo y plantas, aumentando la diversidad microbiana del
ambiente ejerciendo así, efectos positivos en los sistemas de producción.
11
Este concepto ha sido un argumento de discordia entre los científicos de la
agricultura. Sin embargo, la tecnología detrás del concepto de microorganismos
eficaces ha sido puesta en práctica por el profesor Teruo Higa en la universidad
del Ryukyus en Okinawa, Japón (APNAN, 1995).
El profesor Higa ha encontrado los microorganismos que pueden coexistir
en culturas mezcladas y son fisiológicamente compatibles entre ellas.
Cuando estas son introducidas en el ambiente natural, sus efectos benéficos
individuales aumentan significativamente en una manera sinérgica (APNAN,
1995).
Dentro de los efectos positivos que se le atribuye al EM, esta la promoción
de la germinación, floración, formación del fruto y crecimiento de las plantas.
También mejora las interacciones químicas y biológicas del suelo, como también
disminuye la incidencia de patógenos en este. Además aumenta la capacidad
fotosintética de las plantas y la disponibilidad de nutrientes de la materia orgánica
en el suelo se incrementa (APNAN, 1995).
El EM funciona como una medida de control biológica de patógenos que es
dada con la introducción de estos microorganismos benéficos al ambiente de la
planta. Los parásitos y patógenos son destruidos o controlados con procesos
naturales, como la competitividad y antagonismo (APNAN, 1995).
3.4.1.1. Bacterias Fotosintéticas
Estas bacterias ayudan a sintetizar sustancias útiles para las raíces,
materia orgánica o gases dañinos, usando la luz del sol o el calor del suelo como
fuentes de energía; entre estas sustancias se encuentran aminoácidos, ácidos
nucleicos, sustancias bioactivas y azúcares, que promueven el crecimiento y el
desarrollo celular (Sangakkara, 1999) Como también intervienen en el desarrollo
12
de otros microorganismos benéficos, tal es el caso de las mycorrhizas que actúan
directamente en la disponibilidad del fósforo en el suelo (APNAN, 1995).
3.4.1.2. Bacterias Lácticas
Estas bacterias producen ácido láctico de los azúcares, y otros
carbohidratos producidos por las bacterias fotosintéticas y la levadura. Siendo el
ácido láctico un fuerte esterilizador, inhiben la acción de microorganismos dañinos
(Fusarium, nemátodos, etc.), además de promover la descomposición de la
materia orgánica. También promueven la fermentación y descomposición de
material como la lignina y la celulosa (Sangakkara, 1999).
3.4.1.3. Levaduras
Las levaduras sintetizan sustancias antimicrobiales, entre otras benéficas,
para el crecimiento de las plantas, a partir de aminoácidos y azúcares secretados
por bacterias fotosintéticas, materia orgánica y raíces de las plantas. Las
sustancias bioactivas como las hormonas y las enzimas producidas por las
levaduras promueven la división activa de células y raíces; estas secreciones
también son sustratos útiles para microorganismos eficaces como las bacterias
lácticas y actinomicetos (Sangakkara, 1999).
13
3.5. MANEJO DE LA SIGATOKA NEGRA CON MICROORGANISMOS EFICACES (EM)
Existen estudios preliminares que se han realizado en el control de la
sigatoka negra, donde se demuestra que el uso de EM en el control de esta
enfermedad ha dado resultados positivos. La universidad EARTH, ha lanzado
varios estudios del uso de EM realizados por estudiantes y profesores, tal es el
caso de proyecto de graduación de Moino (1998) en donde se explica que existió
control por parte del EM a la sigatoka.
Según Vega (1996) el tratamiento con EM – 1 presentó supresión de la
enfermedad, además, este actuó como bioestimulante en el desarrollo de las
hojas.
14
4. MATERIALES Y MÉTODOS
4.1. LOCALIZACIÓN DEL EXPERIMENTO
El sitio donde se desarrolló el proyecto, se encuentra en la Universidad
EARTH, en un área destinada para banano orgánico de finca comercial, ubicada
en las inmediaciones de la finca integrada orgánica. La precipitación promedio de
la región es de 3200 mm y una temperatura que oscilan entre los 30.5°C y los
22°C . Se encuentra a una altura de 50 msnm en una latitud entre 10 ° 11´ norte y
10° 15´ norte y con una longitud entre 83° 40´ oeste y 83° 55´.
4.2. MATERIAL EXPERIMENTAL
Se utilizaron plantas del subgrupo Cavendish, clon Williams. Este banano
está cultivado bajo el sistema agroforestal sembrado a una distancia de 1.5 entre
hileras y 1 entre filas. El número de plantas que se usaron para el experimento fue
de 300; se inició con plantas de aproximadamente 3 meses de edad, y se le dio
seguimiento durante 22 semanas. Hay que mencionar que se usaron 18 plantas
aparte de las parcelas para realizar los dos ensayos preliminares.
4.3. TRATAMIENTOS
Para realizar este proyecto, se requiere de dos ensayos preliminares, en los
cuales se busca encontrar un fijador adecuado y la concentración de los lixiviados
15
de la planta de papel de pinzote de banano. El primer ensayo consta tratamientos
de aceite vegetal, látex de banano y clara de huevo en concentraciones altas y
bajas (ver anexo 1), como se muestra en el anexo 2, los tratamientos del segundo
ensayo solo se manejan con diferentes concentraciones del desecho líquido.
4.3.1. Experimento
Este proyecto de investigación constó de 4 tratamientos los cuales están
descritos a continuación:
Código Tratamiento Dosis
Tratamiento 1: Control o testigo sin aplicación
Tratamiento 2: * EM activado 1%
Tratamiento 3: * Desechos líquidos fermentados
de la planta de papel 10%
Tratamiento 4: * EM 5 1%
• La aplicación de los tratamientos 2,3 y 4 se mezcló con aceite vegetal para mejorar
adherencia
4.4. PREPARACIÓN DE TRATAMIENTOS
Para la preparación de los tratamientos en los diferentes ensayos
preliminares, se usaron materiales como aceite vegetal tipo comestible (aceite de
cocina), clara de huevo y látex de banano.
Para la obtención de látex de banano, se seleccionó chiras de banano de
un tamaño considerado, a las cuales se lesionó la parte inferior, provocando así un
flujo de látex el cual fue recolectado.
16
Por otro lado, los materiales usados en el experimento mismo, requirieron
alguno de ellos una previa preparación, esta consiste en la siguiente:
EM – 1:
El EM – 1 tiene que ser activado, y para esto requiere de melaza,
agua y un ambiente anaerobio. Se mezclan el EM, la melaza y agua en las
concentraciones de 1:1:18 (v/v) respectivamente, luego se lo mantiene en un
recipiente cerrado durante unos 8 a 10 días en donde ocurre una fermentación y
por ende la activación del mismo.
EM – 5:
Este al igual que el EM – 1 necesita ser activado. En este caso se toma el
EM concentrado más la melaza, alcohol natural (30° – 40° GL), vinagre y agua, en
las concentraciones de 10 % los tres primeros y 60% el agua, de igual forma se
deja fermentar por un periodo de 8 a 10 días.
Desechos líquidos fermentados con EM – 1:
Este líquido se extrae de la planta de papel de pinzote de banano, luego de
que la manufactura del papel haya terminado. Esta agua se encuentran en unas
pilas durante el proceso de hacer papel en donde se le agrega EM – 1 al 1%. Con
este tratamiento se pretende evitar la putrefacción del agua (desecho líquido), que
es un agente contaminante del medio ambiente que afectaría en el cause del río.
Una vez recolectado este líquido, se le agregó EM – 1 al 3 %, para mejorar la
fermentación y prolongar así el tiempo de almacenamiento.
17
4.5. APLICACIÓN DE TRATAMIENTOS
La aplicación de los tratamientos se los realizó de tres diferentes formas,
una de estas se usó solo en los ensayos preliminares del proyecto, para esta se
utilizó un atomizador el cual permitió una mejor cobertura de los productos en la
planta. Las otras dos formas se los usó de acuerdo a la altura de las plantas en
estudio, la primera fue con bomba manual y la segunda con bomba a motor. Hay
que indicar que para la aplicación con bomba a motor se tomó la precaución de
dirigir la misma de afuera hacia a dentro evitando así que los tratamientos se
mezclen.
4.6. DISEÑO EXPERIMENTAL
En los ensayos preliminares, se tomaron tres plantas al azar para cada
tratamiento a las cuales se les realizaron solo una aplicación. En el experimento
se distribuyeron los tratamientos en bloques completamente al azar con tres
repeticiones. A las parcelas que constaban de 25 plantas se las dividió dejando
una hilera de separación entre bloques y entre parcelas para evitar el efecto de
borde. Dentro de la parcela se escogieron seis plantas al azar y que sean
representativas del área, para la toma de datos. Las aplicaciones se las realizó
quincenalmente como también las evaluaciones, durante 22 semanas.
4.7. VARIABLES EVALUADAS Y ANÁLISIS ESTADÍSTICO
En los ensayos preliminares las variables fueron, daño fisiológico (quema)
o fitotoxicidad que puede causar la aplicación de estos fijadores, como también las
concentraciones del desecho líquido de la planta de papel.
Con respecto al experimento, las variables estudiadas fueron el número de
hoja por planta, la hoja más joven infectada y la severidad con el método de
18
Stover modificado por Gauhl, que se la representará mediante el promedio
ponderado de infección (PPI) (Marín y Romero, 1992).
Para el análisis estadístico, de acuerdo a las variables evaluadas, se
realizará un análisis de varianza (ANOVA) en el tiempo de lectura y comparación
de los promedios a través de la prueba Duncan.
4.8. MANEJO AGRONÓMICO
Al estar situadas las parcelas dentro de una plantación orgánica comercial,
estas recibieron el mismo manejo agronómico que el resto de la plantación, con la
excepción de que el control de sigatoka negra no la hacen en las parcelas. La
fertilización se la realiza con abono orgánico tipo bokashi ayudando no solamente
a la nutrición de las plantas, sino al control de nemátodos aumentando la
biodiversidad del suelo. El control de malezas se la hace manualmente, evitando
la aplicación de herbicidas.
19
5. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
5.1. ENSAYOS PRELIMINARES
5.1.1. Selección del Fijador
En el ensayo preliminar para determinar un fijador natural que permita una
mejor adherencia de los tratamientos, se analizaron los parámetros de
fitotoxicidad, daños fisiológicos y facilidad de manejo.
Como se observa en el Cuadro 1 de resultados, sólo los tratamientos que
contenían látex de banano causaron daños fisiológicos a las plantas, es decir
presentaban hojas quemadas. Con respecto al parámetro de fitotoxicidad, éste no
se presentó en ninguno de los diferentes tratamientos. La mayor facilidad en el
manejo, lo presentaron los tratamientos con aceite, esto se debe a la alta
disponibilidad que éste tiene, además permite un mejor almacenamiento, hay que
mencionar que el aceite presenta un inconveniente y es la incapacidad de
disolverse en el agua. Para resolver este problema se empleo un método físico de
emulsificación (agitación).
Después de analizar los resultados, se decidió utilizar la concentración más
alta de aceite (1%) para asegurar la fijación.
Cuadro 1. Observación cualitativa en el campo para la selección de fijador
Código Tratamiento Daño fisiológico
Fitotoxicidad Fácil manejo
T1 Control No No - T2 Aceite vegetal con
Alta concentración No No Si
T3 Aceite vegetal con Baja concentración No No Si
T4 Látex de banano (alta) Si No No
T5 Látex de banano (baja) Si No No
T6 Clara de huevo No No No
20
5.1.2. Determinación de la concentración de desecho líquido para la aplicación
El segundo ensayo permitió determinar la concentración adecuada de los
desechos líquidos de la planta de papel. En este ensayo, al igual que el anterior,
se evaluaron los mismos parámetros (daños fisiológicos y fitotoxicidad). Las dos
concentraciones no presentaron daño alguno, entonces se decidió utilizar la
concentración más baja (10%) debido a la poca disponibilidad de este líquido en el
momento de hacer el proyecto de investigación.
5.2. FASE EXPERIMENTAL
Al término de la fase experimental, se obtuvieron resultados de promedio
ponderado de la infección (PPI), hoja más joven enferma (HMJE) y total de hojas
Los tratamientos presentan un comportamiento similar en el tiempo con
respecto al promedio ponderado de infección (PPI), como se muestra en la figura
2.
Como se puede observar en la Figura 2, la mayor incidencia de la
enfermedad está en correlación con las épocas de lluvias, por el contrario, la
incidencia disminuye cuando baja la precipitación. Esta relación se da porque en
condiciones de humedad relativa alta y temperaturas adecuadas, el hongo se
desarrolla con más fuerza. La germinación y el crecimiento de esporas en la
superficie foliar es óptimo cuando una película de agua está presente en esta
(Meredith, 1970 citado por Stover y Simmonds, 1987).
Después de la cuarta quincena, el testigo presenta una tendencia de mayor
PPI que los otros tratamientos. Al término del experimento, en la quincena 11, ya
se puede observar una clara diferencia entre el testigo y los demás tratamientos.
21
Figura 2. Comparación de los promedios ponderados de infección entre tratamientos a través del tiempo
Utilizando los datos obtenidos durante el experimento, se estimó el
promedio ponderado de infección durante la evaluación. Como se muestra en la
figura 3, el testigo presenta un mayor PPI que registra 1.49. Los tratamientos EM
1, desechos líquidos y EM – 5, mostraron valores menores de PPI con 1.34, 1.4 y
1.38 respectivamente. Estos resultados muestran que existe una supresión de la
enfermedad por parte de los tratamientos. Una de las razones que permitió la
supresión de la enfermedad es la producción de sustancias bioactivas, tal es el
caso de los actinomicetos que producen sustancias antimicrobiales a partir de los
aminoácidos provenientes de las bacterias fotosintéticas, estas sustancias
suprimen la acción de hongos y bacterias patógenas (APNAN, 1995). Otro modo
de acción del inóculo (EM), es la presión que ejerce las grandes poblaciones de
0.50
0.700.90
1.101.30
1.501.70
1.90
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11
Quincena
PPI
0
50
100
150
200
250
Prec
ipita
ción
(mm
)
testigo EM - 1 D. líquido EM - 5 precipitación
22
este contra la del patógeno, entrando así a una competencia por espacio y
alimento.
La severidad de infección en las diferentes etapas del cultivo, puede
reflejarse de diferente forma. La planta de banano, antes de que ocurra la
floración, sigue produciendo hojas (Soto, 1997), por lo tanto si la sigatoka negra
ataca la planta en esta etapa, no será mayor problema si es que es controlada.
Según Gonzáles (1987), si la severidad de infección provoca pérdidas de área
foliar, el crecimiento, la producción y la calidad de la fruta tienen efectos severos.
Después de la floración, la planta de banano no produce más hojas, perdiendo así
capacidad de recuperación. Estudio llevados en honduras, revelaron que 20 días
después de la floración, son necesarias 8 hojas y de 60 a 80 días después, son
necesaria 4 hojas para evitar pérdidas de calidad ( Gonzáles, 1987).
Figura 3. Comparación de los promedios ponderados de infección (PPI) entre los tratamientos
1.49
1.34
1.40 1.38
1.25
1.30
1.35
1.40
1.45
1.50
PPI
testigo EM 1 D. Líquido EM 5
Tratamiento
23
Como se observa en el análisis estadístico de Duncan (ver anexo 3), se
forman dos grupos, siendo el grupo A el que presenta mayor severidad, en este
grupo solo se encuentra el testigo. Estos resultados muestran diferencias
significativas entre los tratamientos con respecto al testigo y por el contrario no
existe diferencia significativa entre los tratamientos 2, 3, y 4. Es decir que estos
últimos tratamientos presentan igual control estadísticamente, sin embargo, dentro
de estos, el tratamiento 2 muestra una ligera diferencia que lo hace ser el mejor
tratamiento. Esto significa que las plantas que presentaron menor severidad,
requieren de menos labores de cirugía foliar y además los costos que
corresponden a las aplicaciones, serán cubierto por una mejor calidad de banano.
El segundo parámetro evaluado que ayuda a estimar el grado de
enfermedad de las plantas fue la estimación del promedio de la hoja más joven
enferma (HMJE). Este parámetro permite comparar la agresión de la enfermedad
en la planta, determinando la hoja en donde existen indicios del patógeno.
Al igual que en los demás parámetros analizados, el promedio de HMJE se
comporta de forma similar en los diferentes tratamientos durante el tiempo de
evaluación. También la tendencia de las curvas está en función de la curva de
precipitación (figura 4).
A partir de la cuarta quincena, el testigo tiende a ser más afectada por la
sigatoka negra ya que las hojas más jóvenes se ven más atacadas, desde la
quincena 8, esta brecha cada vez se hace mayor con respecto a los demás
tratamientos (figura 4).
Se puede decir que el número de aplicaciones en el tratamiento EM – 1,
pueden ser ajustadas a un menor tiempo y por ende representar menor costos de
producción.
24
Figura 4. Promedio de la hoja más joven enferma durante el periodo del experimento.
La figura 5 muestra un panorama más general del efecto de los
tratamientos. En esta se observa que el testigo es afectado por la sigatoka negra
desde muy temprano, registra índice de enfermedad en la hoja 3.59, esto
representa un fuerte ataque del patógeno hacia la planta. Los tratamientos
desecho líquido y EM – 5, presentaron los síntomas a partir de las hojas 3.83 y
3.77 respectivamente. El tratamiento EM – 1 comienza a ser afectado desde la
hoja 4.14, siendo este el más alto de los promedios de HMJE.
2.00
2.50
3.00
3.50
4.00
4.50
5.00
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11
Quincena
hoja
N°
0
50
100
150
200
250
prec
ipitac
ión (m
m)
testigo EM 1 D. Líquido EM 5 precipitación
25
Figura 5. Comparación de los promedios de la hoja más joven enferma (HMJE) entre los tratamientos.
Los resultados estadísticos Duncan expresan tres grupos entre los
tratamientos (ver anexo 4), el grupo A representa la menor incidencia de la
enfermedad. El tratamiento EM – 1 pertenece a este, en el grupo intermedio se
encuentran los tratamientos desechos líquidos y EM – 5, denotando así una
diferencia estadística con el tratamiento EM – 1. Por último está el testigo que
también presenta diferencia estadística comparado con los demás tratamientos.
Como se analizó anteriormente, el tratamiento EM – 1, es el que presenta
síntomas de la enfermedad en hojas más maduras. Esto se debe a que este
tratamiento presenta una mayor concentración de microorganismos eficaces que
los demás tratamientos.
Según Stover, citado por Fernández (1988), las esporas germinan a las dos
horas de estar sobre el envés de la hoja, siempre y cuando las condiciones de
humedad y temperatura sean las adecuadas. A las 48 y 78 horas, el tuvo
germinativo penetra la hoja por los estomas provocando el desarrollo de las
3.59
4.14
3.833.77
3.20
3.40
3.60
3.80
4.00
4.20ho
ja #
testigo EM 1 D. Líquido EM 5
Tratamiento
26
lesiones de la enfermedad. Entonces la acción de los microorganismos eficaces se
dio antes de que germinara las esporas del patógeno y/o produjera la penetración
del tubo germinativo, es decir existió una fuerte competencia o presión del inóculo,
como también las sustancias antimicrobiales producidas por estos
microorganismos, fueron las barreras para la enfermedad. El uso del fijador,
permitió que los microorganismos estén presentes durante mayor tiempo y así
prolongar su acción. Hay que mencionar que el EM permite un mejor desarrollo de
las plantas, fortaleciendo así a estas para aguantar el ataque del patógeno (Wood
et al, sf).
El último parámetro de evaluación fue el total de hojas por planta, siendo
este factor de vital importancia en los cultivos, ya que la producción está en
función directa al número de hojas, debido a que este órgano de la planta está
fuertemente ligada a la actividad fotosintética de la misma (producción de
carbohidratos).
El comportamiento en el tiempo de los diferentes tratamientos con respecto
a este parámetro fue muy similar entre ellos. Como se observa en la figura 6, el
menor promedio de hojas en todos los tratamientos se da en la quincena 7, si se
observa la curva de precipitación, existe el pico más alto de esta unas semanas
antes de la quincena 7, es decir que el ambiente posee una alta humedad relativa
después de que las lluvias cesaran, creando así un clima adecuado para el
desarrollo de la enfermedad.
27
Figura 6. Observación de número de hojas por tratamiento durante el periodo del experimento.
De los tratamientos usados, el tratamiento EM – 1 con un promedio de 7.89,
presentó un mayor número de hojas, por debajo estuvo el tratamiento d. líquidos
con 7.64 hojas, después el testigo con 7.36 y por último el tratamiento 4EM – 5
con 7.26 hojas. Las diferencias que existen entre los tratamientos con respecto al
testigo son de 0.53 para el EM – 1, 0.28 para el d. líquidos y de –0.10 para el EM -
5. Estos resultados muestran un control por parte de los tratamientos EM – 1 y d.
líquidos y por el contrario el último tratamiento está por debajo. Para confirmar
esto resultados se realizó un análisis estadístico que a continuación se explicará
con detalle.
3.00
4.00
5.00
6.00
7.00
8.00
9.00
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11
Quincena
N° h
ojas
0
50
100
150
200
250
prec
ipita
ción
(mm
)
testigo EM 1 D. Líquido EM 5 precipitación
28
Figura 7. Comparación del promedio de hojas en los diferentes tratamientos.
En el anexo 5 se muestra los resultados del análisis estadístico Duncan en
donde se agrupan los tratamientos en tres grupos, siendo el A el mejor (más hojas
por planta) en este grupo se encuentra el tratamiento EM - 1. El grupo intermedio
esta conformado por el tratamiento d. líquido y el último grupo, el C consta de los
tratamientos testigo y EM - 5, determinando así que no existe diferencia
estadística entre estos tratamientos. El testigo, si presenta una diferencia
significativa con respecto a los tratamientos EM – 1 y d. Líquido. Entre estos dos
últimos tratamientos también hay diferencia estadística.
Según Stover y Simmonds (1987), el área foliar de la planta de banano,
presenta una correlación con el número de manos, preveendo así una mayor
producción para el tratamiento EM 1 que al tener mayor número de hojas,
presenta mayor área foliar y por ende mayor número de manos. La calidad del
banano será mejo como ya se lo explicó anteriormente (Gonzáles, 1987).
Haciendo una retroalimentación de los resultados que hasta el momento se
han discutido, se tiene que los tres tratamientos controlan la enfermedad, pero su
7.36
7.897.64
7.26
6.80
7.00
7.20
7.40
7.60
7.80
8.00
hoja
s
testigo EM 1 D. Líquido EM 5
Tratamiento
29
efecto en el total de hojas solo se ve reflejado en los tratamientos EM - 1 y D.
líquidos, esto quiere decir que estos tratamientos a parte controlar la enfermedad,
estimulan el desarrollo de las hojas, representando esto un beneficio directo en la
producción de banano. En el caso del tratamiento EM - 5 solo se limita al control
de la enfermedad y no a la estimulación del desarrollo de hojas. La estimulación
se debe a que los organismos del EM producen sustancias bioactivas, fijan
nitrógeno, producen sustancias estimuladoras de crecimiento ( Higa, 1994 citado
por Wood et al, sf). Debido a los procesos bioquímicos que se produce en el EM
se crea una recuperación de los desechos que pueden ser usados en la
agricultura (Wood et al, sf). En el anexo 6 y 7, se muestra la composición química
de los desechos líquidos de la planta de papel y del EM respectivamente.
Siendo que el desecho líquido de la planta de papel de pinzote es un
recurso sin costo, resulta ser una buena alternativa en e l control de la sigatoka
negra y una respuesta al manejo de desechos de la planta de papel.
30
6. CONCLUSIONES
De los productos usados como fijador en el ensayo preliminar, el aceite fue
el que mostró características deseables tanto en el manejo como en los efectos
secundarios del mismo. Su capacidad de adherencia se vio limitada por la
emulsificación previa que se debió realizar una ves mezclado con los tratamientos
del experimento.
Las dos concentraciones de desechos líquidos de la planta de papel, no
causan a la planta ningún daño fisiológico o fitotóxico. Se decidió por la menor
concentración por su disposición en el momento del estudio. Este desecho líquido
requiere de una previa inoculación con EM para su uso.
En conclusión, los tres tratamientos presentaron control de la enfermedad.,
sin embargo el tratamiento EM – 1 fue el que mejores resultados obtuvo, hay que
mencionar que en el análisis de severidad no hubo diferencia estadística con
respecto a los tratamientos D. Líquidos y EM – 5. Estos dos últimos tratamientos,
no presentan diferencia entre si y se encuentran en un nivel intermedio de control.
También se puede concluir que los tratamientos con EM – 1 y desechos líquidos
fermentados, presentaron un mayor número de hojas y el tratamiento con EM – 5
no, siendo este un indicativo que los dos primeros tratamientos tienen un efecto de
estimulación en el desarrollo de las plantas.
El comportamiento de la sigatoka negra después de ser aplicado los
diferentes tratamientos, es similar al testigo su tendencia, pero con menor
severidad, mayor número de hojas y promedio de HMJE más alto. El
comportamiento dela enfermedad responde a la curva de la precipitación.
31
7. RECOMENDACIONES
Al determinar el aceite como fijador, existieron problemas al momento de
ser diluido. Se recomienda encontrar algún tipo de emulsificante natural para que
las aplicaciones sean homogéneas.
Es recomendable dar un seguimiento al experimento hasta la fase parición,
ya que por estar en un sistema agroforestal, el crecimiento de la planta fue más
lento y hubo tiempo para terminar las con las etapas de vida del cultivo. Además
sería conveniente hacer algún tipo de lectura de la intensidad luminosa por
parcela, para evitar posibles fuentes de error en los análisis de resultados.
Como tratamientos de control de sigatoca, el EM sería una buena
alternativa en plantaciones comerciales que están en condiciones climáticas poco
favorables para la proliferación de la enfermedad. Para las zonas secas, sería una
buena opción.
Para finalizar, es recomendable acortar el tiempo a los periodos de
aplicación de los tratamientos permitiendo así una mejor cobertura del cultivo en el
tiempo.
32
8. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
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Agroecología y Desarrollo (Chile) 4:2-11.
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extractos de piña y pinzote de bananos fermentados con EM provenientes
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9. ANEXOS
35
Anexo 1. Ensayo preliminar 1: concentración de fijador
Código Tratamiento Dosis
Tratamiento 1 Control sin aplicación
Tratamiento 2 Aceite vegetal con alta concentración 1 % en agua
Tratamiento 3 Aceite vegetal con baja concentración 0.5 % en agua
Tratamiento 4 Látex de banano (alta) 2 %
Tratamiento 5 Látex de banano (baja) 1 %
Tratamiento 6 Clara de huevo 1 %
Anexo 2. Ensayo Preliminar 2: concentración de desechos líquidos
Código Tratamiento Dosis
Tratamiento 1 control sin aplicación
Tratamiento 2 desecho líquido (alta) 100 % (no diluido)
Tratamiento 3 desecho líquido (bajo) diluido en agua al10%
36
Anexo 3. Análisis estadístico del efecto de los tratamientos en la supresión
de la enfermedad. Prueba Duncan
Código Tratamiento Promedio Grupo Duncan
T1 Testigo 1.49424 A T2 EM – 1 1.34111 B T3 Desecho
Líquido
1.40495 B
T4 EM – 5 1.38470 B
Anexo 4. Efecto de los tratamientos en cuanto a HMJE, según la prueba
Duncan
Código Tratamiento Promedio rHMJE
Promedio HMJE
Grupo Duncan
T1 Testigo 2.13 3.59 C
T2 EM – 1 2.26 4.14 A
T3 Desechos
Líquidos
2.19 3.83 B
T4 EM – 5 2.17 13.77 B
37
Anexo 5. Efecto de los tratamientos en el número total de hojas.
Código Tratamiento Promedio Grupo Duncan
T1 Testigo 7.36 C
T2 EM – 1 7.89 A
T3 Desechos
Líquidos
7.67 B
4 EM – 5 7.23 C
Anexo 6. Análisis químico del EM y desechos líquidos
* = Laboratorio químico – suelo y foliares CORBANA S.A., La Rita
** = Carmel et al, 2000
N P K Ca Mg S Fe Cu Zn Mn B
EM - 1 * 301 23 1716 425 208 273 26 0.14 0.6 3 0.3 3.4%
Desecho líquido ** 0.05 0.40 2.55 - 0.06 36.70 8.80 11.70 6.20 0.40 - -
Sustancia------------------------------------------ mg/L---------------------------------
Elemento Mayor Elemento MenorPh
