UNIVERSIDAD NACIONAL DE INGENIERÍA
FACULTAD DE INGENIERÍA QUÍMICA Y TEXTIL
“TRATAMIENTO DEL EFLUENTE DE UNA PLANTA PTAR
MEDIANTE EL PROCESO DE SONICACIÓN –
ELECTROCOAGULACIÓN”
TESIS
PARA OPTAR EL TÍTULO PROFESIONAL DE:
INGENIERO QUÍMICO
POR LA MODALIDAD DE TESIS:
ENRIQUE CONDOR SALAZAR
EDGAR GUTIÉRREZ SALGADO
LIMA – PERÚ
DICIEMBRE 2017
DEDICATORIA:
A Dios por guiarme con sabiduría.
A mis padres, Irma y Arnaldo, por sus sacrificios y sus esfuerzos, por creer
en mi capacidad.
A mis hermanos, Ángela y Arnaldito, por apoyarme y siempre estar
conmigo.
A toda mi familia y amigos, porque de una y otra forma han llenado de
sabiduría mi vida.
Enrique Condor Salazar
A Dios por haberme dado la oportunidad de conocer este mundo y cuidar
de mí en todo momento.
A mi padre por enseñarme que nada es fácil en esta vida y que todo se
consigue con mucho esfuerzo.
A mi mama por ser la mejor madre del mundo, por ser mi apoyo en cada
paso que doy y por inculcarme valores en cada etapa de mi vida.
A mis hermanas Lily y Loly por darme los mejores consejos y por
apoyarme incondicionalmente.
A todos mis amigos por ser como mi segunda familia y por apoyarme en
concluir este trabajo de investigación
Edgar Gutiérrez Salgado
AGRADECIMIENTO
Este trabajo fue culminado gracias al apoyo de nuestro asesor, el Msc. Warren Reátegui
Romero, que siempre nos estuvo motivando a seguir adelante hasta el final.
Al Ing. Marco Antonio Pinchi Valdez que nos facilitó las muestras de agua residual e hizo
posible la realización de este estudio.
Y a todas las personas que hicieron posible la realización de este estudio agradecerles
por su apoyo.
iv
RESUMEN
Se realizó un estudio de las tecnologías de sonicación (S) seguido de la
electrocoagulación (EC), para un efluente procedente de la planta de tratamiento de agua
residual de uso doméstico de San Juan de Miraflores (PTAR-SJM). Se disminuyó las
concentraciones de la DBO5, DQO, aceites y grasas, y coliformes fecales, obteniendo así
un efluente de mejor calidad.
Es necesario recalcar que en términos generales, el efluente de la PTAR – SJM cumple
con el límite máximo permisible (LMP), los cuales son exigibles por la autoridad
competente, Organismo de Evaluación y Fiscalización Ambiental (OEFA).
Para reuso, se mejoró la calidad y de manera referencial fue comparado con el Estándar
de Calidad Ambiental – categoría 3, para uso de riego de vegetales.
En el caso de la sonicación (S), primero se trabajó por lotes, a un volumen y frecuencia
constante de 4,8 L y 35 kHz, respectivamente. Luego, se determinó el tiempo óptimo de
sonicación (10 minutos) en función de los siguientes parámetros: DBO5, DQO, aceites y
grasas, temperatura y STS.
Una vez obtenido el tiempo óptimo, se realizó el proceso de electrocoagulación por lotes.
Para reducir las concentraciones por debajo del ECA-agua, categoría 3, se tuvo que
determinar el valor óptimo de las siguientes variables: densidad de corriente y tiempo
para un efluente en un reactor por lotes y por flujo continuo.
En el caso del reactor por flujo continuo se tuvo que adicionalmente encontrar el caudal
apropiado a tratar del efluente.
Para el proceso de EC se emplearon 2 reactores, uno por lotes y otro de flujo continuo,
en ambos casos las condiciones fueron: volumen de 5 L con electrodos de Fe/Fe como
ánodos de sacrificio generadores de las partículas coagulantes, con una densidad de
corriente que vario en un rango de 100,3 A/m2 - 200,5 A/m2.
Finalmente, se determinó cómo debe trabajar correctamente la secuencia de los equipos
de sonicación / electrocoagulación para poder encontrar las mejoras deseadas en el
efluente tratado. Se determinó que el mejor proceso se da a un tiempo determinado en
cada una de las secuencias pudiendo lograr una mejor remoción de coliformes
termotolerantes, demanda bioquímica de oxígeno y demanda química de oxígeno.
v
Al final del proceso secuencial de sonicación (lotes) y electrocoagulación (continuo) se
logró reducir la concentración de los parámetros como: coliformes fecales (CF) o
termotolerante, demanda bioquímica de oxígeno (DBO5), demanda química de oxígeno
(DQO) por debajo de los Límites Máximos Permisibles (LMP del D.S. Nº 003-2010-
MINAM) y del estándar de calidad ambiental categoría 3 (D.S.Nº 004-2017-MINAM), y
mantener la temperatura, pH y sólidos totales suspendidos dentro del rango de LMP y
ECA - categoría 3. En el caso de la demanda química de oxígeno, se logró reducir la
concentración cumpliendo con el LMP; sin embargo, superó ligeramente el ECA-
categoría 3.
vi
Abstract
A study of sonication technologies (S) followed by electrocoagulation (EC) was conducted
for an effluent coming from the wastewater treatment plant of San Juan de Miraflores
(PTAR-SJM). The levels of DBO5, DQO, oils and fats, and fecal coliforms were reduced,
thus obtaining an effluent of better quality.
It is necessary to emphasize that in general terms, the effluent of the PTAR - SJM
complies with the maximum permissible limit (LMP), which is demanded by the competent
authority, Agency for Evaluation and Environmental Enforcement (OEFA).
For reuse, the quality was improved and as a reference it was compared to the
Environmental Quality Standard - category 3, for the use in vegetable irrigation.
In the case of sonication (S), we first worked in batches, a constant volume and frequency
of 4,8 L and 35 kHz, respectively. Then, the optimal sonication time (10 minutes) was
determined according to the following parameters: DBO5, DQO, temperature and STS.
Once the optimal time was obtained, the electrocoagulation process was carried out in
batches. To reduce the concentrations below the ECA-water, category 3, the optimal
value of the following variables had to be determined: current density and time for an
effect in a batch reactor and by continuous flow.
In the case of the reactor by the continuous flow, it was also necessary to find the
appropriate flow to treat the effluent.
For the EC process, 2 reactors were used, one in batches and the other in a continuous
one, in both cases the conditions were: 5 L volume with Fe / Fe electrodes as sacrificial
anodes coagulating particle generators, with a current density which varies in a range of
100,3 A / m2 – 200,5 A / m2.
Finally, it was determined how the sequence of the sonication/electrocoagulation
equipment should be correctly worked in order to find the desired improvements in the
treated effluent. It was determined that the best process was obtained for an specific time
in each of the sequences, being able to achieve a better removal of thermotolerant
coliforms, biochemical oxygen demand and chemical demand for oxygen.
vii
At the end of the sequential process of sonication (batches) and electrocoagulation
(continuous) the concentration of the parameters was reduced, such as: fecal coliforms
(CF) or thermotolerant, biochemical oxygen demand (DBO5), chemical demand for
Oxygen (DQO) below the Maximum Permissible Limits (LMP, DS Nº 003-2010-MINAM)
and the environmental environmental quality category 3 (D.S. Nº 004-2017-MINAM), and
maintain the temperature, pH and total solids suspended within the range of LMP and
ECA - category 3. In the case of chemical oxygen demand, the concentration can be
reduced by complying with the LMP; however, it slightly exceeded the ECA-category 3.
viii
PRÓLOGO
La presente tesis es un requisito previo para optar el título Profesional de Ingeniero
Químico en la Facultad de Ingeniería Química, de acuerdo con los estatutos de la
Universidad Nacional de Ingeniería.
El estudio “Tratamiento del efluente de una planta PTAR mediante el proceso de
sonicación - electrocoagulación”, se llevó a cabo para proponer las posibles soluciones a
la problemática que algunas plantas de tratamiento de aguas no cumplen con los límites
máximos permisibles. Además, cuando son reutilizadas para riego no cumplen con la
calidad para el uso de riego de vegetales, categoría 3.
Con el fin de solucionar la problemática planteada se presenta como aporte a dicha
solución, la propuesta de otras alternativas para implementar en el tratamiento de agua,
con buenos resultados como son los casos de la sonicación y electrocoagulación. Se
propone la implementación de los procesos de sonicación y electrocoagulación en las
PTAR de forma gradual. Esto permitirá contar con agua de mejor calidad, cumpliendo no
solo con la normativa vigente, sino también tener la calidad de acuerdo al uso que se le
dará al agua.
Los resultados del presente estudio pueden aplicarse en otras plantas de tratamiento de
agua residuales domésticas del Perú y en otros países. También puede utilizarse como
consulta académica de estudiantes de Ingeniería Química y afines.
ix
ÍNDICE
RESUMEN
CAPÍTULO I 14
I. INTRODUCCIÓN 14
1.1. Antecedentes 14
1.2. Justificación de la investigación 15
1.3. Marco legal 16
1.3.1. Normativa Nacional 16
1.3.2. Normativa Internacional 21
1.4. Planteamiento del problema 21
1.5. Objetivos 22
1.5.1. Objetivo general 22
1.5.2. Objetivos específicos 22
1.6. Hipótesis 23
CAPÍTULO II 24
II. REVISIÓN DE ANTECEDENTES REFERENCIALES 24
CAPÍTULO III 27
III. MARCO TEÓRICO 27
3.1. Coloides 27
3.1.1. Tipos de coloides de acuerdo a su comportamiento
en el agua 28
3.1.2. Propiedades de los coloides 29
3.1.3. Desestabilización y destrucción de un coloide 34
3.2. Electrocoagulación 38
3.2.1. Factores que afectan una electrocoagulación 44
3.2.2. Ventajas y desventajas de la electrocoagulación 45
3.2.3. Tipos de electrodos 47
x
3.3. Sonicación 47
3.3.1. Cavitación acústica producido por el ultrasonido 48
3.3.2. Factores que afectan la sonicación 52
3.3.3. Tipos de ultrasónicos 54
3.3.4. Ventajas y desventajas del ultrasonido 55
CAPÍTULO IV 56
IV. DESARROLLO EXPERIMENTAL 56
4.1. Metodología 60
4.2. Cálculos 64
4.3. Diagrama de flujo de la sonicación por lotes 66
4.4. Diagrama de flujo de la electrocoagulación por lotes 67
4.5. Diagrama de flujo del proceso secuencial de sonicación y
electrocoagulación por lotes 68
4.6. Diagrama de flujo del procesos secuencial de sonicación por lotes y
Electrocoagulación a flujo continuo 69
4.7. Materiales experimentales 70
4.8. Procedimiento experimental 74
4.8.1. Proceso de sonicación 78
4.8.2. Proceso secuencial de sonicación y electrocoagulación
por lotes 81
4.8.3. Proceso secuencial de sonicación por lotes y
electrocoagulación a flujo continuo 84
4.9. Observaciones del desarrollo experimental 89
4.9.1. Proceso de sonicación 89
4.9.2. Proceso de electrocoagulación aplicando la mejor respuesta
del proceso de sonicación 91
4.9.3. Proceso secuencial de sonicación por lotes y
electrocoagulación a flujo continuo 95
4.10. Resultados de los procesos experimentales de sonicación y
electrocoagulación 97
xi
4.11. Análisis y discusión de resultados 106
4.11.1. Proceso de sonicación por lotes 106
A. Efecto de la sonicación sobre el pH 106
B. Efecto de la sonicación sobre la temperatura 107
C. Efecto de la sonicación sobre los sólidos totales suspendidos
(STS) 108
D. Efecto de la sonicación sobre la turbidez 110
E. Efecto de la sonicación sobre las aceites y grasas 110
F. Efecto de la sonicación sobre la demanda bioquímica de
oxígeno (DBO5) 112
G. Efecto de la sonicación sobre la demanda química de
oxígeno (DQO) 114
H. Efecto de la sonicación sobre los coliformes fecales 116
I. Efecto de la sonicación sobre los coliformes totales 116
4.11.2. Proceso de sonicación y electrocoagulación por lotes 118
A. Efecto de la sonicación-electrocoagulación sobre el pH 119
B. Efecto de la sonicación-electrocoagulación sobre los sólidos
suspendidos 120
C. Efecto de la sonicación-electrocoagulación la demanda
bioquímica de oxígeno 121
D. Efecto de la Sonicación-electrocoagulación la demanda
química de oxígeno 123
E. Efecto de la sonicación-electrocoagulación sobre los
coliformes fecales (CF) 126
4.11.3. Proceso secuencial de sonicación por lotes y
electrocoagulación a flujo continuo 128
A. Efecto del caudal sobre el pH 128
B. Efecto del caudal sobre los sólidos totales suspendidos 130
C. Efecto del caudal sobre la demanda bioquímica de oxígeno
(DBO5) 131
D. Efecto del caudal sobre la demanda química de oxígeno
xii
(DQO) 133
E. Efecto del caudal sobre los coliformes fecales (CF) 135
4.11.4. Proceso de sonicación (S) vs electrocoagulación (EC) 137
4.11.5. Proceso de electrocoagulación (EC) por lotes vs Proceso
secuencial de sonicación (S) y electrocoagulación (EC),
por lotes 139
4.11.6. Proceso secuencial de sonicación (S) y
electrocoagulación (EC) por lotes vs sonicación(S) por lotes y
electrocoagulación (EC) a flujo continuo 141
V. Evaluación técnica y económica 144
5.1. Cálculo del volumen del reactor industrial 144
5.2. Cálculo del número de electrodos 144
5.3. Cálculo del área total del electrodo 146
5.4. Cálculo de la intensidad de corriente 146
5.5. Cálculo de la energía consumida por volumen de efluente 146
5.6. Consumo de electrodo de hierro 147
5.7. Costo total para un sistema de sonicación y electrocoagulación a escala
industrial 147
CAPÍTULO VI 149
VI. CONCLUSIONES 149
6.1. Sonicación por lotes 149
6.2. Proceso secuencia de sonicación y electrocoagulación por lotes 150
6.3. Proceso secuencial de sonicación por lotes y electrocoagulación a flujo
continuo 150
CAPÍTULO VII 152
VII. RECOMENDACIONES 152
VIII. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 152
ANEXOS 153
xiii
ANEXO A - Certificado de acreditación del Laboratorio Certimin ante el Instituto
nacional de calidad (INACAL)
ANEXO B – Informes de ensayo del laboratorio Certimin
ANEXO C – Condiciones par muestreo y preservación de muestras de agua
ANEXO D – Información de la planta de tratamiento de aguas residuales - SJM
ANEXO E – Estándar de calidad ambiental y límite máximo permisibles para efluentes
de plantas de tratamiento de aguas residuales
CAPÍTULO I
1. INTRODUCCIÓN
1.1. Antecedentes
La calidad del agua es una cuestión que preocupa a muchos países por
repercusión en la salud de la población. En el siglo XIX y a comienzos del siglo
XX, agudas enfermedades de origen hídrico, como el cólera y la fiebre tifoidea
dieron al origen a la creación de plantas de filtrado y cloración. Actualmente
conocidos como las plantas de tratamientos de aguas residuales.
Una creciente preocupación de los efectos sobre la salud ha creado un desarrollo
en alza en el campo del tratamiento identificando los compuestos orgánicos
potencialmente dañinos a tal punto que una baja turbidez ya no es suficiente para
considerarlo como buena calidad. Las aguas residuales contienen coliformes
totales, coliformes fecales, bacterias heterotróficas que son perjudiciales para la
salud.
Una de las soluciones son las plantas de tratamiento de aguas residuales
(PTAR), sin embargo son costosas y no todos cumplen con los límites máximos
permisibles (LMP), como solución se propone el proceso secuencial de
sonicación / electrocoagulación. Es decir, primero la sonicación (proceso utilizado
para el tratamiento de aguas contaminadas con productos farmacéuticos) y luego
la electrocoagulación, utilizando electrodos de hierro (Fe).
15
1.2. Justificación de la investigación
Los recursos hídricos en el Perú y el mundo deben preservarse y utilizarse de
manera racional porque son indispensables para que exista vida. En otras
palabras, el agua es un elemento esencial para la vida, sin ella el hombre no
podría existir.
En estas últimas décadas, los cuerpos receptores de agua se han deteriorado
significativamente por la contaminación que provocan diversas actividades
humanas. Siendo el de mayor impacto los efluentes líquidos de la población. Bajo
esta premisa, la presente tesis pretende contribuir con la sociedad con nuevas
alternativas para los tratamientos de aguas residuales y así contribuir a una mejor
calidad del agua.
La principal variante que se analiza en la presente investigación se refiere a los
conocimientos que se tiene de los procesos de sonicación y electrocoagulación,
el cual debe tener un impacto positivo para complementar nuevas tecnología
para obtener un tratamiento óptimo.
Además, la investigación es novedosa en su campo de acción, porque es la
primera vez que se realiza el tratamiento de agua con un proceso secuencial de
sonicación y electrocoagulación. La investigación plantea una forma de tratar el
agua de manera eficiente y económica.
La electrocoagulación consiste en inducir corriente eléctrica en el agua residual a
través de placas metálicas paralelas. Los costos de operación son menores
comparados con los procesos que se emplean productos químicos. Por otra
parte, la sonicación consiste en aplicar el ultrasonido para la degradación de
contaminantes del medio ambiente. Ofrece buenos rendimientos y ventajas de no
adicionar componentes químicos.
Los beneficiarios directos de la presente investigación son los estudiantes de
ingeniería y las personas que se encuentren involucradas con la calidad del
agua. Se espera que la misma sirva como punto de partida para que las demás
investigaciones consideren cuan importantes son los procesos de sonicación y
electrocoagulación.
16
1.3. Marco legal
1.3.1. Normativa Nacional
El Perú tiene normas y diversos mecanismos que protegen el medio
ambiente entre ellos tenemos:
Ley N°29338 - Ley de recursos Hídricos
Artículo 79º.- Vertimiento de agua residual
La Autoridad Nacional autoriza el vertimiento del agua residual tratada a un
cuerpo natural de agua continental o marina, previa opinión técnica
favorable de las Autoridades Ambiental y de Salud sobre el cumplimiento
de los Estándares de Calidad Ambiental del Agua (ECA-Agua) y Límites
Máximos Permisibles (LMP). Queda prohibido el vertimiento directo o
indirecto de agua residual sin dicha autorización.
En caso de que el vertimiento del agua residual tratada pueda afectar la
calidad del cuerpo receptor, la vida acuática asociada a este o sus bienes
asociados, según los estándares de calidad establecidos o estudios
específicos realizados y sustentados científicamente, la Autoridad Nacional
debe disponer las medidas adicionales que hagan desaparecer o
disminuyan el riesgo de la calidad del agua, que puedan incluir tecnologías
superiores, pudiendo inclusive suspender las autorizaciones que se
hubieran otorgado al efecto. En caso de que el vertimiento afecte la salud o
modo de vida de la población local, la Autoridad Nacional suspende
inmediatamente las autorizaciones otorgadas.
17
Ley N°28611 - Ley general del ambiente
DL N°1055 – Decreto legislativo que modifica la Ley N°28611
Límite Máximo Permisible (LMP)
Es la medida de la concentración o grado de elementos, sustancia o
parámetro físico, químico o biológico, que caracterizan a un efluente o
emisión, que al ser excedida causa o puede causar daños a la salud, al
bienestar humano y al ambiente. Su determinación corresponde al
ministerio del ambiente. Su cumplimiento es exigible legalmente por el
ministerio del ambiente y los organismos que conforman el Sistema
Nacional de Gestión Ambiental. Los Límites Máximo Permisibles se
muestran en la Tabla 1.1.
Tabla 1.1. Límites Máximos Permisibles para los efluentes de Plantas de
Tratamiento de Aguas Residuales Domésticas o Municipales (D.S. N° 003-
2010-MINAM).
PARÁMETROS
UNIDAD LMP DE EFLUENTES PARA VERTIDOS A
CUERPOS DE AGUAS
Aceites y grasas mg/l 20
Coliformes termotolerantes
NMP/100 ml 10 000
Demanda Bioquímica de Oxígeno
mg/l 100
Demanda Química de Oxígeno
mg/l 200
pH Unidad 6,5-8,5
Sólidos Totales en Suspensión
mg/l 150
Temperatura °C Menor a 35 Fuente: D.S. N° 003-2010-MINAM
18
Decreto Supremo N° 004-2017-MINAM, Aprueban Estándares de
Calidad Ambiental (ECA) para Agua y establecen Disposiciones
complementarias
Estándar Nacional de Calidad ambiental para Agua (ECA-agua)
ECA es la medida que establece el nivel de concentración de elementos,
sustancias o parámetros físicos, químicos y biológicos presentes en el
agua en su condición de cuerpo receptor, que no presenta riesgo
significativo para la salud de las persona ni al ambiente.
La calidad del agua también se clasifica de acuerdo al uso que se le dará,
a continuación se presentan los estándares y los parámetros evaluados
para el ECA – categoría 3.
Tabla 1.2. Estándar Nacional de Calidad Ambiental para Agua (ECA-agua
(D.S. N° 004-2017-MINAM).
Categorías ECA AGUA: CATEGORÍA 3
Parámetro Unidad
D1:RIEGO DE VEGETALES
D:2 BEBIDA DE
ANIMALES
Agua para riego no
restringido
Agua para riego
restringido
Bebida de animales
FÍSICOS - QUÍMICOS
Aceites y grasas
mg/l 5 10
Bicarbonatos mg/l 518 **
Cianuro Wad mg/l 0,1 0,1
Cloruros mg/l 500 **
Color (b)
Color verdadero
escala Pt/Co
100 (a) 100 (a)
Conductividad (µS/cm) 2 500 5 000
Demanda Bioquímica de Oxígeno (DBO5)
mg/l 15 15
Categorías ECA AGUA: CATEGORÍA 3
Parámetro Unidad
D1:RIEGO DE VEGETALES
D2: BEBIDA DE
ANIMALES
Agua para riego no
restringido
Agua para riego
restringido
Bebida de animales
FÍSICOS - QUÍMICOS
Demanda Química de Oxígeno (DQO)
mg/l 40 40
Detergentes (SAAM)
mg/l 0,2 0,5
Fenoles mg/l 0,002 0,01
Fluoruros mg/l 1 **
Nitratos (NO3
- -N) + Nitritos(NO2 --N)
mg/l 100 100
Nitritos NO2 --N mg/l 10 10
Oxígeno Disuelto (valor mínimo)
mg/l 4 5
Potencial de Hidrógeno (pH)
Unidad de pH
6,5 – 8,5 6,5 – 8,4
Sulfatos mg/l 1000 1000
Temperatura °C Δ 3 Δ 3
INORGÁNICOS
Aluminio mg/l 5 5
Arsénico mg/l 0,1 0,2
Bario mg/l 0,7 **
Berilio mg/l 0,1 0,1
Boro mg/l 1 5
Cadmio mg/l 0,01 0,05
Cobre mg/l 0,2 0,5
Cobalto mg/l 0,05 1
Cromo Total mg/l 0,1 1
Hierro mg/l 5 **
Litio mg/l 2,5 2,5
Magnesio mg/l ** 250
Manganeso mg/l 0,2 0,2
Mercurio mg/l 0,001 0,01
Níquel mg/l 0,2 1
Categorías ECA AGUA: CATEGORÍA 3
Parámetro Unidad
D1:RIEGO DE VEGETALES
D2: BEBIDA DE
ANIMALES
Agua para riego no
restringido
Agua para riego
restringido
Bebida de animales
Plomo mg/l 0,05 0,05
Selenio mg/l 0,02 0,05
Zinc mg/l 2 24
PLAGUICIDAS
Parathión µg/l 35 35
Organoclorados
Aldrin µg/l 0,004 0,7
Clordano µg/l 0,006 7
DDT µg/l 0,001 30
Dieldrin µg/l 0,5 0,5
Endosulfan µg/l 0,01 0,01
Endrin µg/l 0,004 0,2
Heptacloro y heptacloro epóxido
µg/l 0,01 0,03
Lindano µg/l 4 4
CARBAMATO:
Aldicarb µg/l 1 11
POLICLORUROS BIFENILOS TOTALES
Policloruros Bifenilos Totales (PCB´s)
µg/l 0,04 0,045
MICROBIOLÓGICOS Y PARASITOLÓGICOS
Coliformes Termotolerantes
NMP/100 ml
1000 2 000 1 000
Escherichia coli NMP/100 ml
1000 ** **
Huevos de helmintos
Huevos/l 1 1 **
(a): Para aguas claras. Sin cambio anormal (para aguas que presentan coloración natural).
(b): Después de filtración simple.
(c): Para el riego de parques públicos, campos deportivos, áreas verdes y plantas ornamentales,
Nota: El símbolo ** dentro de la tabla significa que el parámetro no aplica para esta Subcategoría. Los valores de los parámetros se encuentran en concentraciones totales, salvo que se indique lo contrario
21
1.3.2. Normativa Internacional
A nivel internacional existen diversos estándares ambientales, a
continuación se mencionan las más importantes:
Agencia de Protección Ambiental de los Estados Unidos (U.S. EPA, 1973;
US. EPA, 1992).
Corporación Financiera Internacional (Grupo del Banco Mundial): Manual
de Prevención y Mitigación de la Contaminación – Requerimientos para la
Descarga de efluentes Presentes en las Guías para la Industria (WBG
1998).
Norma Oficial Mexicana-001-SEMARNAT-1996: Límites Máximos
Permisibles de Contaminantes en la Descargas de Aguas Residuales en
Aguas y Bienes Nacionales.
1.4. Planeamiento del problema
En las últimas décadas, la calidad del agua se ha visto afectada por el
incremento de efluentes domésticos que se han vertido a los cuerpos de agua.
Estos efluentes, como resultado de fenómenos químicos, biológicos y físicos
generan la contaminación del recurso hídrico y vegetales.
Actualmente, las aguas residuales tratadas de la PTAR - SJM, al igual que las
otras PTARs, son utilizadas para regar parques, sin embargo cuando son
comparadas de manera referencial con el ECA-3 para uso de riego de vegetales,
la mayoría de los parámetros superan el ECA.
Como solución a este problema, se plantea incorporar a la planta de tratamiento
de San Juan de Miraflores los procesos de sonicación y electrocoagulación para
la descontaminación de las aguas residuales de la población y mejorar la calidad
del agua para una correcta reutilización del agua residual para regar parques.
22
1.5. Objetivos
1.5.1. Objetivo general
Mejorar la calidad del efluente de salida de la Planta de Tratamiento de
Agua Residual de San Juan de Miraflores (PTAR-SJM) en una secuencia
de sonicación (S) seguido de electrocoagulación (EC).
1.5.2. Objetivos específicos
Reducir el contenido de la demanda química de oxígeno (DQO) y
demanda bioquímica de oxígeno (DBO).
Reducir el contenido de aceites y grasas.
Reducir el nivel de coliformes fecales (CF).
Determinar el tiempo óptimo de sonicación a un volumen de 4,8 L y
35 kHz.
Determinar los parámetros óptimos de la electrocoagulación
(densidad de corriente, voltaje, tiempo) por lotes y flujo continuo.
23
1.6. Hipótesis
¿El diseño de un proceso secuencial de sonicación / electrocoagulación
disminuye los niveles de concentraciones de los parámetros: coliformes fecales
(CF), demanda bioquímica de oxígeno (DBO5), demanda química de oxígeno
(DQO), y aceites y grasas?
CAPÍTULO II
II. REVISIÓN DE ANTECEDENTES REFERENCIALES
En la actualidad, no se tiene investigaciones acerca del tratamiento de aguas
residuales domésticas por sonicación/electrocoagulación, es decir utilizar la
sonicación como un pretratamiento de la electrocoagulación. Sin embargo, las
investigaciones por sonicación y electrocoagulación, por separado, tienen
vasta información. Bajo esta premisa, se tomó como antecedentes
referenciales las siguientes investigaciones:
Wang et al. (2009), describen la eficiencia de remoción de la demanda
química de oxígeno (DQO) en el tratamiento de aguas residuales de
lavandería utilizando la tecnología de electrocoagulación/electroflotación. La
celda electroquímica se colocó dentro de un baño de limpieza por ultrasonidos
con una frecuencia de 43 kHz y una potencia de 80 W de Delta, modelo
DC400H Los resultados experimentales mostraron que la eficiencia de
eliminación fue mejor, alcanzando aproximadamente el 62 % al aplicar
ultrasonido a las celdas de electrocoagulación. El pH de la solución alcanzó la
neutralidad en todas las pruebas experimentales. La eficacia de eliminación
óptima de DQO se obtuvo utilizando la tensión aplicada de 5 V al considerar la
eficiencia energética y la eficiencia de eliminación aceptable simultáneamente.
La concentración de Cl- de menos de 2 500 ppm tuvo un efecto positivo en la
eficiencia de eliminación. El rendimiento de la conexión monopolar de
electrodos fue mejor que el de la conexión bipolar en este trabajo. Además, la
eficacia de remoción del uso de electrodos de Al fue mayor en comparación
con el uso de electrodos de Fe en el estudio. La mayor cantidad de remoción
de DQO por joule se encontró que era de 999 mgdm-3kWh-1 mientras se
usaban dos electrodos de Al, aunque la eficacia de eliminación aumentaba con
el número de placas de Al.
25
Upadhyay y Khandate (2012), describen el proceso de oxidación asistida por
ultrasonido para la eliminación de contaminación aromática de efluentes. El
objetivo del estudio fue comprobar la viabilidad de la técnica de ultrasonido
que tiene una amplia gama de aplicaciones industriales y su potencial para el
tratamiento de agua y aguas residuales. La eficiencia del proceso habitual de
limpieza para calentar compuestos carbonosos (tratamiento biológico o físico /
químico) es limitada. En tales circunstancias, el ultrasonido parece ser una
tecnología prometedora para el tratamiento de aguas residuales. El calor de la
implosión de la cavidad descompone el agua en átomos de hidrógeno (H•)
extremadamente reactivos y radicales hidroxilo (•OH). Así, en un entorno
molecular de este tipo, los compuestos orgánicos y los compuestos
inorgánicos se oxidan o reducen en función de su reactividad. Este método se
destaca mientras se consideran algunos de los desafíos futuros como la
disminución del costo de operación.
Arango (2005), describe cómo ha ido evolucionando la electrocoagulación en
el tratamiento de aguas residuales, en 1888 se realizó el primer ensayo en el
que se empleó ánodos de hierro soluble y como a través del tiempo se ha ido
empleando esta técnica en la remoción del DBO, partículas dispersas de
aceite, grasas, petróleo, coagular aguas negras y otros. También existen
diferentes tipos de reactores como los bach con electrodo monopolares
conectados en paralelo o en serie, reactor filtro prensa y reactor de electrodo
cilíndrico rotativo. La electrocoagulación reduce los contaminantes que se
encuentran en suspensión al hacer inducir corriente eléctrica por medio de las
placas metálicas donde el lado positivo sufre reacciones anódicas y el lado
negativo reacciones catódicas, las placas de hierro o aluminio se emplean
como electrodos de sacrificio que van aportar iones al sistema que van a
desestabilizar dando inicio a la coagulación. Es así que la electrocoagulación
permite recuperar el recurso hídrico que es agua por medio de un proceso
electroquímico donde la eficiencia depende de diferentes factores como la
densidad de corriente, pH, temperatura y concentración de NaCl.
26
Reátegui et al. (2015), describen como por medio del proceso de
electrocoagulación se puede lograr la remoción del aluminio y bario empleando
electrodos de aluminio en un proceso por lotes, el efluente empleado es
proveniente del proceso de deshidratación o separación sólido - líquido del
lodo de perforación correspondiente a la sección 8 ½ del pozo Bretaña Norte
95-2-1 XD, ubicado en el distrito de Puinahua, departamento de Loreto, Perú.
Se pudo encontrar que las condiciones óptimas para el sistema por lotes es a
una densidad de corriente de 2,22 A/dm2 y aun tiempo de proceso óptimo de
30 minutos; el porcentaje de remoción que se alcanzó es de Al 87,86%; Ba
99,41%; turbidez 93,4% y de 98,93% de sólidos suspendidos.
CAPÍTULO III
III. MARCO TEÓRICO
3.1. Coloides
El coloide es una dispersión de las partículas en una sustancia entre un medio
dispersor, que está formado por otra sustancia. Estas partículas coloidales son
mucho más grandes que las moléculas de los solutos comunes midiendo entre
1 x 103 pm a 1x106 pm (American Water Works Association, 2002; Centro
Panamericano de Ingeniería Sanitaria y Ciencias del Ambiente (CEPIS/OPS),
2004; Chang & Goldsby, 2013; Sawyer, McCarty, & Parkin, 2001). Una
suspensión coloidal carece de la homogenización que tiene una disolución
común. Como se observa en la Tabla 3.1, la fase dispersa y el medio
dispersor pueden ser gases, líquidos, sólidos o también una combinación de
las diferentes fases (American Water Works Association, 2002; Chang &
Goldsby, 2013; Sawyer et al., 2001).
Tabla 3.1. La fase dispersa y el medio dispersor pueden ser gases, líquidos o
sólidos (American Water Works Association, 2002; Chang & Goldsby, 2013;
Sawyer et al., 2001).
Medio dispersor
Fase dispersa
Nombre Ejemplo
Gas Líquido Aerosol Bruma, niebla
Gas Sólido Aerosol Humo
Líquido Gas Espuma Crema batida
Líquido Líquido Emulsión Mayonesa
Líquido Sólido Sol Leche de magnesia
Sólido Gas Espuma Espumas plásticas
Sólido Líquido Gel Gelatina ,mantequilla
Sólido Sólido Sol sólido Algunas aleaciones (acero)
28
3.1.1. Tipos de coloide de acuerdo a su comportamiento en el agua
El coloide más importante es el que tiene como medio dispersor al agua.
Se divide en dos categorías, hidrofílicos (atracción por el agua) o
hidrofóbicos (repulsión por el agua). Los coloides hidrofílicos en su
disolución contienen moléculas muy grandes, como las proteínas. Como se
muestra en la Figura 3.1, una proteína en la fase acuosa como la
hemoglobina se pliega de tal forma que las partes hidrofilicas de la
molécula, se encuentran en la parte externa las partes capaces de formar
interacciones favorables con las moléculas de agua a través de la fuerzas
ion-dipolo o mediante formación de puente de hidrogeno (Chang &
Goldsby, 2013; Sawyer et al., 2001).
Figura 3.1. Los grupos hidrofílicos de la superficie de una molécula
grande, como una proteína, estabilizan dicha molécula en agua, podemos
ver que estos grupos pueden formar enlaces de hidrogeno con el agua
(Chang & Goldsby, 2013; Sawyer et al., 2001).
Los colides hidrofóbicos no son estables en agua y sus partículas forman
conglomerados, como gotas de aceite en agua, que se distribuyen en una
película oleosa en la superficie del agua, pero puede estabilizarse por
adsorción de iones en su superficie, como se muestra en la Figura 3.2. La
29
adsorción se refiere a la adherencia a una superficie y la absorción es el
paso al interior del medio. Los iones adsorbidos interactúan con el agua,
estabilizando así el coloide. La repulsión electrostática que existe entre las
partículas evita que estas se junten (Chang & Goldsby, 2013; Sawyer
et al., 2001).
Figura 3.2. Diagrama de la estabilización de los coloides hidrofóbicos.
Los iones negativos se adsorben en la superficie y la repulsión entre
cargas iguales evita que se agrupen las partículas (Chang & Goldsby,
2013; Sawyer et al., 2001).
3.1.2. Propiedades de los coloides
Propiedades eléctricas. Todas las partículas coloidales tienen carga
eléctrica. La magnitud de la carga varía considerablemente con la
naturaleza de la materia, y puede ser positiva o negativa. La estabilidad de
muchas dispersiones coloidales depende de su carga eléctrica. Puesto
que las cargas iguales se repelen, las partículas coloidales de la misma
carga no pueden estar suficientemente juntas para aglomerarse en
partículas más grandes (American Water Works Association, 2002; Centro
Panamericano de Ingeniería Sanitaria y Ciencias del Ambiente
(CEPIS/OPS), 2004; Sawyer et al., 2001).
Las propiedades electrocinéticas de los coloides son de gran importancia
para los ingenieros ambientales, ya que la desestabilización y remoción de
los coloides de los coloides depende del conocimiento que tengas de ellos
30
(American Water Works Association, 2002; Centro Panamericano de
Ingeniería Sanitaria y Ciencias del Ambiente (CEPIS/OPS), 2004; Sawyer
et al., 2001).
Cuando las partículas coloidales se colocan en un campo eléctrico migran
hacia el polo de carga opuesta. Este fenómeno se conoce como
electroforesis y es muy utilizado para determinar la naturaleza de la
partícula coloidal y otras propiedades (Centro Panamericano de Ingeniería
Sanitaria y Ciencias del Ambiente (CEPIS/OPS), 2004; Sawyer et al.,
2001).
Movimiento Browniano. Este término es usado para describir el
movimiento de las partículas de un coloide, este movimiento es provocado
por el bombardeo de las moléculas del medio de dispersión. Debido a su
masa tan pequeña, los coloides se mueven en desorden por el impulso del
bombardeo. El efecto del movimiento Browniano se puede observar en la
Figura 3.3. Este movimiento es independiente de que las partículas del
coloides sean vivas o inanimadas (Centro Panamericano de Ingeniería
Sanitaria y Ciencias del Ambiente (CEPIS/OPS), 2004; Sawyer et al.,
2001).
Figura 3.3. Efecto de movimiento de los coloides, movimiento browniano
(Chang & Goldsby, 2013).
Efecto óptico o Tyndall. Es una prueba que se utiliza para probar la
presencia de un coloide. Las partículas coloidales interfieren el paso de la
31
luz debido a que tienen dimensiones mayores que la longitud de onda
promedio de la luz blanca, es decir reflejan y dispersan el haz de luz
haciéndolo visible en toda su amplitud (Centro Panamericano de Ingeniería
Sanitaria y Ciencias del Ambiente (CEPIS/OPS), 2004; Sawyer et al.,
2001). Este efecto reflejante se muestra en la Figura 3.4.
Figura 3.4. Efecto Tyndall. La luz es visible en el coloide debido a la
dispersión de la luz.
Adsorción. Los coloides tienen una gran área superficial y, en
consecuencia, gran parte adsorbente. La adsorción normalmente tiene un
carácter selectivo, escogiendo algunos iones y excluyendo otros. Esta
característica hace que se produzcan partículas cargadas y es la base
fundamental de la estabilidad de muchas dispersiones coloidales. Además
de ese papel principal que juega la adsorción en la determinación de la
carga de la superficie de los coloides, el gran tamaño del área disponible
también representa un gran potencial para la adsorción de iones y
moléculas de importancia ambiental (Centro Panamericano de Ingeniería
Sanitaria y Ciencias del Ambiente (CEPIS/OPS), 2004; Sawyer, McCarty, &
Parkin, 2001).
Propiedades electrocinéticas. La estabilidad de los coloides hidrófobos
depende de su carga eléctrica. La carga primaria es el resultado de la
interacción de los grupos cargados en el interior de la superficie de la
partícula y los grupos adquiridos por la adsorción de una capa de iones del
medio que lo rodea (American Water Works Association, 2002; Centro
32
Panamericano de Ingeniería Sanitaria y Ciencias del Ambiente
(CEPIS/OPS), 2004; Sawyer et al., 2001), como se observa en la Figura
3.5.
Figura 3.5. Doble capa eléctrica de un coloide con carga negativa
(American Water Works Association, 2002; Centro Panamericano de
Ingeniería Sanitaria y Ciencias del Ambiente (CEPIS/OPS), 2004; Sawyer
et al., 2001).
Un sol considerado como un todo no puede tener carga neta, de manera
que la carga que pueda tener una partícula dada por estar equilibrada por
iones de carga opuesta (contra-iones) que se encuentren cerca de la
33
superficie y en la fase de solución. Esta necesidad de electroneutralidad se
manifiesta como una doble capa eléctrica compuesta por una capa fija
(llamada capa de Stern) de iones de carga opuesta adsorbida a la
superficie del coloide y una capa difusa de una mezcla de iones cargados,
como se muestra en la Figura 3.5. Las capas fija y difusa están separadas
por una superficie de deslizamiento que define la porción móvil del coloide.
La capa fija, que incluye el agua unida, se mueve con el coloide. Aunque
los contra-iones de la capa fija son electroestáticamente atraídos, y por
tanto, se concentran en la zona interfacial, están sostenidos muy
débilmente y pueden difundirse hacia afuera en respuesta a la agitación
térmica, y ser reemplazados por otros iones. Estas fuerzas que compiten
(atracción eléctrica y difusión) propagan la carga sobre la doble capa
eléctrica de modo que la concentración de los contra-iones es mayor en la
superficie y disminuye gradualmente a medida que aumenta la distancia.
Cuando el agua contiene una alta concentraciones de iones (fuerza iónica
alta), la doble capa eléctrica, se compacta. En este caso la capa ocuparía
un menor y se extendería menos la solución (American Water Works
Association, 2002; Centro Panamericano de Ingeniería Sanitaria y Ciencias
del Ambiente (CEPIS/OPS), 2004; Sawyer et al., 2001).
La Figura 3.6 muestra el efecto de la distancia entre dos partículas sobre la
fuerza neta existente entre ellas, a medida que dos partículas similares se
aproximan, las fuerzas electroestáticas de repulsión aumenta para
separarlas; sin embargo, si logran acercase lo suficiente y pasa esta
barrera de energía, las fuerzas de Van der Waals predominarán, y las
partículas continuarán juntas. Si se desea desestabilizar y coagular las
partículas coloidales se les debe aportar suficiente energía cinética para
vencer la barrera de energía, o bien la barrera de energía debe ser
disminuida de alguna manera (American Water Works Association, 2002;
Centro Panamericano de Ingeniería Sanitaria y Ciencias del Ambiente
(CEPIS/OPS), 2004; Sawyer et al., 2001).
34
Figura 3.6. Efecto de la fuerza iónica del líquido y la distancia entre las
partículas coloidales, sobre las fuerzas que interactúan (American Water
Works Association, 2002; Centro Panamericano de Ingeniería Sanitaria y
Ciencias del Ambiente (CEPIS/OPS), 2004; Sawyer et al., 2001).
Con el fin de entender la estabilidad coloidal y las condiciones necesarias
para la desestabilización, es útil conocer la carga de la superficie, el
potencial de la superficie y el punto de carga cero (American Water Works
Association, 2002; Centro Panamericano de Ingeniería Sanitaria y Ciencias
del Ambiente (CEPIS/OPS), 2004; Sawyer et al., 2001).
3.1.3. Desestabilización y destrucción de un coloide
Las partículas coloidales son muy pequeñas para ser removidas por
sedimentación gravitacional solamente; sin embargo, si los coloides se
desestabilizan o destruyen haciendo que se agreguen o coagulen en
partículas de mayor tamaño, pueden ser efectivamente removidas
(American Water Works Association, 2002; Centro Panamericano de
Ingeniería Sanitaria y Ciencias del Ambiente (CEPIS/OPS), 2004; Sawyer
35
et al., 2001). Hay cuatro mecanismos básicos para la coagulación de los
coloides:
Compresión de la doble capa. Si se agrega al sol un electrólito de alta
concentración, aumentará la concentración de los iones en la doble capa
eléctrica y por consiguiente disminuirá el espesor de la capa. La adición
de contra-iones de alta carga como Ca2+ en vez de Na+, dará un efecto
similar. Esto da como resultado una mayor disminución de la carga con la
distancia desde el interfaz de la partícula, llevando a la disminución o
quizá la eliminación del potencial de la barrera. Con la reducción o
eliminación de la barrera de energía, las partículas se pueden acercar y
agregar (American Water Works Association, 2002; Centro
Panamericano de Ingeniería Sanitaria y Ciencias del Ambiente
(CEPIS/OPS), 2004; Sawyer et al., 2001).
Neutralización de la carga. Algunas veces la carga de un coloide se
puede neutralizar por la adición de una molécula de carga opuesta, que
tiene la capacidad de adsorberse sobre el coloide. Por ejemplo, las
moléculas orgánicas con carga positiva, como el ion dodecil amoniaco,
C12H25NH+3, tienden a ser hidrófobicas y se absorben fácilmente a las
partículas coloidales con carga negativa. Las cargas opuestas de los
compuestos orgánicos y de los coloides se anulan mutuamente y se
obtiene la coagulación. Sin embargo, una sobredosis del ion dodecil
amoniaco puede revertir la carga y llevar a la formación de una partícula
estable, pero con carga positiva (American Water Works Association,
2002; Centro Panamericano de Ingeniería Sanitaria y Ciencias del
Ambiente (CEPIS/OPS), 2004; Sawyer et al., 2001).
Atrapamiento en un precipitado. Cuando se le añade a la solución
suficiente cantidad de sales de Al (III) y de Fe (III), estas se pueden
combinar con OH- para formar rápidamente precipitados de hidróxidos.
Las partículas coloidales tienen sitios de condensación donde se forman
los precipitados y, por tanto, los coloides quedan atrapados y se
sedimentan con él. Este precipitado que se ha sedimentado también
36
puede atrapar los coloides que atraviesa y arrastrarlos (Centro
Panamericano de Ingeniería Sanitaria y Ciencias del Ambiente
(CEPIS/OPS), 2004; Sawyer, McCarty, & Parkin, 2001).
Puentes entre las partículas. Los polímeros naturales y sintéticos de la
cadena larga con una carga eléctrica (polielectrólitos) puede
desestabilizar los coloides formando un puente entre un coloide de otro.
Un punto cargado en el polímero de cadena larga puede unirse o
adsorberse a un punto en un coloide, siempre que el resto de las
moléculas del polímero se extienda a la solución. Si la porción extendida
se une a otro coloide, los dos quedan entonces unidos. Comúnmente, un
polímero con carga negativa es más efectivo al momento de formar
puentes entre coloides negativos. Se piensa que esto se debe a la
interacción entre el polímero y los puntos específicos en el coloide,
algunos de los cuales pueden ser positivos aunque la carga global del
coloide sea negativa (American Water Works Association, 2002; Centro
Panamericano de Ingeniería Sanitaria y Ciencias del Ambiente
(CEPIS/OPS), 2004; Sawyer et al., 2001).
Fundamentalmente hay cuatro formas diferentes en la que puede aplicar los
mecanismos para la destrucción de coloides. Los cuatro métodos son:
Ebullición. La ebullición de una suspensión coloidal hidrófoba
usualmente conduce a la coagulación de las partículas coloidales.
Este hecho no se atribuye por lo general a una reducción del
potencial de la superficie sino a la modificación en el grado de
hidratación de las partículas, o a un incremento de las velocidades
cinéticas, permitiendo que las partículas venzan la barrera de energía
que las separa. Los químicos usualmente hierven los compuestos
para coagular los coloides, pero la ebullición por lo general es muy
costosa para ser aplicada en la práctica (Sawyer et al., 2001).
Congelación. Durante este proceso se forman cristales de agua
relativamente pura. Entonces, los coloides y los cristaloides se
37
fuerzan a una condición cada vez más concentrada. Dos efectos
aditivos hacen que la coagulación tenga lugar: a medida que la
suspensión coloidal se hace más concentrada, aumenta la posibilidad
de aumentar el contacto; al mismo tiempo, aumenta la concentración
de los electrólitos disminuyendo la capa de difusión.
El resultado neto es que se produce la coagulación del coloide. La
congelación se ha puesto como medio práctico para destruir el
carácter coloidal de los lodos que se preparan para la desecación. Sin
embargo, exceptuando quizá los climas fríos, es usualmente menos
costoso acondicionar los lodos para filtración mediante el uso de
sustancias químicas (Sawyer et al., 2001).
Adición de electrolitos. Este es el método común para
desestabilizar coloides hidrófobos. Lo hacen por el método de la
reducción de espesor de la capa doble. Una concentración suficiente
de iones monovalentes, como el NaCl, puede producir la coagulación.
Sin embargo, se ha observado que las sales con iones divalentes de
carga opuesta a la de la partícula coloidal tienen mucho mayor poder
de coagulación. Las sales con iones trivalentes de cargas opuestas
son aún más efectivas (Sawyer et al., 2001).
Precipitación mutua al agregar un coloide de carga opuesta.
Ocurre cuando se mezcla con coloides de carga opuesta. Si estos se
adicionan en cantidades esencialmente equivalentes en términos de
carga electroestática, la coagulación tiene lugar y es bastante
completa. Este método no se usa debido a los grandes volúmenes de
agua que se necesitarían para transportar el segundo coloide y por el
tiempo relativamente largo que requiere la floculación de las
dispersiones coloidales. Sin embargo, los coloides positivamente
cargados que se forman cuando se añaden al agua, sales trivalentes
de hierro y aluminio, pueden actuar en esta forma en algún grado
para la remoción de los coloides de la carga negativa (Sawyer et al.,
2001).
38
3.2. Electrocoagulación
La electrocoagulación es un proceso que separa simultáneamente metales
pesados, sólidos en suspensión, compuestos orgánicos emulsionados y otros
contaminantes, empleando la electricidad en lugar de emplear reactivos
químicos. La técnica consiste en inducir corriente eléctrica en el agua residual
a través de placas metálicas paralelas de diversos materiales, siendo los más
empleados los de hierro y aluminio (Arango Ruiz, 2005; Cañizares, García,
Lobato, & Rodrigo, 2004; Chen, 2004; Kuokkanen, Kuokkanen, Rämö, & Lassi,
2013; Piña Soberanis et al., 2011; Restrepo Mejía, Arango Ruíz, & Garcés
Giraldo, 2012).
Es la corriente eléctrica la que proporciona la fuerza electromotriz que va a
provocar las reacciones químicas que van a desestabilizar las formas en las
que los contaminantes se encuentran presentes, ya sean suspendidas o
emulsificadas. Los contaminantes presentes en el medio acuoso van a ser
partículas sólidas menos coloidales y menos emulsionadas o solubles.
Cuando esto ocurre, los contaminantes forman componentes hidrofóbicos que
se precipitan y/o flotan y se pueden remover fácilmente por algún método de
separación de tipo secundario (Arango Ruiz, 2005; Restrepo Mejía et al.,
2012).
El proceso de electrocoagulación es muy similar a un tratamiento químico
típico de coagulación. Ambos procesos tienen por objetivo la desestabilización
de los coloides contenidos en un agua y se diferencian en el modo de adición
del reactivo: en coagulación convencional el reactivo se añade como sal y en
electrocoagulación se genera a partir de un metal (Cañizares, García, Lobato,
& Rodrigo, 2004; Chen & Hung, 2010; Kortangsakul & Hunsom, 2009; Mollah
et al., 2004; Restrepo Mejía, Arango Ruíz, & Garcés Giraldo, 2012).
39
La Electrocoagulación (EC) implica varias etapas sucesivas (Moreno Casillas
et al., 2007):
1. Generación de iones metálicos.
2. Hidrólisis de iones metálicos y generación de hidróxidos y polihidróxidos
metálicos.
3. El agua también es electrolizada en una reacción paralela, produciendo
pequeñas burbujas de oxígeno en el ánodo e hidrógeno en el cátodo. Aunque
la presencia de magnetita y maghemita identificada en el lodo EC cuando se
utilizan electrodos de hierro puede sugerir la evolución del oxígeno en el
ánodo, esto no sucede. Más bien, los óxidos de hierro son hidróxidos de
hierro deshidratados, y parte de la formación de óxido se produce en la
superficie del lodo flotado. También puede ocurrir durante la filtración.
4. Desestabilización de los contaminantes, suspensión de partículas, rotura de
emulsiones y agregación de las fases desestabilizadas para formar flóculos.
Esta parte relativa a los coloides y la materia suspendida puede ser aceptada
ya que en pequeñas cantidades no son un problema para la EC (Restrepo
Mejía et al., 2012).
5. La teoría actual de EC considera que pueden ocurrir reacciones químicas y
precipitaciones durante el proceso de la EC o que otro catión y/o el ion
hidroxilo (OH-) forman un precipitado con el contaminante.
40
Las siguientes reacciones principales se producen en la celda de EC cuando se
utilizan electrodos de hierro a diferentes valores de pH (Moreno Casillas et al.,
2007).
Para pH<4
Ánodo:
Fe(s) → Fe2+ (ac) + 2e- (1)
Fe(s) → Fe3+ (ac) + 3e- (2)
Cátodo:
2H+(ac) + 2e- →H2(g)↑ (3)
EC puede considerarse como un proceso de corrosión acelerada. La velocidad
de reacción dependerá de la eliminación de [H+] a través de la evolución H2. La
reacción (3) se producirá rápidamente para valores de pH bajos (ácidos fuertes)
como se puede observar en la Figura 3.7, velocidad de corrosión en función del
pH. Para un ácido débil, la velocidad dependerá del pKa del ácido. Fe (II) y/o Fe
(III) pueden reaccionar con el anión asociado con el ácido (Moreno Casillas et al.,
2007).
41
Figura 3.7. Velocidad de corrosión del hierro en función del pH (Moreno
Casillas et al., 2007).
Para 4<pH<7
Ánodo: reacción (1) y (2)
De hecho, el hierro también experimenta hidrólisis
Fe(s) + 6 H2O(l) → Fe (H2O)4(OH)2(ac)+2H+ (ac) +2e− (4)
Fe(s) + 6 H2O(l) → Fe (H2O)3(OH)3(ac)+3H+ (ac) +3e− (5)
El hidróxido de Fe (III) comienza a precipitar el flóculo con color
amarillento.
Fe (H2O)3(OH)3 (ac) → Fe (H2O)3(OH)3 (s) (6)
También se puede formar óxido.
2Fe (H2O)3(OH)3 (ac) → Fe2O3(H2O)6 (s) (7)
Cátodo (reacción (3)):
42
2H+ (ac) + 2e- → H2(g)↑
Se produce más evolución del hidrógeno, pero [H+] proviene ahora de
ácidos débiles e hidrólisis del hierro.
Para 6<pH<9
Ánodo: reacción (1) y (2)
La precipitación de hidróxido de Fe (III) (7) continúa, y precipitación de
hidróxido de Fe (II) también ocurre presentando un flóculo verde oscuro.
Fe(H2O)4(OH)2(ac)→ Fe(H2O)4(OH)2(s) (8)
El pH para la solubilidad mínima de Fe(OH)n está en el intervalo de 7-8. El
flóculo de la EC se forma debido a la polimerización de oxihidróxidos de
hierro. La formación de óxido (hidróxidos deshidratados) se produce como
se muestra:
2Fe(OH)3 (ac)→ Fe2O3(s)+3H2O(l) (hematite, maghemite) (9)
Fe(OH)2 (ac)→ FeO(s) + H2O(l) (10)
2Fe(OH)3 (ac)→ Fe(OH)2 (s)+Fe3O4(ac)+4H2O(l) (magnetite) (11)
Fe(OH)3 (ac)→ FeO(OH)(s) + H2O(l) (goethite, lepidocrocite) (12)
Hematita, maghemita, óxido, magnetita, lepidocrocite y goethita han sido
identificados como subproductos de la EC.
Cátodo (reacción (3)):
2H+ (ac) + 2e- → H2(g)↑
Se produce más evolución del hidrógeno, pero [H+] ahora viene de la
hidrólisis del hierro y ácidos débiles.
43
Las reacciones generales son:
Fe(s) + 6 H2O(l) → Fe (H2O)4(OH)2(s)+H2(g)↑ (13)
Fe(s) + 6 H2O(l)→ Fe (H2O)3(OH)3(s) +1(1/2)H2(g) ↑ (14)
Las condiciones en toda la celda no son constantes. Las especies y el pH
están cambiando. Esto puede ilustrarse con un diagrama de Pourbaix de
hierro. El proceso parece ocurrir en una región paralela a la línea de
evolución del hidrógeno, y las condiciones cambian a la derecha como se
destaca en la Figura 3.8.
Figura 3.8. Diagrama de Pourbaix de hierro, regiones y la dirección en la
que procede el proceso EC (Moreno Casillas et al., 2007).
44
3.2.1. Factores que afectan la electrocoagulación
Son varios los factores que influyen sobre el proceso de electrocoagulación
siendo los más importantes:
Densidad de corriente: El suministro de corriente al sistema de
electrocoagulación determina la cantidad de iones de hierro Fe+2 liberados
por el electrodo. La eficiencia en la remoción y el consumo de energía se
incrementan con el aumento en la densidad de corriente, pero cuando se
emplea una corriente demasiado grande hay una transformación de
energía eléctrica en energía calorífica que va produciendo un aumento en
la temperatura del medio acuoso (Arango Ruiz, 2005; Chen & Hung, 2010;
Restrepo Mejía et al., 2012).
La energía eléctrica que se suministra a la celda electroquímica puede ser
mediante corriente alterna (CA) o corriente continua (CC) para nuestro
caso que se empleó un rectificador para poder obtener una corriente
continua, se logró que las cargas eléctricas o electrones fluyan siempre en
un mismo sentido en un circuito cerrado, moviéndose del polo negativo
hacia el polo positivo (Arango Ruiz, 2005; Chen & Hung, 2010; Restrepo
Mejía et al., 2012).
Conductividad: Un incremento en la conductividad eléctrica va a generar
un incremento en la densidad de corriente. La adición de electrolitos tales
como NaCl o CaCl2 van a generar un aumento en la conductividad del
agua residual, también se ha encontrado que los iones cloruro pueden
reducir los efectos adversos de los iones HCO3- y SO42-, pues la presencia
de iones carbonatos o sulfatos pueden conducir a la precipitación de Ca+2 y
Mg+2 sobre los electrodos que aumentaría el potencial entre estos,
decreciendo así la eficiencia de la corriente. Es recomendable para un
proceso de electrocoagulación se mantenga cantidades de Cl- del 20%
(Arango Ruiz, 2005; Chen & Hung, 2010; Restrepo Mejía et al., 2012).
45
pH: El pH influye en la eficiencia de la corriente en el proceso de
solubilidad del metal para formar hidróxidos. Se ha podido determinar de
las investigaciones que el pH varía durante el proceso de
electrocoagulación y esta variación es dependiente del material de los
electrodos y del pH inicial del agua a tratar. Se ha encontrado que el
rendimiento del proceso va a depender de la naturaleza del contaminante y
la mejor remoción se ha observado para valores de pH cercanos a 7. El pH
después de la electrocoagulación podría disminuir para aguas residuales
alcalinas pero aumentar para aguas residuales acidas efecto atribuido a la
generación de hidrógeno molecular que se origina en el cátodo (Arango
Ruiz, 2005; Chen & Hung, 2010; Restrepo Mejía et al., 2012).
Temperatura: Se ha encontrado que la eficiencia en la corriente se
incrementa inicialmente hasta llegar a 60ºC, punto donde se hace máxima
para luego decrecer. El incremento de la eficiencia con la temperatura se
debe al incremento en la actividad de destrucción de la película de óxido
de aluminio de la superficie del electrodo (Arango Ruiz, 2005; Chen &
Hung, 2010; Restrepo Mejía et al., 2012).
3.2.2. Ventajas y desventajas de la electrocoagulación
A. Ventajas de la electrocoagulación
Se generan lodos más compactos y en menor cantidad, que
involucra menor problemática de disposición de estos lodos (Arango
Ruiz, 2005; Piña Soberanis et al., 2011).
Los flóculos formados por la electrocoagulación son de mayor
volumen que los producidos químicamente, contienen menos agua
ligada, son antiácidos y más estables y pueden ser separados
rápidamente por filtración (Arango Ruiz, 2005; Piña Soberanis et al.,
2011).
Reduce los contaminantes en los cuerpos de agua (Arango Ruiz,
2005; Restrepo Mejía et al., 2012).
46
Los equipos que se emplean son simples y de fácil operación
(Arango Ruiz, 2005; Piña Soberanis et al., 2011).
Durante el tratamiento de EC, el contenido de sales no se
incrementa, como en el caso del tratamiento químico convencional
(Piña Soberanis et al., 2011).
Los contaminantes son arrastrados por las burbujas a la parte
superior donde es más fácil removerlos (Arango Ruiz, 2005; Piña
Soberanis et al., 2011).
Purifica el agua y permite el reciclaje de los lodos formados (Arango
Ruiz, 2005; Restrepo Mejía et al., 2012).
Alta efectividad en la remoción de los contaminantes (Arango Ruiz,
2005; Piña Soberanis et al., 2011).
El paso de la corriente eléctrica favorece el movimiento de las
partículas de contaminantes más pequeñas, incrementando la
coagulación (Arango Ruiz, 2005; Piña Soberanis et al., 2011).
Los costos de operación son menores comparados con los
procesos que se emplean productos químicos (Arango Ruiz, 2005;
Restrepo Mejía et al., 2012).
B. Desventajas de la Electrocoagulación
Los lodos contienen altas concentraciones del metal empleado en el
electrodo de sacrificio (Arango Ruiz, 2005; Restrepo Mejía et al.,
2012).
El costo puede ser alto en lugares donde la energía eléctrica sea
costoso (Arango Ruiz, 2005; Florencio Pérez & Cienfuegos Páucar,
2013; Restrepo Mejía et al., 2012).
Es necesario estar reponiendo los electrodos de sacrificio a una
cierta cantidad de agua tratada, para no variar mucho la eficiencia
de tratamiento (Arango Ruiz, 2005; Restrepo Mejía et al., 2012).
47
La eficiencia de remoción disminuye al formarse óxido en el ánodo
ya que se forma una capa de óxido que impide el paso de corriente
(Arango Ruiz, 2005; Restrepo Mejía et al., 2012).
3.2.3. Tipos de Electrodo
Los electrodos de sacrificio que se emplean para la electrocoagulación son
normalmente de aluminio o hierro (Arango Ruiz, 2005; Cañizares et al., 2004;
Piña Soberanis et al., 2011; Restrepo Mejía et al., 2012).
3.3. Sonicación
Es la aplicación del sonido para fines científicos o industriales. El ultrasonido
es aplicable para la degradación de contaminantes del medio ambiente y ha
recibido gran atención del mundo en las áreas de tratamiento de aguas
residuales y remediación ambiental (Gogate, Mujumdar, & Pandit, 2003; Ince,
Tezcanli, Belen, & Apikyan, 2001; Pang, Abdullah, & Bhatia, 2011; Pilli et al.,
2011; Thompson & Doraiswamy, 1999; Wan, Zhang, Gao, & Lu, 2014; Wu,
Guo, Teh, & Hay, 2013; Yadav N, 2014; Ziylan et al., 2014).
Los ultrasonidos son las ondas sonoras que tienen frecuencias superiores a
las que pueden ser percibidas por el oído humano (>16 kHz). Se clasifican en
función a su frecuencia e intensidad. Dependiendo de la frecuencia, el
ultrasonido se divide en tres categorías: ultrasonido de potencia (20 kHz -
100 kHz), ultrasonido de alta frecuencia (100 kHz-1 MHz) y ultrasonido de
diagnóstico (1 MHz – 500 MHz). Respecto a la intensidad, los valores
inferiores a 1 watt son de baja intensidad, sin embargo los de alta intensidad
son los de mayores a 10 watts (Cheng, Zhang, Xu, Adhikari, & Sun, 2014; Pilli
et al., 2011; Quesada Peñate, 2009; Wu et al., 2013).
48
3.3.1. Cavitación acústica producido por el ultrasonido
El mecanismo responsable de la degradación de los contaminantes es la
cavitación acústica. Cuando la onda ultrasónica se propaga por un medio
líquido, las partículas del líquido oscilan alrededor de su posición de
equilibrio sin que exista un movimiento del conjunto del medio. Las
variaciones de presión provocadas por la onda conducen a la aparición de
fases de compresión y expansión en el seno del medio. Estos ciclos de
presión son el origen mismo del fenómeno de cavitación acústica.
La distancia promedio entre las moléculas en el líquido variará en la
medida que las mismas oscilen alrededor de su posición de equilibrio.
Cuando la presión en un punto disminuye lo suficiente, de forma tal que se
excede la fuerza de cohesión del líquido (presión del líquido menor que su
tensión de vapor), entonces se crean burbujas de vapor o gas. Este
fenómeno se denomina cavitación. Una vez que las burbujas de cavitación
están formadas, ellas crecen, oscilan e implotan bajo la acción del campo
ultrasonoro (Adewuyi, 2005; Ince et al., 2001; Pilli et al., 2011; Thompson &
Doraiswamy, 1999; Wu et al., 2013). Es decir, La cavitación tiene tres
etapas: formación (nucleación), crecimiento rápido (expansión) durante los
ciclos hasta alcanzar un tamaño crítico y colapso violento en el líquido. Las
tres etapas se pueden observar en la Figura 3.9.
49
Figura 3.9. Formación, crecimiento e implosión de la burbuja de cavitación
en solución acuosa bajo irradiación ultrasónica (Wu et al., 2013).
El tiempo de vida de la burbujas de cavitación es del orden de los
microsegundos y la implosión violenta de las mismas genera, de manera
localizada y transitoria, altas temperaturas (5 000 °C en el interior de la
burbuja), presiones (100 MPa) y la formación de especies altamente
reactivas tales como los radicales hidroxilos (•OH), los radicales
hidroxiperoxilo (•OOH) y el peróxido de hidrógeno (H2O2) (Adewuyi, 2005;
Cheng et al., 2014; Pilli et al., 2011; Pokhrel, Vabbina, & Pala, 2016;
Quesada Peñate, 2009).
Las ecuaciones 15 - 27 muestran la sonólisis del agua y la formación de
los diferentes radicales durante la aplicación del ultrasonido (Pang et al.,
2011). El ultrasonido inducirá la división de las moléculas de agua con la
presencia de oxígeno disuelto y provoca reacciones que se producen a
continuación. Es necesario recalcar que la presencia de oxígeno disuelto
mejora las reacciones sonoquímicas. Sin embargo, no es necesario para la
sonólisis del agua, porque la oxidación sonoquímica puede proceder en
50
presencia de cualquier gas como el aire, nitrógeno, argón e hidrógeno. En
estas reacciones “)))” denota el ultrasonido (Pang et al., 2011).
H2O + ))) → H• + •OH (15)
O2 + ))) → 2O• (16)
•OH + •O → •OOH (17)
•O + H2O → 2•OH (18)
•H + O2 → •OOH (19)
•H+ •OH → H2O (20)
•OH + •OH → H2O+ •O (21)
•OOH+ •OH → O2+H2O (22)
•OH+ •OH → H2O2 (23)
2•OOH → H2O2 + O2 (24)
•H + H2O2→•OH + H2O (25)
•OH + H2O2→•OOH + H2O (26)
H• + H•→ H2 (27)
En las reacciones 15 - 19 se generan las especies reactivas. En ausencia
de cualquier soluto, los radicales primarios podrían recombinarse para
formar H2O, •O y oxígeno (O2) y luego liberarse en la solución a granel
(véase reacciones 20 - 22). El H2O2 se formará fuera de las burbujas
calientes o en la interfase fría como consecuencia de la recombinación
•OH y •OOH (véase reacciones 23 - 24). Por otro lado, las especies •H e
•OH pueden reaccionar adicionalmente con H2O2, como se muestra en las
reacciones (25) - (27). Los radicales (•OH e •OOH) también pueden llegar
51
a la interfase de burbujas de líquido y pueden pasar a una solución a
granel donde pueden reaccionar con solutos (Pang et al., 2011).
En la Figura 3.10 se muestra las tres zonas potenciales donde pueden
ocurrir las reacciones químicas bajo la influencia del ultrasonido: el núcleo
gaseoso que contiene los gases presentes en el medio y vapores de la
mezcla reaccionante; la interfase gas-líquido y el seno del líquido (Ince
et al., 2001; Thompson & Doraiswamy, 1999).
Figura 3.10. Posibles sitios de reacciones químicas en medios
homogéneos bajo influencia del ultrasonido (Ince et al., 2001).
La magnitud de las reacciones que van a tener lugar en cada zona
depende de las condiciones del sistema (frecuencia, potencia, etc) y de las
características del medio reaccionante (volatilidad, solubilidad de los
componentes).
Los contaminantes hidrofóbicos con altas presiones de vapor tienen una
tendencia marcada a difundir hacia el interior de la burbuja y reaccionar en
la interfase o en la burbuja propiamente dicha, ya sea por pirólisis u
oxidación con los radicales •OH o ambas. Por el contrario, los
contaminantes hidrofílicos, con bajas presiones de vapor, permanecerán
en el seno de líquido donde reaccionarán con los radicales •OH (Gogate
et al., 2003; Quesada Peñate, 2009).
52
3.3.2. Factores que afectan la sonicación
El mecanismo responsable de la degradación de los contaminantes es la
cavitación acústica. Asimismo, la cavitación está influenciada por
parámetros propios de la onda, como la frecuencia y la intensidad; por las
propiedades del medio y por las condiciones operatorias del sistema.
Algunos efectos se describen a continuación:
A. La intensidad ultrasonora
Se define como la relación entre la potencia de entrada al sistema y el
área de irradiación. Existe una intensidad crítica para que la cavitación
acústica pueda ocurrir, es decir los efectos beneficiosos de la cavitación no
se obtendrán a intensidades inferiores a este límite. Al incrementar la
intensidad, aumenta el tamaño de las burbujas de cavitación formadas y
entonces la energía liberada por el colapso. Existe un límite de intensidad
ultrasonora por encima de la cual la cavitación es tan fuerte que se forma
una capa de burbujas en la superficie emisora que amortigua el paso de
las ondas y disminuye el impacto de las mismas (Adewuyi, 2005; Gogate
et al., 2003; Ince et al., 2001; Pilli et al., 2011).
B. Frecuencia Ultrasónica
La frecuencia del ultrasonido tiene un efecto significativo en el proceso de
cavitación porque altera el tamaño crítico de la burbuja de cavitación. La
frecuencia utilizada va a determinar el radio de resonancia de la burbuja
formada así como el tiempo de vida de las mismas El ultrasonido de baja
frecuencia produce cavitación más violenta, que conduce a mayores
temperaturas localizadas y presiones en el sitio de cavitación. Sin
embargo, las frecuencias más altas pueden aumentar el número de
radicales libres en el sistema porque, aunque la cavitación es menos
violenta, hay más eventos de cavitación y, por lo tanto, más oportunidades
53
de producir radicales libres. Además, la vida útil reducida de la burbuja
puede aumentar la cantidad de radicales libres que son capaces de
escapar del sitio de cavitación a la mezcla en masa, donde facilitan la
reacción en masa. En el rango de frecuencias de los MHz la cavitación es
muy débil o inexistente, y generalmente la frecuencia óptima se encuentra
entre 200 y 500 kHz (Pokhrel et al., 2016; Thompson & Doraiswamy, 1999;
Wu et al., 2013).
C. Propiedades del disolvente
Las burbujas de cavitación se forman más fácil en disolventes con alta
presión de vapor, baja viscosidad y baja tensión superficial. Sin
embargo, cuanto mayor sea la presión de vapor, menos violento será el
colapso de las burbujas debido a que más vapor entra en las burbujas
(Pilli et al., 2011; Thompson & Doraiswamy, 1999; Wu et al., 2013).
D. Presencia y naturaleza de los gases disueltos
Los gases disueltos en el medio sirven como núcleos para la formación
de las burbujas de cavitación sin embargo el tipo de gas juega un papel
primordial. En general, un gas con alta relación de calor especifico
(γ=Cp/Cv) da un mayor efecto de cavitación que uno con una relación
de calor especifico bajo. Los gases monoatómicos como el helio, argón
y neón producen durante el colapso mayores temperaturas y presiones
que los gases diatómicos como el nitrógeno o el oxígeno y que los
gases triatómicos como el dióxido de carbono debido a su mayor
relación de calor específico (Pilli et al., 2011; Thompson & Doraiswamy,
1999; Wu et al., 2013). La conductividad térmica del gas tiene una
influencia significativa en la temperatura final alcanzada durante el
colapso. Un estudio realizado con gases raros demuestra que una
menor conductividad térmica del gas (Xe < Kr < Ar < Ne < He)
disminuye las pérdidas de calor hacia la fase líquida lo que aproxima el
colapso a condiciones adiabáticas perfectas. La solubilidad del gas
favorece la formación de más burbujas de cavitación pero conlleva a un
54
colapso menos violento (Ince et al., 2001; Thompson & Doraiswamy,
1999).
E. Presión externa
Cuando se aumenta la presión externa se necesitará aplicar una mayor
intensidad para inducir la cavitación, pero el colapso será más violento
(Pilli et al., 2011; Thompson & Doraiswamy, 1999; Wu et al., 2013).
F. Temperatura externa
El aumento en la temperatura de reacción ambiental ocasiona una
disminución general del efecto sonoquímico. A mayor temperatura, la
intensidad necesaria para inducir la cavitación disminuye debido al
aumento de la presión de vapor del líquido pero bajo estas condiciones
más vapor entrará a la burbuja de cavitación y el colapso será menos
violento. Es importante señalar que debido a que el colapso es menos
violento, menor cantidad de radicales se liberan al medio en el
momento de la implosión (Pilli et al., 2011; Thompson & Doraiswamy,
1999; Wu et al., 2013).
3.3.3. Tipos de ultrasónicos
Hay dos tipos y son los siguientes:
Transductor tipo Cuerna. Los de tipo “Horns” que pueden usar
transductores tipo sonda, liberan una gran cantidad de energía
directamente a la mezcla reaccionante (Thompson & Doraiswamy, 1999).
Baño ultrasónico. Fueron originalmente concebidos para propósitos de
limpieza pero son ampliamente usados en las investigaciones
sonoquímicas debido a su disponibilidad y bajo costo. Normalmente este
tipo de reactores posee uno o varios transductores en la parte inferior del
mismo y existe un líquido de acoplamiento entre el baño y el recipiente de
reacción. (Thompson & Doraiswamy, 1999).
55
3.3.4. Ventajas y desventajas de la sonicación
A. Ventajas (González-Labrada et al., 2010; Wu et al., 2013)
Los costos de operación son menores comparados con los
procesos que se emplean productos químicos.
No requiere la adición de oxidantes o catalizador.
Fácil de comprar y bajo costo.
Reduce la contaminación de colorantes.
Uso combinado con otros procesos para disminuir los costos del
proceso.
Buena degradación de fármacos.
Los equipos que se emplean son simples y de fácil operación.
B. Desventajas
La dificultad para mantener la temperatura de la mezcla
reaccionante constante pues el líquido de acoplamiento tiende a
calentarse durante el funcionamiento del reactor (Thompson &
Doraiswamy, 1999).
Los transductores tipo sonda poseen varios inconvenientes, el
primero es que si bien la intensidad cerca de la fuente transmisora
es importante, en la medida que nos alejamos de la misma la
intensidad disminuye exponencialmente hasta desvanecerse a una
distancia de aproximadamente 2 - 5 cm, dependiendo de la
potencia máxima de entrada del equipo y de la frecuencia (Gogate,
2008).
En el tipo sonda, la erosión de la fuente transmisora que puede
contaminar el medio reaccionante. Se recomiendan
fundamentalmente para estudios a escala de laboratorio
(Thompson & Doraiswamy, 1999).
CAPÍTULO IV
4. DESARROLLO EXPERIMENTAL
El experimento involucró dos procesos, el proceso de sonicación seguido del proceso
de electrocoagulación. Las muestras fueron recolectadas de la Planta de
Tratamientos de Aguas Residuales de San Juan de Miraflores (PTAR-SJM), antes del
proceso de cloración. Luego fueron trasladados al laboratorio Certinim S.A., en donde
después de aplicar la sonicación y electrocoagulación se analizaron las muestras. Es
necesario recalcar que el laboratorio Certimin S.A. se encuentra ubicada en la Av.
Vega Nro 845 en el distrito de San Juan de Miraflores, provincia de Lima y
departamento de Lima; el cual se encuentra acreditado por el Instituto Nacional de
Calidad – INACAL (ver anexo A).
Figura 4.1. Planta de Tratamiento de Aguas Residuales Domésticas - San Juan
de Miraflores (PTAR-SJM).
57
A continuación, en la Tabla 4.1 se muestra las fechas de muestreo y el volumen
recolectado.
Tabla 4.1. Fechas de muestreo en la Planta de Tratamiento de Aguas Residuales
Domésticas - San Juan de Miraflores (PTAR-SJM) y el volumen recolectado.
Muestreo Fecha Volumen recolectado
(L)
Primer muestreo 25/11/15 60
Segundo muestreo 16/12/15 60
Tercer muestreo 06/07/16 100
Cuarto muestreo 27/07/16 200
Fuente: Elaboración propia
58
En las Figuras 4.2 a 4.5 se observan las fotografías de los días de muestreo,
ubicados en la PTAR-SJM, antes de las instalaciones de cloración, ver Figura 4.40.
Figura 4.2. Primer muestreo del efluente de la Planta de Tratamiento de Aguas
Residuales Domésticas - San Juan de Miraflores (PTAR-SJM), realizado el 25/11/2015.
Figura 4.3. Segundo muestreo del efluente de la Planta de Tratamiento de Aguas
Residuales Domésticas - San Juan de Miraflores (PTAR-SJM), realizado el 11/01/2016.
Figura 4.4. Tercer muestreo del efluente de la Planta de Tratamiento de Aguas
Residuales Domésticas - San Juan de Miraflores (PTAR-SJM), realizado el 06/07/16.
Figura 4.5. Cuarto muestreo del efluente de la Planta de Tratamiento de Aguas
Residuales Domésticas - San Juan de Miraflores (PTAR-SJM), realizado el 27/07/2016.
60
4.1. Metodología
4.1.1. Influencia de la sonicación por lotes
Para analizar los efectos de la sonicación se trabajó a una frecuencia
constante de 35 kHz y a los tiempos de 10, 20, 30, 40 y 50 minutos.
Tabla 4.1. Proceso de sonicación a 35 kHz aplicado al efluente de PTAR - SJM.
Tiempo (min)
Aceites y grasa (mg/l)
DBO5 (mg/l
DQO (mg/l)
pH STS
(mg/l)
Coliformes fecales
NMP/100ml
0 Parámetros a analizar
Co Co Co Co Co Co
10
20
30
40
50
Co: concentración inicial
4.1.2. Influencia de la sonicación por lotes y la electrocoagulación por lotes.
Proceso de electrocoagulación por lotes aplicado a la mejor respuesta del
proceso de sonicación, empleando electrodos de hierro. Luego, se determina
la densidad de corriente óptima.
61
Tabla 4.2. Proceso de sonicación (10 min) a 35 kHz y electrocoagulación aplicado al
efluente de PTAR.- SJM.
Tiempo óptimo de respuesta
(min)
Aceites y grasa (mg/l)
DBO (mg/l)
DQO (mg/l)
pH STS
(mg/l)
Coliformes termotolerables
NMP/100ml
0 Parámetros a analizar
Co Co Co Co Co Co
Sonicación a una frecuencia de 35 kHz
t óptimo de
sonicación
Electrocoagulación a una densidad de corriente de 100,3 A/m2
10
20
30
40
Electrocoagulación a una densidad de corriente de 150,4 A/m2
10
20
30
40
Electrocoagulación a una densidad de corriente de 200,5 A/m2
10
20
30
40
Co: concentración inicial
4.1.3. Influencia de la sonicación por lotes y electrocoagulación a flujo
continuo.
Proceso de electrocoagulación a flujo continuo aplicado a la mejor respuesta
del proceso de sonicación, empleando electrodos de hierro. Para el proceso
62
de electrocoagulación a flujo continuo se utilizó 3 valores (0,18; 0,23 y 0,41
l/min) y a una densidad de corriente constante (100,3 A/m2).
Tabla 4.3. Proceso de sonicación (10 min) a 35 kHz y electrocoagulación a flujo continuo
aplicado al efluente de PTAR- SJM.
Tiempo (min)
Aceites y grasa (mg/l)
DBO (mg/l)
DQO (mg/l)
pH STS
(mg/l)
Coliformes fecales
NMP/100 ml
0 Parámetros a analizar
Co Co Co Co Co Co
Sonicación a una frecuencia de 35 kHz, por lotes.
10
Electrocoagulación a un caudal de Q1=0,18 l/min
15
30
45
60
Electrocoagulación a un caudal de Q2=0,23 l/min
15
30
45
60
Electrocoagulación a un caudal de Q3=0,41 l/min
15
30
45
60
Co: concentración inicial
63
4.1.4. Influencia de la electrocoagulación por lotes a diferentes densidades
de corriente
Proceso de electrocoagulación, por lotes, empleando electrodos de hierro.
Para este proceso se utilizó 3 densidades de corriente (100,3; 150,4 y
200,5 A/m2).
Tabla 4.4. Proceso de electrocoagulación a diferentes densidades de corriente.
Tiempo
(min)
Aceites y
grasa
(mg/l)
DBO
(mg/l)
DQO
(mg/l) pH
STS
(mg/l)
Coliformes fecales
NMP/100ml
0 Co Co Co Co Co Co
100,3 A/m2
30
150,4 A/m2
30
200,5 A/m2
30
Co: concentración inicial
64
4.2. Cálculos
Porcentajes de remoción
Para el cálculo del porcentaje de remoción se utilizó la siguiente fórmula:
% 𝑹𝒆𝒎𝒐𝒄𝒊ó𝒏 =𝑪𝒐 − 𝑪𝟏
𝑪𝒐 𝒙 𝟏𝟎𝟎 (𝟒. 𝟏)
Donde 𝑪𝒐 y 𝑪𝟏 son las concentraciones del contaminante antes y
después del tratamiento, respectivamente.
Cantidad de material de electrodo disuelto
Para el cálculo de la cantidad de material de electrodo disuelto se utilizó la
siguiente formula:
𝒘 =𝒊𝒙𝒕𝒙𝑴
𝑵𝒙𝒇 (𝟒. 𝟐)
Donde 𝒘 es la cantidad de material de electrodo disuelto (g /cm2), 𝒊 la
densidad de corriente (A/cm2), 𝒕 el tiempo en s; 𝑴 la masa molar relativa
del electrodo, 𝑵 es el número de electrones en la reacción de
oxidación/reducción, y 𝒇 es la Constante de Faraday, 96 500 C/mol.
Energía consumida en el reactor
Para el cálculo de energía consumida del reactor se utilizó la siguiente
fórmula:
𝑬 =𝑽 ∗ 𝑰 ∗ 𝒕
𝟏𝟎𝟎𝟎 (𝟒. 𝟑)
Donde 𝑬 es la energía consumida (kWh), 𝑽 es el voltaje promedio (V), 𝑰
es intensidad de corriente (A) y 𝒕 es el tiempo en (h).
65
Eficiencia de la corriente
Referida a la disolución de los ánodos de hierro, la eficiencia de la
corriente es igual a rendimiento eléctrico. La eficiencia de la corriente
total, corresponde a la cantidad de hierro total oxidado, se puede
determinar mediante la siguiente fórmula:
% 𝑬𝒇𝒊𝒄𝒊𝒆𝒏𝒄𝒊𝒂 =𝒎𝒂𝒔𝒂 𝒆𝒙𝒑𝒆𝒓𝒊𝒎𝒆𝒏𝒕𝒂𝒍
𝒎𝒂𝒔𝒂 𝒕𝒆ó𝒓𝒊𝒄𝒂 𝒙 𝟏𝟎𝟎 (4.4)
66
4.3. Diagrama de flujo de la sonicación por lotes.
Repetir los pasos
para una sonicación
de 20, 30, 40 y
50 minutos
Fin
Descargar el efluente tratado en una
jarra para decantación
Dejar por 5 minutos para la decantación y
proceder con la operación de filtrado
Programar el sonicador a 10 minutos
Apagar el sonicador
Conectar el sonicador
Inicio
Limpiar las paredes internas y la
tapa del sonicador
Uniformizar todo el efluente mediante la
agitación
Cargar el efluente
Prender el sonicador
Lavar y secar el Sonicador
Enviar la muestra a laboratorio
67
4.4. Diagrama de flujo de la electrocoagulación por lotes.
Acondicionamiento de los
electrodos de Fe y el reactor
Colocar los electrodos en el reactor
Conectar el reactor con la fuente
de alimentación
Encender la fuente de alimentación y
mantener la corriente a 8 A (100,3 A/m2)
para un tiempo de 30 minutos
Descargar el efluente tratado en una jarra
Dejar por 5 minutos para la decantación y proceder
con la operación de filtrado
Fin
Repetir los pasos
para una corriente de
12 A (150,4 A/m2) y
16 A (200,5 A/m2)
Enviar las muestras al laboratorio
Inicio
Adicionar al reactor
Agitar el efluente de la
PTAR-SJM
68
4.5. Diagrama de flujo del proceso secuencial de sonicación y
electrocoagulación por lotes.
Acondicionamiento de los
electrodos de Fe y del reactor
Colocar los electrodos en el reactor
Conectar el reactor con el rectificador
Uniformizar todo el efluente tratado
por sonicación a 10 min (tiempo
óptimo)
Adicionar el efluente que fue sonicado
al reactor de EC
Encender la fuente de alimentación y
mantener la corriente a 8 A (100,3 A/m2) para
un tiempo 10, 20, 30, 40 y 50 min
Descargar el efluente tratado en una jarra
Dejar por 5 minutos para la decantación y
proceder con la operación de filtrado
Fin
Repetir los pasos
para una corriente de
12 A (150,4 A/m2) y
16 A (200,5 A/m2)
Enviar la muestra a laboratorio
Inicio
69
4.6. Diagrama de flujo del proceso secuencial de sonicación por lotes
y electrocoagulación a flujo continuo.
Inicio
Acondicionamiento de los
electrodos de Fe y del reactor
Colocar los electrodos en el reactor
Conectar el reactor con la fuente
de alimentación
Agitar el efluente del tanque que
ha sido sonicado por 10 minutos,
luego abrir la válvula de salida
Con la válvula del tanque, fijar el
1erflujo de salida y encender la
fuente de alimentación
Encender la fuente de alimentación
Fijar la intensidad de corriente con la cual
trabajo mejor (8 A; 100,3 A/m2) el sistema
en lotes
Tomar muestras en 15, 30, 45 y 60
minutos y al final apagar y
desconectar la fuente de alimentación
Descargar el efluente tratado en
una jarra abriendo la válvula inferior
del reactor y dejarlo que decante
por 5 minutos
Fin
Filtrar la muestra con la
bomba de vacío y enviar para
su análisis
Lavar y pesar los electrodos
Repetir el proceso fijando
un segundo flujo y luego
un tercer flujo de
alimentación
70
4.7. Materiales experimentales
Para los procesos de sonicación y electrocoagulación se utilizaron los
siguientes equipos y materiales:
A. Reactor de sonicación
Para el proceso de sonicación se empleó un sonicador VWR Symphony
97043-966, en la siguiente tabla se observa sus características.
Tabla 4.2. Características del reactor de sonicación.
Modelo: 97043-966
Dimensiones: 0,3 x 0,15 x 0,15 m
Capacidad: 5,7 L
Frecuencia: 35 kHz, constante
Rango de HR de Operación: 0 – 90 %
Rango de Temperatura de Operación: 5 – 40 ºC
Figura 4.6. Sonicador VWR Symphony 97043-966.
B. Reactores de electrocoagulación
Para los sistemas por lotes y continuos se utilizó dos reactores; es decir, uno
para el sistema por lotes y otro para el sistema continuo. El material de ambos
fue acrílico transparente de 0,0095 m de espesor. Los electrodos utilizados en
71
ambos sistemas fueron de hierro (Fe) industrial. El ánodo (Fe) se conectó al
lado positivo de la fuente de corriente continua y el cátodo (Fe) se conectó al
polo negativo del reactor.
Sistema por lotes o discontinuo
Para este sistema se utilizó un reactor de 5 L de volumen útil y de forma
paralelepípeda. El reactor está dividido en seis semiceldas con una
separación entre ranuras para los electrodos de 0,03 m. Asimismo, en total
consta de cinco (05) electrodos: dos (02) ánodos y tres (03) cátodos. Los
electrodos tienen como dimensiones: 0,133 m de ancho x 0,150 m de largo
x 0,0015 m de espesor. Los ánodos (Fe), al ubicarse entre los cátodos
(Fe), presentan una superficie de contacto global de 0,0798 m2, véase la
Figura 4.7.
Figura 4.7. Reactor de electrocoagulación para el sistema por lotes.
Sistema continúo
Para el sistema continuo se utilizó el reactor que se muestra en la Figura
4.8. Este reactor tiene la capacidad de 5 L de volumen útil. Está dividido en
6 semi-celdas con una separación entre ranuras de 0,03 m. La base del
reactor tiene una inclinación de 10°, la cual sirve para la acumulación de
72
los sólidos precipitados durante el proceso. El reactor en total tiene cinco
(05) electrodos de hierro (Fe): dos (02) ánodos y tres (03) cátodos. Los
electrodos tienen como dimensiones: 0,133 m de ancho; 0,150 m de largo
y 0,0015 m de espesor. Los ánodos, al ubicarse entre los cátodos,
presentan una superficie de contacto global de 0,0798 cm2.
(a)
(b)
Figura 4.8. Reactor de electrocoagulación para el sistema continúo. (a)
vista lateral, (b) vista superior.
73
C. Fuente de alimentación o de poder
Fuente de alimentación de corriente continua, cuya potencia es de 250 W,
con rango de voltaje 0-10 V y corriente de 0 a 10 A. Ver la Figura 4.9.
Figura 4.9. Fuente de alimentación, vista frontal.
D. Sistema de filtración
Bomba de vacío
Para el sistema de filtración se empleó la Bomba marca DUCATTI, en el
siguiente cuadro se observa sus características. Véase la Figura 4.10.
Tabla 4.3. Características de la bomba de vacío.
Modelo 1C – 1,5A
Presión 10 Pa
Voltaje 220 V-50/60 Hz
Potencia ¼ HP
74
Embudo Buchner
Pieza de cerámica con 0,12 m de diámetro. Además para la filtración se
utilizó papel de filtro de paso medio, ver la Figura 4.10.
Figura 4.10. Sistema de filtración, Bomba Marca Ducatti y embudo
Buchner.
4.8. Procedimiento experimental
En primer lugar, se caracterizó el efluente de la planta de tratamiento aguas
residuales de San Juan de Miraflores, para elegir que parámetros evaluar. En
la caracterización se evaluó todos los parámetros posibles. Los parámetros
que se evaluaron fueron considerando de donde provienen las aguas y para
verificar que no hay ningún efluente industrial o minero. En la Tabla 4.4 se
observa los resultados obtenidos en la caracterización realizada el 25 de
noviembre del 2015, asimismo, en la Tabla 4.5 se observa las concentraciones
iniciales durante toda la etapa de evaluación del efluente.
Tabla 4.4. Parámetros de caracterización del efluente de partida de la planta de
tratamiento de aguas residuales domésticas, San Juan de Miraflores, del 25 de
noviembre del 2015 (ver Anexo B, Informe de ensayo del Lab. Certimin).
Parámetro Unidades LD Efluente
Parámetros de campo
Temperatura °C --- 23
pH Unidad pH --- 7,3
Parámetros
físicoquímicos
Turbidez NTU 1 14,6
STS mg/L 5 40
Metales totales
Ag mg/L 0,002 <0,002
Al mg/L 0,02 0,08
As mg/L 0,008 <0,008
Ba mg/L 0,001 0,02
Be mg/L 0,0003 <0,0003
Bi mg/L 0,02 <0,02
B mg/L 0,003 0,283
Ca mg/L 0,05 90,02
Cd mg/L 0,001 <0,001
Ce mg/L 0,02 <0,02
Co mg/L 0,002 0,002
Cr mg/L 0,004 <0,004
Cu mg/L 0,003 <0,003
Fe mg/L 0,01 0,12
K mg/L 0,01 30,44
Li mg/L 0,004 0,094
Parámetro Unidades LD Efluente
Metales totales
Mg mg/L 0,02 11,33
Mn mg/L 0,001 0,039
Mo mg/L 0,004 <0,004
Na mg/L 0,01 121,67
Ni mg/L 0,002 0,018
P mg/L 0,06 14,48
Pb mg/L 0,01 <0,01
Sb mg/L 0,008 <0,008
Se mg/L 0,02 <0,02
SiO2 mg/L 0,02 15,5
Sn mg/L 0,007 0,033
Sr mg/L 0,0007 0,7938
Ti mg/L 0,01 <0,01
Tl mg/L 0,05 <0,05
V mg/L 0,003 <0,003
Zn mg/L 0,005 0,019
Parámetros orgánicos
DBO5 mg/L 2 25,77
DQO mg/L 10 81,77
Aceites y grasas mg/L 0,5 17,19
Parámetros microbiológicos
Coliformes Fecales NMP/100mL 1,8 7900
Coliformes Totales NMP/100mL 1,8 23000
Fuente: Informe de ensayo DIC1003.R15, acreditado por el INACAL
Tabla 4.5. Componentes del efluente de la Planta de Tratamiento de Aguas Residuales – San Juan de Miraflores, durante toda la etapa de
evaluación (ver Anexo B, Informe de ensayo del Lab. Certimin).
Fuente: Informes de ensayo DIC1003.R15, DIC1258.R15, JUL1055.R16 y AGO1027.R16.
Fecha T(°C) Aceites y
grasa (mg/L)
DBO
(mg/L)
DQO
(mg/L) pH
STS
(mg/L)
CF
(NMP/100mL)
25/11/15 23 17,19 25,77 81,77 7,3 40 7 900
16/12/15 26,1 <0,50 27,02 114,85 7,6 24 33 000
06/07/16 18,5 <0,50 18,47 84,07 7,9 13 940
29/07/16 18,0 <0,50 28,88 69,43 7,9 <5 330
LMP <35 20 100 200 6,5-8,5 150 10 000
78
4.8.1. Proceso de sonicación
A. Primero, se procede a limpiar las paredes internas y la tapa del
sonicador con agua destilada, con la finalidad de evitar
cualquier tipo de contaminación cruzada.
B. Una vez limpio el sonicador, se realiza el llenado con el efluente
a tratar.
Figura 4.11. Reactor de sonicación conteniendo el efluente de
la planta de tratamiento de aguas residuales de San Juan de
Miraflores.
C. Se configura el sonicador para un tratamiento de 10 min.
D. Se da inicio a la sonicación.
79
Figura 4.12. Proceso de sonicación a 35 kHz aplicado al
efluente de salida PTAR-SJM, programado a 10 minutos de
sonicación.
E. Al concluir el tiempo programado, se apaga el sonicador y se
desconecta la corriente.
(a) (b)
Figura 4.13. (a) Antes de la sonicación. (b) Después de la
sonicación de 10 minutos.
F. Después, el agua sonicada se vierte a una jarra para su
decantación (5 minutos).
G. Lavar y secar el sonicador para los próximos procesos.
80
H. Después de los 5 minutos de decantación, proceder a realizar la
filtración. El sistema de filtración consta de un Kitazato, embudo
buchner y bomba de vacío.
Figura 4.14. Sistema de filtración.
I. Finalmente, verter y acondicionar el agua procesada para el
envió al laboratorio.
J. Llenar el sonicador con el efluente a tratar.
K. Repetir los pasos C, D, E, F, G y H para una sonicación de 20,
30, 40 y 50 minutos.
L. Acondicionar el efluente sonicado para el envio al laboratorio.
81
Figura 4.15. Proceso de Sonicación
4.8.2. Proceso de secuencial de sonicación y electrocoagulación por lotes
A. Se inicia con el lijado y limpieza de las placas de hierro (Fe).
Realizar el lavado con agua destilada y secar. Luego pesar los
electrodos.
B. Una vez limpio los electrodos, colocar en el reactor como se
muestra en la Figura 4.16.
82
Figura 4.16. Fuente de corriente y reactor por lotes.
C. Realizar las conexiones a la fuente de alimentación, polo positivo
para el tubo que conecta a los ánodos y polo negativo que
conecta a los cátodos.
D. Una vez realizado todas las conexiones, proceder a llenar con el
efluente tratado a 10 minutos de sonicación (tiempo óptimo).
83
Figura 4.17. Proceso por lotes, reactor de electrocoagulación
con efluente previamente sonicado.
E. Para el inicio de proceso de electrocoagulación, se prende la
fuente de alimentación colocando el mando de posición 1
(encendido).
Figura 4.18. Proceso por lotes, reactores de electrocoagulación
y sonicación.
84
F. Luego, se fija la intensidad con el dial de la fuente. Regular el
dial hasta observar un burbujeó o inicio de una reacción.
Después controlar el dial hasta que se estabilice.
G. Al concluir el tiempo fijado de electrocoagulación de cada
ensayo. Colocarle el dial a cero (apagado).
H. Descargar el efluente tratada por electrocoagulación en una
jarra. Tener cuidado evitando que se dividan los flóculos
formados.
I. Dejar 5 minutos en la jarra para la decantación.
J. Lavar y secar el reactor de electrocoagulación para los
siguientes procesos.
K. Después de decantar, proceder con el proceso de filtrado.
L. Finalmente, proceder envasar y enviar las muestras al
laboratorio para su análisis.
4.8.3. Proceso secuencial de sonicación por lotes y electrocoagulación a
flujo continuo
Para el sistema de flujo continuo se procedió a tratar todo el efluente a
10 min de sonicación (lotes), para obtener un volumen el cual garantice el
flujo continuo para los 3 caudales elegidos.
A. Lijar ambas caras placas de las placas de hierro y luego lavar con
agua destilada, secar y registrar el peso inicial.
B. Luego, colocar los electrodos como se muestra en la Figura 4.19.
85
Figura 4.19. Proceso continuo, reactor de
electrocoagulación.
C. Después, conectar la fuente de alimentación, polo positivo se
conecta a los ánodos y el polo negativo se conecta a los cátodos.
D. Durante todo el proceso continuo, agitar permanentemente el
efluente almacenado en el tanque (tratado previamente por
sonicación).
86
Figura 4.20. Proceso continuo, tanque de mezcla.
E. Abrir la válvula de salida del tanque de almacenamiento hasta lograr
sumergir completamente las placas de hierro en el reactor.
F. Con la válvula de salida del tanque se fija el primer flujo del efluente
procesado para la corrida, luego abrir la válvula de descarga del
reactor.
G. Luego de establecer el flujo, prender la fuente de alimentación
colocando el control de mando en la posición 1 (encendido).
H. Inmediatamente, fijar la intensidad con la cual trabajo mejor el
sistema en lotes.
87
Figura 4.21. Proceso continuo, fuente de corriente a una
intensidad de 8 A.
I. Tomar muestra en 15, 30, 45 y 60 minutos. Al finalizar la última
corrida electroquímica. Apagar y desconectar la fuente de
alimentación.
J. Con cuidado, verter el efluente tratado a una jarra y dejarlo que
decante por 5 minutos.
K. Proceder a filtrar el efluente tratado para separar los coágulos
formados por el proceso. Para el filtrado utilizar la bomba de vacío.
88
Figura 4.22. Proceso continuo, papel filtro después de la
filtración.
L. Luego, filtrar la muestra utilizando la bomba de vacío y enviar a su
análisis.
Figura 4.23. Proceso continuo, residuos de la decantación.
M. Lavar y secar el reactor del proceso de electrocoagulación para los
siguientes ensayos experimentales.
N. Establecer dos flujos más, y repetir los procedimientos G, H, I, J, K,
L y M.
89
4.9. Observaciones del desarrollo experimental.
4.9.1. Proceso de sonicación
A. El efluente procedente de la PTAR - SJM es de color verde claro y
se observó partículas suspendidas.
Figura 4.24. Agua residual procedente del efluente de la PTAR-
SJM.
B. Al aplicar la sonicación, se observó la formación de pequeñas
burbujas, un incremento en la temperatura y el pH se mantiene
constante.
C. Luego de sonicar, en el efluente se observó la formación de
sedimentos de color verde en la parte del fondo del recipiente, ver
Figura 4.25.
90
Figura 4.25. Formación de sedimentos después de la sonicación.
D. Luego de filtrar se observa en el papel filtro la formación de sólidos
pequeños de color verde, ver Figura 4.26.
Figura 4.26. Flóculos obtenidos después del proceso de filtración.
91
E. Luego de filtrar el efluente tratado, se observa un cambio en la
coloración a verde más claro.
Figura 4.27. Muestras enviadas al laboratorio, después del
tratamiento de sonicación.
4.9.2. Proceso de electrocoagulación aplicando la mejor respuesta del
proceso de sonicación.
A. Para el proceso de electroagulación, se trabajó con el tiempo
óptimo de sonicación; sin embargo, es necesario recalcar que a
diferencia del primer día de muestreo. El efluente de la PTAR -
SJM es de color marrón claro.
92
Figura 4.28. Agua residual procedente del efluente de la PTAR
- SJM.
B. En el proceso de filtración, se observó poca formación de
sedimentos en el papel filtro.
93
Figura 4.29. Filtración después del proceso de
electrocoagulación.
C. Una vez iniciado el proceso de electrocoagulación, se logró
observar un burbujeo intenso en los cátodos.
Figura 4.30. Formación de burbujeo en los cátodos.
94
D. Durante el proceso de electrocoagulación se puede observar la
formación de dos fangos, un fango flotante y un fango
sedimentable de color marrón y partes verdosas.
(a) (b)
Figura 4.31. Formación de coágulos y flóculos durante la
electrocoagulación por lotes. (a) Muestra antes de la
electrocoagulación. (b) Formación de fango flotante y
sedimentable.
Figura 4.32. Vista superior de la formación del fango flotante de
color marrón con partes verdosas.
95
4.9.3. Proceso secuencial por lotes y electrocoagulación a flujo continuo
A. La ubicación del tanque a una cierta altura ayudó a que el
efluente fluyera fácilmente, en total el sistema contaba con tres
válvulas, uno a la salida del tanque, otro a la salida del reactor
y el ultimo en el compartimiento de salida para los sólidos
sedimentables.
Figura 4.33. Proceso de electrocoagulación, flujo continuo.
B. Como se observa en la Figura 4.34, gracias al separador de
sólidos, ubicado al final reactor, la muestra no contenía muchos
flóculos, por lo que la filtración se hizo con facilidad.
96
Figura 4.34. Separador de sólidos, reactor de
Electrocoagulación a flujo continuo.
C. Como se observa en la Figura 4.35, gracias al separador de
sedimentos, ubicado en la parte de abajo del reactor, la
separación de los sólidos sedimentables fue sencillo, de
manera adicional el diseño ayuda a la limpieza del reactor.
Figura 4.35. Separador de sedimentos, reactor de
Electrocoagulación a flujo continuo.
97
4.10. Resultados de los procesos experimentales de los sistemas de
electrocoagulación y sonicación
Como se muestra en la Tabla 4.1, se realizaron cuatro muestreos en la Planta
de tratamiento de aguas residuales domésticas – San Juan de Miraflores. Con
el primer muestreo (noviembre del 2015), se caracterizó el efluente y se
determinó el tiempo óptimo de sonicación. Con el volumen recolectado en el
segundo muestreo (diciembre del 2015), se caracterizó nuevamente para
observar si las concentraciones del efluente varian con el tiempo. Con el tercer
muestreo (julio del 2016), se determinó la densidad de corriente óptima
(electrocoagulación) y con el cuarto muestreo (julio de 2016), se determinó el
caudal óptimo (electrocoagulación).
En la Tabla 4.6 se muestra la caracterización del primer (noviembre del 2015)
y segundo (diciembre del 2015) muestreo. Además, en la Tabla 4.7 se observa
la influencia de la sonicación en el efluente del primer muestreo (noviembre
2015) Luego, en la Tabla 4.8 se observa la influencia de la sonicación y
electrocoagulación, ambos por lotes, en el efluente del tercer muestreo (julio
del 2016). A una parte del volumen recolectado en el tercer muestreo (20 L),
solo se aplicó la electrocoagulación, los resultados se muestran en la Tabla
4.9. Luego, en la Tabla 4.10 se muestra la influencia de la sonicación, por
lotes, y electrocoagulación, flujo continuo, al efluente del cuarto muestreo (julio
2016).
Tabla 4.6 La caracterización del efluente de la planta de tratamiento de aguas
residuales domésticas, San Juan de Miraflores (Ver anexo B, Informes de ensayo
del Lab. Certimin).
Parámetro Unidades LD 25/11/2015 16/12/2015
Parámetros de campo
Temperatura °C --- 23 26,1
pH Unidad pH --- 7,3 7,6
Parámetros físicoquímicos
Turbidez NTU 1 14,6 44,8
STS mg/l 5 40 24
Metales totales
Ag mg/l 0,002 <0,002 <0,002
Al mg/l 0,02 0,08 0,04
As mg/l 0,008 <0,008 <0,008
Ba mg/l 0,001 0,02 0,02
Be mg/l 0,0003 <0,0003 <0,0003
Bi mg/l 0,02 <0,02 <0,02
B mg/l 0,003 0,283 0,263
Ca mg/l 0,05 90,02 82,59
Cd mg/l 0,001 <0,001 0,001
Ce mg/l 0,02 <0,02 <0,02
Co mg/l 0,002 0,002 0,003
Cr mg/l 0,004 <0,004 <0,004
Cu mg/l 0,003 <0,003 0,005
Fe mg/l 0,01 0,12 0,13
K mg/l 0,01 30,44 32,11
Li mg/l 0,004 0,094 0,107
Mg mg/l 0,02 11,33 10,63
Parámetro Unidades LD 25/11/2015 16/12/2015
Metales totales
Mn mg/l 0,001 0,039 0,036
Mo mg/l 0,004 <0,004 <0,004
Na mg/l 0,01 121,67 142,00
Ni mg/l 0,002 0,018 0,013
P mg/l 0,06 14,48 13,19
Pb mg/l 0,01 <0,01 <0,01
Sb mg/l 0,008 <0,008 <0,008
Se mg/l 0,02 <0,02 <0,02
SiO2 mg/l 0,02 15,5 19,27
Sn mg/l 0,007 0,033 <0,007
Sr mg/l 0,0007 0,7938 0,8146
Ti mg/l 0,01 <0,01 <0,01
Tl mg/l 0,05 <0,05 <0,05
V mg/l 0,003 <0,003 <0,003
Zn mg/l 0,005 0,019 0,019
Parámetros orgánicos
DBO5 mg/l 2 25,77 27,2
DQO mg/l 10 81,77 114,85
Aceites y
grasas mg/l 0,5 17,19 <0,5
Parámetros microbiológicos
Coliformes
Fecales NMP/100ml 1,8 7 900 33 000
Coliformes
Totales NMP/100ml 1,8 23 000 79 000
Tabla 4.7. Proceso de sonicación a 35 kHz aplicado al efluente de salida PTAR-SJM, ver Anexo B (Informes de ensayo de Lab. Certimin).
Tiempo
(min) T(°C)
Aceites
y grasa
(mg/l)
DBO
(mg/l)
DQO*
(mg/l) pH
STS
(mg/l)
Coliformes
fecales
NMP/100 ml(1)
0 23 17,19 25,77 114,85 7,3 40 7 900
10 27 1,48 20,91 102,41 7,4 24 17 000
20 31 0,93 20,59 100,13 7,3 22 13 000
30 34 0,60 21,81 101,17 7,4 17 22 000
40 35 0,71 19,11 101,38 7,4 16 33 000
50 36 0,62 20,84 100,85 7,4 17 11 000
Fuente: Informes de ensayo DIC1003.R15 y DIC 1258.R15(*)
(1) Los CF, bajo ciertas condiciones, tienen un rango de temperatura de crecimiento hasta los 45°C (Gómez et al., 1999; Prescott Harley, 2002).
Tabla 4.8. Proceso de electrocoagulación aplicado a la mejor respuesta del proceso de sonicación (Anexo B, Lab. Certimin).
Tiempo (minutos) T (°C) Aceites y
grasas (mg/L) DBO5 (mg/L) DQO (mg/L) pH STS (mg/L)
Coliformes fecales
(NMP/100ml)
0 18,5 <0,50 18,47 84,07 7,9 13 940
Sonicación Frecuencia: 35 kHz
10 22,2 <0,50 15,37 84,52 7,9 11 490
Electrocoagulación Densidad de corriente : 100,3 A/m2
10 19,6 <0,05 6,29 60,75 8,1 91 290
20 19,4 <0,05 3,75 79,25 8,2 84 230
30 20,4 <0,05 3,16 37,93 8,3 45 13
40 22,6 <0,05 3,27 26,92 8,4 33 <1,8
Electrocoagulación Densidad de corriente : 150,4 A/m2
10 20 <0,05 3,34 35,44 8,3 67 2
20 21,2 <0,05 3,28 29,25 8,5 70 <1,8
30 21,3 <0,05 3,58 32,2 8,8 76 4,5
40 21,5 <0,05 2,4 10,47 9,1 33 <1,8
Electrocoagulación Densidad de corriente : 200,5 A/m2
10 21 <0,05 10,65 65,23 8,7 66 2,2
20 22 <0,05 2,83 19,43 8,8 65 <1,8
30 19,5 <0,05 4,02 48,09 9,1 86 <1,8
40 22,7 <0,05 5,53 21,53 9,4 38 <1,8
Tabla 4.9. Proceso aplicando solo la electrocoagulación (ver anexo B, informes de ensayo Lab. Certimin)
Tiempo
(min) T (°C)
Aceites
y grasa
(mg/l)
DBO
(mg/l)
DQO
(mg/l) pH
STS
(mg/l)
Coliformes
fecales
NMP/100ml
0 18,5 <0,05 18,47 84,07 7,9 13 940
Densidad de corriente : 100,3 A/m2
30 19,6 <0,05 3,45 28,68 8,4 33 <1,8
Densidad de corriente : 150,4 A/m2
30 19,9 <0,05 4,95 36,17 8,3 35 <1,8
Densidad de corriente : 200,5 A/m2
30 22,5 <0,05 3,37 34,87 9 62 <1,8
LMP <35 20 100 200 6,5-8,5 150 10 000
Fuente: Informe de ensayo JUL1055.R16
Tabla 4.10.Proceso de sonicación a 35 kHz aplicando electrodo de hierro y diferentes caudales Q (l/min). Ver Anexo B, Lab. Certimin.
Tiempo
(min) T (°C)
Aceites y
grasa (mg/l)
DBO
(mg/l)
DQO
(mg/l) pH
STS
(mg/l)
Coliformes fecales
(NMP/100 ml)
0 18 <0,05 28,88 69,43 7,9 <5 330
10 21 <0,05 27,3 64,54 7,9 5 320
Q1=0,18 l/min
15 19,3 <0,05 19,17 55,14 8,0 104 170
30 19,4 <0,05 7,47 51,84 8,0 75 <1,8
45 19,4 <0,05 8,38 55,36 8,3 60 <1,8
60 19,3 <0,05 6,89 54,73 8,3 16 <1,8
Q2=0,23 l/min
15 19,2 <0,05 24,52 64,32 8 94 170
30 19,3 <0,05 8,93 45,48 8,2 60 60
45 19,3 <0,05 8,33 53,88 8,3 66 49
60 19,1 <0,05 9,68 45,6 8,4 12 28
Q3=0,41 l/min
15 18,7 <0,05 12,24 65,36 8 13 190
23 18,9 <0,05 16,05 50,76 8 20 70
40 18,7 <0,05 9,45 55,52 8 27 65
50 18,5 <0,05 22,55 60,05 8,1 33 30
104
Tabla 4.11. Voltajes medidos para el proceso de electrocoagulación, lotes.
A/m2 100,3 150,4 200,5
t (minutos) Voltaje (v)
10 2,4 4,4 6,1
20 2,38 4,3 5,9
30 1,7 4,1 5,6
40 1,5 3,7 5,3
Promedio 2,00 4,13 5,73
Tabla 4.12. Voltajes medidos para el proceso de electrocoagulación, continuo.
Q (l/min) 0,18
A/m2 100,3
t (min) Voltaje
15 2,4
30 2,3
45 2,3
60 2,2
En la Tabla 4.13 se presenta la variación de masa de los electrodos (Fe/Fe) después del
proceso experimental del sistema por lotes. Para la limpieza de los electrodos se empleó
una solución de decapado, ácido clorhídrico.
Tabla 4.13. Variación de masa para el proceso de electrocoagulación, por lotes
(Condiciones del proceso experimental: J= 100,3 A/m2; t= 40 minutos; V=
2,4 Voltios).
Tipo de electrodo
Número de electrodo
Masa inicial (g)
Masa final (g)
∆ Masa (g)
Cátodo 1 221,31 221,3 0,01
Ánodo 2 220,15 217,3 2,85
Cátodo 3 221,92 221,9 0,02
Ánodo 4 219,81 216,92 2,89
Cátodo 5 221,37 221,35 0,02
Tabla 4.14. Variación de masa en los ánodos (Fe) y eficiencia de corriente.
∆Masa total Exp. Total (g)
5,74
∆Masa total teó. Total (g)
5,55
Eficiencia de corriente
103%
En la Tabla 4.15 se presenta la variación de masa de los electrodos (Fe/Fe) después del
proceso experimental del sistema continuo. Para la limpieza de los electrodos se empleó
una solución de decapado, ácido clorhídrico.
Tabla 4.15. Variación de masa para el proceso de electrocoagulación, proceso
continuo (condiciones del proceso experimental: J= 100,3 A/m2; t= 30 minutos; v=
2,4 Voltios).
Tabla 4.16. Variación de masa en el ánodo (Fe) y eficiencia de corriente.
∆Masa total Exp. Total (g)
4,20
∆Masa total teó. Total (g)
4,16
Eficiencia de corriente
101%
Tipo de electrodo
Número de electrodo
Masa inicial (g)
Masa final (g)
∆ Masa (g)
Cátodo 1 220,30 220,28 0,02
Ánodo 2 200,30 198,15 2,15
Cátodo 3 221,90 221,87 0,03
Ánodo 4 219,81 217,76 2,05
Cátodo 5 221,41 221,39 0,02
106
4.11. Análisis y discusión de resultados
En esta sección se detalla el análisis y discusión de los resultados para los
sistemas de sonicación y electrocoagulación.
4.11.1. Proceso de sonicación por lotes
En la Figura 4.36 se muestra el esquema del proceso de sonicación que se
utilizó para determinar el tiempo óptimo a una frecuencia de 35 kHz. El
efluente fue muestreado a la salida del tratamiento biológico.
Figura 4.36. Esquema del proceso de sonicación, lotes.
A. Efecto de la sonicación sobre el pH
En la Figura 4.37 se muestra el comportamiento del pH con una
frecuencia constante de 35 kHz, donde se observa que el pH no registró
variaciones significativas, manteniéndose entre 7,3 y 7,4 unidades de
pH. El pH inicial del efluente fue 7,3 unidades; luego de 10 minutos de
sonicación, el pH se incrementó ligeramente a 7,4 unidades. A
107
20 minutos, el pH disminuyo a 7,3 unidades. Después el pH se
mantiene constante en 7,4 unidades. El efluente tiene características
ligeramente alcalinas, las cuales se mantiene durante todo el
tratamiento de sonicación.
Figura 4.37. Efecto de la sonicación sobre el pH del efluente de la
PTAR-SJM.
B. Efecto de la sonicación sobre la temperatura
En la Figura 4.38 se puede apreciar que la temperatura del efluente se
incrementa mientras transcurre el proceso de sonicación. La
temperatura llega a superar el límite máximo permisibles (T>35 ºC) a
partir de los 40 min. El incremento de la temperatura es producto del
colapso de las burbujas de cavitación en el líquido (efluente), el
colapso de burbujas producen enormes cantidades de energía a partir
de la conversión de la energía cinética del líquido en movimiento en
calor, el cual está contenido en la burbuja (Coba Alfaro & Pacheco,
2006).
7,3
7,4
7,3 7,4 7,4 7,4
6
6,5
7
7,5
8
8,5
9
0 10 20 30 40 50 60
pH
(u
nid
ad
es)
Tiempo (min)
Potencial de hidrógeno (pH)
Sonicación (35kHz) LMP - PTAR (6,5-8,5 unidades)
108
Figura 4.38. Efecto de la sonicación sobre la T del efluente de la
PTAR-SJM.
C. Efecto de la sonicación sobre los sólidos totales suspendidos
(STS)
Los STS son importantes para determinar la calidad del agua,
principalmente porque se utilizan para el cobro de las tasas retributivas
y el diseño de plantas de tratamiento (Sierra Ramírez, 2011). En la
Figura 4.39 se muestra el comportamiento de los STS en función al
tiempo. Los STS disminuyeron conforme transcurría el tiempo, el
menor STS fue de 16 mg/l y fue registrado a los 40 minutos.
23
27
3134
35
36
6
11
16
21
26
31
36
41
0 10 20 30 40 50 60
T (°
C)
Tiempo (min)
Temperatura (T)
Sonicación (35 kHz) LMP - PTAR (< 35 °C)
109
Figura 4.39. Efecto de la sonicación sobre los STS del efluente de
la PTAR-SJM.
Como se observa en la Figura 4.40, la mayor remoción fue de 60%
a los 40 minutos.
Figura 4.40. Porcentaje de remoción de los STS a una sonicación
de 35 kHz.
4024 22 17 16 17
1
10
100
1000
0 10 20 30 40 50 60
STS
(mg/
l)
Tiempo
Sólidos totales supendidos (STS)
Sonicación (35 kHz) LMP - PTAR (150 mg/l)
0
4045
57,5
6057,5
0
10
20
30
40
50
60
70
0 10 20 30 40 50 60
% R
em
oci
ón
Tiempo (min)
Sólidos totales suspendidos
Sonicación (35 kHz)
110
D. Efecto de la sonicación sobre la turbidez
La turbidez es la capacidad que tiene el material suspendido en el agua
para obstaculizar el paso de la luz (Sierra Ramírez, 2011). El impacto
de turbidez es estético, porque a nadie le gusta el aspecto del agua
sucia. En la Figura 4.41 se observa que la turbidez no registró
variaciones significativas, manteniéndose entre 14,6 y 16,8 UNT. Por el
contrario, el tratamiento durante 10 min registra un leve incremento
(posiblemente una interferencia al momento de filtrar). La turbiedad no
tiene límite máximo permisible (LMP).
Figura 4.41. Efecto de la sonicación sobre la turbidez del efluente de la
PTAR-SJM.
E. Efecto de la sonicación sobre los aceites y grasas
La Figura 4.42 presenta el comportamiento de los aceites y grasas en
función a tiempo, a una frecuencia constante de 35 kHz. La
concentración de aceites y grasas disminuyó conforme transcurría el
tiempo, la menor concentración fue de 0,6 mg/L y fue registrado a los
30 min. A partir de los 10 min de tratamiento, los aceites y grasas
cumplen con los LMP y ECA agua, categoría 3, los cuales son usados
como referencia.
14,6
28,6
16,8 15,2 16,4 14,7
0
5
10
15
20
25
30
35
0 10 20 30 40 50 60
Turb
ide
z (U
NT)
Tiempo (min)
Turbidez
Sonicación (35 kHz)
111
Figura 4.42. Efecto de la sonicación sobre los aceites y grasas del
efluente de la PTAR-SJM.
La figura 4.43 muestra los porcentajes de remoción de los aceites y
grasas, la mayor remoción fue de 96,51 % a los 30 min.
17,19
1,48
0,93 0,6 0,71 0,62
0,1
1
10
100
0 10 20 30 40 50 60
Ace
ite
s y
gras
as (
mg/
l)
Tiempo (min)
Aceites y grasas
Sonicación (35 kHz) LMP - PTAR (20 mg/l)
ECA - agua, categoría - 3 (5 mg/l)
112
Figura 4.43. Porcentaje de remoción de aceites y grasas a una
sonicación de 35 kHz.
F. Efecto de la sonicación sobre la demanda bioquímica de oxígeno
(DBO5)
En la Figura 4.44 muestra el comportamiento del DBO5 del efluente en
función al tiempo y a una frecuencia constante de 35 kHz. La
concentración de DBO5 disminuyó ligeramente hasta los 20 min de
sonicación. Luego se registró un leve incremento y reducción a los 30 y
40 min, respectivamente. La concentración más baja se registró a los
40 min de sonicación.
0
91,39
94,59 96,51 95,8796,39
0
20
40
60
80
100
120
0 10 20 30 40 50 60
% R
em
oci
ón
Tiempo (min)
Aceites y grasas
Sonicación (35 kHz)
113
Figura 4.44. Efecto de la sonicación sobre la DBO5 del efluente de
la PTAR-SJM.
La Figura 4.45 presenta los porcentajes de remoción de la
demanda bioquímica de oxígeno, los resultados para las
condiciones establecidas en el experimento indico un porcentaje de
remoción no menor al 15,37 %. A los 30 min de sonicación, se
obtuvo un nivel de remoción máximo de 25,84 %.
25,77 20,91 20,59 21,81 19,11 20,84
1
10
100
1000
0 10 20 30 40 50 60
DB
O5
(mg/
l)
Tiempo (min)
Demanda bioquímica de oxígeno (DBO5)
Sonicación (35 kHz) LMP - PTAR (100 mg/l)
ECA - agua, categoría-3 (15 mg/l)
114
Figura 4.45. Porcentaje de remoción de la DBO5 a una sonicación
de 35 kHz.
G. Efecto de la sonicación sobre la demanda química de oxígeno
(DQO)
En la Figura 4.46 se muestra el comportamiento del DQO del
efluente en función al tiempo y a una frecuencia constante de
35 kHz. La menor concentración de DBO se registró a los 20 min de
sonicación, esta concentración cumple con el límite máximo
permisible; sin embargo, no cumple con el ECA-agua
(categorías 3), el cual es de referencia.
0
18,8620,10
15,37
25,84
19,13
0
5
10
15
20
25
30
0 10 20 30 40 50 60
% R
em
oci
ón
Tiempo (min)
Demanda bioquímica de oxígeno
Sonicación (35 kHz)
115
Figura 4.46. Efecto de la sonicación sobre la DQO del efluente de
la PTAR-SJM.
La Figura 4.47 muestra los porcentajes de remoción de la demanda
química de oxígeno. A los 20 min de sonicación, se obtuvo un nivel
de remoción máximo de 12,82 %.
Figura 4.47. Porcentaje de remoción de la DQO a una sonicación
de 35 kHz.
114,85 102,41 100,13 101,17 101,38 100,85
1
10
100
1000
0 10 20 30 40 50 60
DQ
O (
mg/
l)
Tiempo (min)
Demanda química de oxígeno (DQO)
Sonicación (35 kHz) LMP - PTAR (200 mg/l)
ECA - agua, categoría-3(40 mg/l)
0
10,83
12,8211,91 11,73 12,19
0
2
4
6
8
10
12
14
0 10 20 30 40 50 60
% R
em
oci
ón
Tiempo (min)
Demanda química de oxígeno
Sonicación (35 kHz)
116
H. Efecto de la sonicación sobre los coliformes fecales (CF)
El coliforme fecal es un indicador indirecto del riesgo potencial de
contaminación con bacterias o virus de carácter patógeno, están
presentes en las heces humanas y de los animales (Sierra Ramírez,
2011). En la Figura 4.48 se muestra el comportamiento de los CF del
efluente en función al tiempo y a una frecuencia constante de 35 kHz.
Respecto a la concentración inicial, los CF se incrementaron conforme
transcurría el tiempo. Bajo ciertas condiciones, el rango de temperatura
de crecimiento de los coliformes es hasta los 45 °C (Gomez et al., 1999;
Prescott Harley, 2002).
Figura 4.48. Efecto de la sonicación sobre los coliformes fecales
del efluente de la PTAR-SJM.
I. Efecto de la sonicación sobre los coliformes totales (CT)
En la Figura 4.49 se muestra el comportamiento de los coliformes
totales del efluente en función al tiempo y a una frecuencia constante de
35 kHz. La menor concentración de CT se registró a los 10 min de
sonicación, esta concentración cumple con el límite máximo permisible;
sin embargo, no cumple con el ECA-agua (categorías 3), el cual es de
7900
1700013000
2200033000
11000
100
1000
10000
100000
0 10 20 30 40 50 60
Co
lifo
rme
s F
. (N
MP
/1
00
ml)
Tiempo (min)
Coliformes fecales
Sonicación (35khz)
LMP (10000 NMP/100ml)
ECA - agua, categoría-3 (1000 NMP/100ml)
117
referencia. Bajo ciertas condiciones, el rango de temperatura de
crecimiento de los coliformes es hasta los 45 °C (Gomez et al., 1999;
Prescott Harley, 2002).
Figura 4.49. Efecto de la sonicación sobre los coliformes totales del
efluente de la PTAR-SJM.
La Figura 4.50 muestra los porcentajes de remoción de los
coliformes totales. A los 10 min de sonicación, se obtuvo un nivel de
remoción máximo de 26,09 %.
2300017000
3300028000
4600022000
1
10
100
1000
10000
100000
0 10 20 30 40 50 60
Co
lifo
rme
s T
. (N
MP
/10
0 m
l)
tiempo
Coliformes totales
Sonicación (35khz) ECA - agua, categoría 3 (5 000 NMP/ 100 ml)
118
Figura 4.50. Porcentaje de remoción de los coliformes totales a una
sonicación de 35 kHz.
4.11.2. Proceso de sonicación y electrocoagulación por lotes
La mejor respuesta en la sonicación se encontró a los 10 min, líneas abajo.
Se muestra cómo afecta la electrocoagulación. En la figura 4.51 se
muestra como operaron los procesos sonicación y electrocoagulación
mediante el siguiente esquema.
26,09
4,35
-5
0
5
10
15
20
25
30
0 10 20 30 40 50 60
% R
em
oci
ón
Tiempo (min)
Coliformes totales
Sonicación (35 kHz)
119
Figura 4.51. Diagrama del proceso secuencial de sonicación y
electrocoagulación, por lotes.
A. Efecto de la sonicación - electrocoagulación sobre el pH.
Como se observa la Figura 4.52, el pH se encontró en 7,9 unidades
(valor del efluente sin tratar), luego de sonicar a un tiempo óptimo de
10 min, el pH no registró variación manteniéndose en 7,9 unidades.
Luego se muestra el comportamiento a diferentes valores de densidad
para los cuatro tiempos del proceso.
De la comparación de las curvas a diferentes densidades de corriente
aplicada durante el tratamiento, se observa que a mayores valores de
densidad de corriente mayor es el incremento del pH. Este
comportamiento es característico en efluentes con pH inicial dentro de
los valores de 4-9 unidades, debido a que la producción de H2 en el
cátodo incrementa las concentraciones OH-, por consiguiente se
incrementa el pH en el proceso de electrocoagulación (Chen, 2004).
120
A una densidad de corriente 100,3 A/m2, el pH aumentó mientras se
incrementaba el tiempo del proceso de EC, debido al incremento de los
iones OH- como resultado de la electrolisis del agua en el cátodo. De
forma similar ocurrió con las densidades de corriente de 150,4 y
200,5 A/m2 el comportamiento del pH fue incrementándose. El máximo
pH fue de 9,4 unidades a una densidad de 200,5 A/m2 (t S-EC=50 min).
Figura 4.52. Efecto de la sonicación - electrocoagulación sobre el
pH del efluente de la PTAR-SJM.
B. Efecto de la sonicación-electrocoagulación sobre los sólidos
totales suspendidos.
La Figura 4.53 muestra la evolución de los sólidos totales suspendidos
por efecto de la sonicación (t=10 min) y la electrocoagulación. Los STS
se encontraron en 13 mg/l (valor del efluente sin tratar); luego de
sonicar a un tiempo óptimo de 10 min, los STS disminuyeron
levemente a 11 mg/L.
7,9 7,98,1 8,2 8,3 8,4
7,9 7,9
8,3
8,58,8
9,1
7,9 7,9
8,78,8
9,1
9,4
6,5
7
7,5
8
8,5
9
9,5
10
0 10 20 30 40 50 60
pH (u
nida
des)
Tiempo total (min)
Potencial de hidrógeno (pH)
Sonicación (35khz) y EC (J=100,3 A/m2) Sonicación (35khz) y EC (J=150,4 A/m2)
Sonicación (35khz) y EC (J=200,5 A/m2) LMP- PTARD (6,5 - 8,5 unidades)
Sonicación Electrocoagulación
121
Una vez que empieza el proceso de electrocoagulación (t > 10 min) se
puede observar que los STS se incrementarón hasta alcanzar un
máximo valor y luego disminuyeron.
A una densidad de corriente de 100,3 A/m2 la máxima concentración
de STS se alcanzó a los 20 min del proceso S-EC. Respecto a las
densidades de corriente de 150,4 y 200,5 A/m2, ambos alcanzaron su
máximo a los 40 min del proceso S-EC. Es necesario recalcar que los
STS se encontraron muy por debajo de los límites máximos
permisibles.
Figura 4.53. Efecto de la sonicación y electrocoagulación sobre los
STS del efluente de la PTAR-SJM.
C. Efecto de la sonicación-electrocoagulación sobre la demanda
bioquímica de oxígeno.
La DBO5 es utilizada para determinar el contenido de materia orgánica
de una muestra de agua y se mide determinando la cantidad de
oxígeno que requieren los microorganismos para degradar, oxidar,
estabilizar, etc la materia orgánica (Sierra Ramírez, 2011).
13 11
9184
4533
13 11
6770
76
33
13 11
6665
86
38
6
26
46
66
86
106
126
146
166
0 10 20 30 40 50 60
STS
(mg/
l)
Tiempo total (min)
Sólidos totales suspendidos (STS)
Sonicación (35khz) y EC (J=100,3 A/m2) Sonicación (35khz) y EC (J=150,4 A/m2)
Sonicación (35khz) y EC (J=200,5 A/m2) LMP-PTARD(< 150 mg/l)
Sonicación Electrocoagulación
122
La Figura 4.54 muestra la evolución de la DBO5 por efecto de la
sonicación y la electrocoagulación, la DBO5 se encontró en 18 mg/l
(valor del efluente sin tratar). Luego de sonicar a un tiempo óptimo de
10 min, la concentración de DBO5 disminuyó ligeramente a 15,37 mg/l.
Una vez que empieza el proceso de electrocoagulación (t>10 min), se
observar que las concentraciones de DBO5 tienen diferentes curvas de
tendencia.
Para la densidad de corriente de 100,3 A/m2, la concentración de DBO5
disminuyó progresivamente alcanzando un valor mínimo a los 50 min
del proceso de sonicación-electrocoagulación.
Para la densidad de corriente de 150,4 A/m2, la concentración de DBO5
disminuyó moderadamente a los 20 min, luego fluctuó ligeramente
hasta llegar a su concentración más baja a los 50 min. Estas
fluctuación podrían deberse a influencia generada por la sonicación
(Wang, Chou, & Kuo, 2009). Por otra parte, la densidad de corriente de
200,5 A/m2 disminuyo hasta un valor mínimo (t S-EC=30 min) luego se
incremente levemente.
Figura 4.54. Efecto de la sonicación y electrocoagulación sobre la
DBO5 del efluente de la PTAR-SJM.
18,47
15,37
6,29
3,75 3,16 3,27
18,47
3,34
3,28 3,58 2,4
18,47
10,65
2,834,02
5,53
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
20
0 10 20 30 40 50 60
DBO
5(m
g/l)
Tiempo total (min)
Demanda bioquímica de oxígeno (DBO5)
Sonicación (35khz) y EC (J=100,3 A/m2)
Sonicación (35khz) y EC (J=150,4 A/m2)
Sonicación (35khz) y EC (J=200,5 A/m2)
ECA - Bebida de animales y riego de vegetales (15 mg/L)
Sonicación Electrocoagulación
123
La Figura 4.55 muestra los porcentajes de remoción de la demanda
bioquímica por efecto de la sonicación y la electrocoagulación. Los
resultados para las condiciones establecidas de sonicación y
electrocoagulación indicó un porcentaje no menor al 42%. A las
condiciones de frecuencia=35 kHz; j=150,4 A/m2 y t S y EC= 50 min;
se obtuvo el nivel de remoción máximo de la demanda bioquímica
de oxígeno alcanzando el valor máximo de 87 % de remoción.
Figura 4.55. Porcentaje de remoción de la DBO5 de la sonicación y
electrocoagulación.
D. Efecto de la sonicación-electrocoagulación sobre la demanda
química de oxígeno (DQO).
La DQO es una prueba utilizada para determinar el contenido de
materia orgánica de una muestra de agua. Mediante esta prueba se
puede medir un desecho en términos de la cantidad de oxígeno
requerido para oxidar completamente a la materia orgánica (Sierra
Ramírez, 2011).
0
16,8
65,979,7
82,9 82,3
0
16,8
81,982,2
80,6 87,0
0
16,8
42,3
84,7
78,2 70,1
0
20
40
60
80
100
0 10 20 30 40 50 60
% R
em
oci
ón
Tiempo total (min)
Demanda bioquímica de oxígeno
Sonicación (35khz) y EC (J=100,3 A/m2)
Sonicación (35khz) y EC (J=150,4 A/m2)
Sonicación (35khz) y EC (J=200,5 A/m2)
Sonicación Electrocoagulación
124
La Figura 4.56 muestra la evolución de la DQO por efecto de la
sonicación y la electrocoagulación, La DQO se encontró en
84,1 mg/l (valor del efluente sin tratar). Luego de sonicar a un
tiempo óptimo de 10 min, la concentración de DQO no registro
cambios significativos. Una vez que empieza el proceso de
electrocoagulación (t S y EC >10 min), se observar que las
concentraciones de DQO tienen diferentes curvas de tendencia.
Para la densidad de corriente de 100,3 A/m2, la concentración de
DQO disminuyó progresivamente alcanzando un valor mínimo a los
50 min del proceso de sonicación-electrocoagulación. Sin embargo,
se observó una perturbación en el tiempo t S y EC = 30 min.
Para la densidad de corriente de 150,4 A/m2, la concentración de
DQO disminuyó progresivamente; sin embargo, se observó una
pequeño fluctuación a los 40 min. Estas fluctuación podrían
deberse a influencia generada por la sonicación (Wang et al.,
2009).
Por otra parte, la densidad de corriente de 200,5 A/m2 disminuyo
hasta un valor mínimo (t S-EC=30 min) luego presenta fluctuaciones
moderadas.
125
Figura 4.56. Efecto de la sonicación y electrocoagulación sobre la
DQO del efluente de la PTAR-SJM.
La Figura 4.57 muestra los porcentajes de remoción de la demanda
bioquímica por efecto de la sonicación y la electrocoagulación. Los
resultados para las condiciones establecidas de sonicación y
electrocoagulación indicaron un porcentaje no menor al 22,4 %. A
las condiciones de frecuencia=35 kHz; j=150,4 A/m2 y t S y EC=
50 min; se obtuvo el nivel de remoción máximo de la demanda
bioquímica de oxígeno alcanzando el valor máximo de 87,5 % de
remoción.
84,07 84,52
60,75
79,25
37,93
26,92
84,07 84,52
35,4429,25 32,2
10,47
84,07 84,52
65,23
19,43
48,09
21,53
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
0 10 20 30 40 50 60
DQ
O (m
g/l)
Tiempo total (min)
Demanda química de oxígeno (DQO)
Sonicación (35khz) y EC (J=100,3 A/m2)
Sonicación (35khz) y EC (J=150,4 A/m2)
Sonicación (35khz) y EC (J=200,5 A/m2)
ECA - Bebida de animales y riego de vegetales (40 mg/L)
Sonicación Electrocoagulación
126
Figura 4.57. Porcentaje de remoción de la DQO de la sonicación y
electrocoagulación.
E. Efecto de la sonicación-electrocoagulación sobre los coliformes
fecales (CF).
El parámetro de coliformes fecales es un indicador indirecto del
riesgo potencial de contaminación con bacterias o virus de
carácter patógeno, están presentes en las heces humanas y de los
animales (Sierra Ramírez, 2011).
La Figura 4.58 muestra la evolución de los CF por efecto de la
sonicación y la electrocoagulación. Los coliformes fecales se
encontraron ligeramente por debajo del LMP (1 000 NMP/100 ml)
con un valor de 940 NMP /100ml (valor del efluente sin tratar).
Luego de sonicar a un tiempo óptimo de 10 min, la concentración
de CF se redujo a 490 NMP/100ml. Una vez que empieza el
proceso de electrocoagulación (t S y EC >10 min), se observó que las
concentraciones de CF tienen similares curvas de tendencia.
0
27,7
5,7
54,9
68,0
0
57,865,2 61,7
87,5
0
22,4
76,9
42,8
74,4
-20
0
20
40
60
80
100
0 10 20 30 40 50 60
% R
em
oci
ón
Tiempo total (min)
Demanda química de oxigeno (DQO)
Sonicación (35khz) y EC (J=100,3 A/m2)
Sonicación (35khz) y EC (J=150,4 A/m2)
Sonicación (35khz) y EC (J=200,5 A/m2)
Sonicación ElectrocoagulaciónSonicación ElectrocoagulaciónSonicación ElectrocoagulaciónSonicación Electrocoagulación
127
Para la densidad de corriente de 100,3 A/m2, la concentración de
CF disminuyó progresivamente alcanzando un valor mínimo a los
50 min del proceso de sonicación - electrocoagulación.
Por otro lado, para las densidades de corriente de 150,4 A/m2 y
200,5 A/m2 concentración de CF drásticamente desde los 20 min.
Sin embargo, en la curva de 150 A/m2 se presentó una pequeña
fluctuación a los 40 min.
Figura 4.58. Efecto de la sonicación y electrocoagulación sobre los
coliformes fecales del efluente de la PTAR-SJM.
La Figura 4.59 muestra los porcentajes de remoción de los CF por
efecto de la sonicación y la electrocoagulación. Los resultados para
las condiciones establecidas de sonicación y electrocoagulación
indicaron un porcentaje de remoción no menor al 69,1%. Para las
densidades de corriente 150,4 A/m2 y 200,5 A/m2; se obtuvo el
nivel de remoción no menor 98% a partir de los 20 min.
940 490290 230
13
1,8
490
24,5
1,8
490
2,21,8
1,81,8
1
10
100
1000
10000
0 10 20 30 40 50 60
CF (N
MP/
100m
l)
Tiempo total (min)
Coliformes fecales (CF)
Sonicación (35khz) y EC (J=100,3 A/m2)
Sonicación (35khz) y EC (J=150,4 A/m2)
Sonicación (35khz) y EC (J=200,5 A/m2)
ECA Riego de vegetales de tallo bajo (1000 NMP/100 mL)
Sonicación Electrocoagulación
128
Figura 4.59 Porcentaje de remoción de CF a una sonicación y
electrocoagulación.
4.11.3. Proceso secuencial sonicación por lotes y electrocoagulación a flujo
continuo
En la figura 4.60 se muestra como operó el proceso secuencial de
sonicación por lotes y electrocoagulación a flujo continuo. Asimismo, se
muestra de donde se obtiene el efluente.
0
47,9
69,175,5
98,6 99,8
0
99,899,8 99,8 100,0
0
20
40
60
80
100
120
0 10 20 30 40 50 60
% R
em
oci
ón
Tiempo total (min)
Coliformes fecales (CF)
Sonicación (35khz) y EC (J=100,3 A/m2)
Sonicación (35khz) y EC (J=150,4 A/m2)
Sonicación (35khz) y EC (J=200,5 A/m2)
Sonicación Electrocoagulación
129
Figura 4.60 Diagrama del proceso secuencial de sonicación por lotes y
electrocoagulación a flujo continuo.
A. Efecto del caudal sobre el pH
La Figura 4.61 muestra la evolución del potencial de hidrogeno (pH)
por efecto de la sonicación y la electrocoagulación a los caudales
de 0,18 l/min; 0,23 l/min y 0,41 l/min.
El pH se encontró en 7,9 mg/l (valor del efluente sin tratar). Luego
de sonicar a un tiempo óptimo de 10 min, el pH no registro cambios
significativos. Una vez que empieza el proceso de
electrocoagulación (t S y EC >10 min), se observar que el pH se
incrementa progresivamente y que un caudal menor induce a una
menor variación en el pH. Este resultado podría explicarse a que un
menor caudal induce a una mayor de interacciones entre las
especies coagulantes y las partículas coloidales, incrementando de
esta manera el pH.
130
Figura 4.61. Efecto de la sonicación (35kHz) y electrocoagulación
(J=100,3 A/m2) sobre el pH a Q = 0,5 l/min; 0,23 l/min y 0,41 l/min.
B. Efecto del caudal sobre los sólidos totales suspendidos (STS)
La Figura 4.62 muestra la evolución de los sólidos totales
suspendidos por efecto de la sonicación-electrocoagulación a los
caudales de 0,18 l/min; 0,23 l/min y 0,41 l/min.
Los STS se encontraron muy por debajo del LMP, con un valor de
5 mg/l (efluente sin tratar). Luego de sonicar a un tiempo óptimo de
10 min (lotes), los STS no mostraron cambios. Una vez que
empieza el proceso de electrocoagulación (t ≥10 min) se puede
observar que para los caudales de 0,18 l/min y 0,23 l/min de los
STS se incrementaron hasta alcanzar un máximo valor y luego
disminuyeron.
En cuanto al caudal de 0,23 l/min, los STS se incrementan
progresivamente hasta alcanzar su máxima concentración a los
70 min (33 mg/l). Es necesario recalcar que en todo momentos los
7,9 7,9
8 8
8,3 8,3
7,9 7,9
8
8,2
8,3
8,4
7,9 7,9
8 8 8
8,1
7,4
7,8
8,2
8,6
0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 70 75
pH (u
nida
des)
Tiempo (min)
Potencial de hidrógeno (pH)
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,18 l/min
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,23 l/minSonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,41 l/min
LMP - PTARD (6,5- 8,5 unidades)ECA agua: cat. 3, D2 (6,5 - 8,4 unidades)
Sonicación Electrocoagulación
131
STS están por debajo de los límites máximo permisibles
(< 150 mg/L).
Figura 4.62. Efecto de la sonicación (35 kHz) y electrocoagulación
(J=100,3 A/m2) sobre el pH a Q = 0,5 l/min; 0,23 l/min y 0,41 l/min.
C. Efecto del caudal sobre la demanda bioquímica de oxígeno
(DBO5).
La Figura 4.63 muestra la evolución de la demanda bioquímica de
oxígeno (DBO5) por efecto de la sonicación - electrocoagulación a
los caudales de 0,18 l/min; 0,23 l/min y 0,41 l/min.
La DBQ5 se encontró por debajo del LMP (< 100 mg/l), con un valor
de 28,88 mg/l (efluente sin tratar), sin embargo este valor excede el
ECA-agua, categoría 3 (15 mg/l), el cual es utilizado como
referencia. Luego de sonicar a un tiempo óptimo de 10 min (lotes),
la concentración de DBO5 disminuyó ligeramente a 27,3 mg/l. Una
vez que empieza el proceso de electrocoagulación (t ≥10 min) se
puede observar que para los caudales de 0,18 l/min; 0,23 l/min y
0,41 l/min la concentración de DBO disminuyó conforme pasa el
5 5
104
75 60
15,7
5 5
94
6066
11,65 513
2027 33
-20
0
20
40
60
80
100
120
140
160
0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 70 75
STS
(mg/
l)
Tiempo (min)
Sólidos totales suspendidos (STS)
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,18 l/min
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,23 l/min
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,41 l/min
LMP-PTARD(< 150 mg/l)
Sonicación Electrocoagulación
132
tiempo. Sin embargo, se observó que el de mayor caudal
(0,41 l/min) demora en estabilizarse.
Figura 4.63. Efecto de la sonicación (35kHz) y electrocoagulación
(J=100,3 A/m2) sobre el pH a Q = 0,5 l/min; 0,23 l/min y 0,41 l/min.
La Figura 4.64 muestra los porcentajes de remoción de la demanda
bioquímica por efecto de la sonicación y electrocoagulación a los
caudales de 0,18 l/min; 0,23 l/min y 0,41 l/min.
Los resultados para las condiciones establecidas de sonicación y
electrocoagulación indicó un porcentaje de remoción no menor al
15,1%. Para el caudal de 0,18 l/min; se obtuvo el nivel de máximo
de 76,14% a los 70 min.
28,88 27,3
19,17
7,478,38
6,89
28,88 27,3 24,52
8,938,33
9,68
28,88 27,318,24 16,05
9,45
22,55
1
10
100
0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 70 75
DB
O5
(mg/
l)
Tiempo (min)
Demanda bioquímica de oxígeno (DBO5)
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,18 l/min
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,23 l/min
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,41 l/min
ECA - Bebida de animales y riego de vegetales (15 mg/L)
LMP - PTARD (100 mg/l)
ElectrocoagulaciónSonicación
133
Figura 4.64. Efecto de la sonicación y electrocoagulación sobre el
pH del efluente de la PTAR-SJM.
D. Efecto del caudal sobre la demanda química de oxígeno (DQO)
La Figura 4.65 muestra la evolución de la demanda química de
oxígeno (DQO) por efecto de la sonicación - electrocoagulación a
los caudales de 0,18 l/min; 0,23 l/min y 0,41 l/min.
La DQO se encontró por debajo del LMP (< 100 mg/l), con un valor
de 69,43 mg/l (efluente sin tratar), sin embargo este valor excede el
ECA-agua, categoría 3 (40 mg/l), el cual es utilizado como
referencia. Luego de sonicar a un tiempo óptimo de 10 min (lotes),
a concentración de DQO disminuyó ligeramente a 64,54 mg/l. Una
vez que empieza el proceso de electrocoagulación (t ≥10 min) se
puede observar que para el caudal de 0,18 l/min la concentración
de DQO disminuyó conforme pasa el tiempo y se estabilizó en el
05,47
33,62
74,1370,98 76,14
05,47
15,10
69,0871,16
66,48
0
36,84
44,43
67,28
21,92
0
10
20
30
40
50
60
70
80
0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 70 75
% R
em
oci
ón
Tiempo (min)
Demanda bioquímica de oxígeno (DBO5)
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,18 l/min
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,23 l/min
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,41 l/min
134
t=55 min. Sin embargo, los caudales, 0,23 l/min y 0,41 l/min se
observan fluctuaciones y demora en estabilizarse.
Figura 4.65. Efecto de la sonicación (35 kHz) y electrocoagulación
(J = 100,3 A/m2) sobre el pH a Q =0,5 l/min; 0,23 l/min y 0,41 l/min.
La Figura 4.66 muestra los porcentajes de remoción de la demanda
bioquímica por efecto de la sonicación y electrocoagulación a los
caudales de 0,18 l/min; 0,23 l/min y 0,41 l/min.
Los resultados para las condiciones establecidas de sonicación y
electrocoagulación indico un porcentaje de remoción más estable
para un caudal de 0,18 l/min. Asimismo; se obtuvo el nivel de
máximo de 26,89 % a los 40 min.
69,43
64,54
55,14 51,84 55,36 54,76
69,43
64,32
45,48
53,88
45,6
69,43
65,36
50,76
55,52
60,05
30
35
40
45
50
55
60
65
70
75
0 10 20 30 40 50 60 70 80
DQ
O (
mg/
l)
Tiempo (min)
Demanda química de oxígeno (DQO)
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,18 l/min
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,23 l/min
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,41 l/min
ECA - Bebida de animales y riego de vegetales (40 mg/L)
ElectrocoagulaciónSonicación
135
Figura 4.66. Efecto de la sonicación (35 k Hz) y electrocoagulación
(J=100,3 A/m2) sobre el pH a Q = 0,5 l/min; 0,23 l/min y 0,41 l/min.
E. Efecto del caudal sobre los coliformes fecales (CF)
La Figura 4.67 muestra la evolución de los coliformes fecales (CF)
por efecto de la sonicación y la electrocoagulación a los caudales
de 0,18 l/min; 0,23 l/min y 0,41 l/min.
El CF se encontró en 330 NMP/ 100ml (valor del efluente sin tratar).
Luego de sonicar a un tiempo óptimo de 10 min, la concentración
de CF disminuyó ligeramente a 320 NMP/100 ml. Una vez que
empieza el proceso de electrocoagulación (t S y EC >10 min), se
puede observar que la concentración de CF en los tres caudales
disminuye conforme pasa el tiempo. Asimismo, un menor caudal
induce a un menor valor de CF. Este resultado podría explicarse a
que un menor caudal induce a una mayor de interacciones entre las
especies coagulantes y las partículas coloidales, reduciendo los CF.
0
7,04
20,5825,33
20,27 21,13
0
7,35
34,49
22,39
34,32
0
7,04
5,86
26,89
20,03
13,51
0
5
10
15
20
25
30
35
40
0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 70 75
% R
emoc
ión
Tiempo (min)
Demanada química de oxígeno (DQO)
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,18 l/min
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,23 l/min
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,41 l/min
Sonicación Electrocoagulación
136
Figura 4.67. Efecto de la sonicación (35 kHz) y electrocoagulación
(J=100,3 A/m2) sobre el pH a Q = 0,5 l/min; 0,23 l/min y 0,41 l/min.
La Figura 4.68 muestra los porcentajes de remoción de los CF por
efecto de la sonicación y electrocoagulación a los caudales de
0,18 l/min; 0,23 l/min y 0,41 l/min. Los resultados para las
condiciones establecidas de sonicación y electrocoagulación indico
un porcentaje de remoción no menor al 48,8%. Para el caudal de
0,18 l/min; se obtuvo el nivel de máximo de 99,45% a partir de los
40 min.
330 320170
60 4928
330 320
170 70 6530
1
10
100
1000
10000
0 10 20 30 40 50 60 70 80
CF (N
MP/
100m
l)
Tiempo (min)
Coliformes fecales (CF)
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,18 l/min
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,23 l/min
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,41 l/min
ECA Riego de vegetales de tallo bajo (1000 NMP/100 mL)
LMP - PTARD (10000 NMP/100ml)
137
Figura 4.68. Efecto de la sonicación (35 kHz) y electrocoagulación
(J = 100,3 A/m2) sobre el pH a Q = 0,5 l/min; 0,23 l/min y 0,41 l/min.
4.11.4. Proceso de sonicación (S) vs electrocoagulación (EC)
Para comparar, ambos procesos se trabajarón por lotes y se seleccionaron
a los porcentajes de remoción más eficientes. Para el proceso de
sonicación se trabajó a 35 kHz; 4,8 L de muestra y 10 minutos. Respecto a
la electrocoagulación, se trabajó a 100,3 A/m2, 5 L de muestra, electrodos
de hierro y 30 minutos. Al comparar ambos proceso se observa el siguiente
comportamiento.
0 3,03
48,48
99,45 99,45 99,45
0 3,03
48,48
81,82 85,1591,52
0 3,03
48,48
78,7980,30
90,91
-20
0
20
40
60
80
100
120
0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 70 75
% R
emoc
ión
Tiempo (min)
Coliformes fecales (CF)
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,18 l/min
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,23 l/min
Sonicación (35khz), EC (J=100,3 A/m2) y Q=0,41 l/min
138
Tabla 4.10. Variación y porcentajes de remoción en los proceso de
sonicación y electrocoagulación.
Proceso
Sonicación (lotes)
Electrocoagulación (lotes)
35 kHz 100,3 A/m2
Tiempo 10 minutos 30 minutos
∆pH 0 0,5
∆T 3,7 1,1
DBO5 16,8% 81,4%
DQO -0,5%* 65,9%
CF 47,9% 99,8% Fuente: Informe de ensayo JUL1055.R16
*Posible interferencia durante el proceso de filtración.
Como se observa en la Figura 4.69, la remoción del conjunto de
parámetros medidos del proceso de electrocoagulación son mejores que
las obtenidas para el proceso de sonicación.
139
Figura 4.69. Comportamiento de los parámetros para los proceso de
sonicación y electrocoagulación.
17%
-0,5%
47,9%
81,4%
65,9%
99,8%
-10,0%
0,0%
10,0%
20,0%
30,0%
40,0%
50,0%
60,0%
70,0%
80,0%
90,0%
100,0%
DBO5 DQO CF
Sonicación vs Electrocoagulación
Sonicación (35 kHz)
Electrocoagulación(J=100,3 A/m2)
140
4.11.5. Proceso de electrocoagulación (EC) vs Proceso secuencial de
sonicación / electrocoagulación (S/EC)
En ambos procesos, EC y S/EC, se trabajaron por el sistema por lotes y se
seleccionaron a los mejores porcentajes de remoción.
Para el proceso EC se trabajaron a flujos de corriente contante
(100,3 A/m2, 150,4 A/m2 y 200,5 A/m2), 5 L de muestra, electrodos de
hierro y a 30 minutos de electrocoagulación.
Respecto al proceso de S/EC, en la Sonicación (35 kHz; 4,8 L de muestra)
se procedió a tratar la muestra durante 10 min. En la electrocoagulación
(5 L de muestra), el efluente fue tratado a flujos contantes (100,3 A/m2,
150,4 A/m2 y 200,5 A/m2), a un tiempo de 20 y 30 minutos. Al comparar
ambos procesos, EC y S/EC, se observa el siguiente comportamiento.
Tabla 4.11. Porcentajes de remoción en proceso de electrocoagulación y
proceso secuencial de sonicación/electrocoagulación.
Proceso (lotes) DBO5 DQO CF
EC (30 min)
100,3 A/m2 81,35% 65,89% 99,81%
150,4 A/m2 73,24% 56,98% 99,81%
200,5 A/m2 81,78% 58,52% 99,81%
S (10 min) + EC (20min)
100,3 A/m2 79,70% 5,70% 75,50%
150,4 A/m2 82,20% 65,20% 99,50%
200,5 A/m2 84,70% 76,90% 99,80%
S (10 min) + EC (30min)
100,3 A/m2 82,90% 54,90% 98,60%
150,4 A/m2 80,60% 61,70% 99,80%
200,5 A/m2 78,20% 42,80% 99,80%
Como se observa en la Figura 4.70, las remociones del conjunto de
parámetros medidos del proceso de S/EC son mejores a los de EC, solo si
se aplican una flujo de energía mayor ≥ 150 A/m2.
141
Figura 4.70. Comportamiento de los parámetros para los proceso de
Electrocoagulación y proceso secuencial de sonicación/electrocoagulación.
4.11.6. Proceso secuencial de sonicación (lotes) / electrocoagulación (lotes)
vs sonicación (lotes) / electrocoagulación (continuo).
Parar comparar los procesos de S (lotes) / EC (lotes) y
S (lotes) / EC (continuo), se seleccionaron a los porcentajes de remoción
más eficientes.
Para el proceso de S (lotes) / EC (lotes) se trabajó a una sonicación de
35 kHz, 4,8 L de muestra y 10 minutos. Respecto a la electrocoagulación,
se trabajó a 100,3 A/m2, 5 L de muestra, electrodos de hierro y 30 minutos.
Para el proceso de S (lotes) / EC (continuo) se trabajó a una sonicación de
35 kHz, 4,8 L de muestra y 10 minutos. Respecto a la electrocoagulación
(continuo), se trabajó a 100,3 A/m2, Q=0,18 L/min, electrodos de hierro y
30 minutos. Al comparar ambos proceso se observa el siguiente
comportamiento:
0,00%
10,00%
20,00%
30,00%
40,00%
50,00%
60,00%
70,00%
80,00%
90,00%
100,00%
100,3 A/m2 150,4 A/m2 200,5 A/m2 100,3 A/m2 150,4 A/m2 200,5 A/m2 100,3 A/m2 150,4 A/m2 200,5 A/m2
EC (30 min) S (10 min) + EC (20min) S (10 min) + EC (30min)
Proceso de Electrocoagulación vs Proceso Secuencial Sonicación/Electrocoagulacion
DBO5
DQO
CF
142
Tabla 4.12. Variación y porcentajes de remoción de los procesos
S (lotes) / EC (lotes) y S (lotes) / EC (continuo).
Procesos (35kHz;
100,3 A/m2)
S (lotes, 10 min) + EC (lotes, 30 min)
S (lotes, 10 min) + EC (continuo, 60 min)
Parámetros
∆pH 0,4 0,4
∆T 1,9 1,3
DBO5 82,90% 76,14%
DQO 54,90% 21,13%
CF 98,60% 99,45%
Como se observa en la Figura 4.50, las remociones del conjunto de
parámetros medidos de los procesos de S (lotes) /EC (lotes) y
S (lotes)/EC (continuo) son similares, alcanzando levemente un mayor
porcentaje de remoción en el proceso S (lotes) /EC (lotes), sobre todo más
notorio en el parámetro de DQO.
143
Figura 4.71. Comportamiento de los parámetros para los procesos
secuenciales de S (lotes) /EC (lotes) y S (lotes) /EC (continuo).
Para la elección de todos los casos dependerá de las siguientes
condiciones (Florencio Pérez & Cienfuegos Páucar, 2013):
1. Caudal y tipo de caudal (continuo o discontinuo).
2. Carga contaminante del efluente a tratar.
3. Espacio disponible de la PTAR.
4. Rendimiento requerido del tratamiento.
5. Costos de mantenimiento.
6. Inversión inicial de la obra.
Para el efluente proveniente de la PTAR-SJM, hay una gran ventaja de
tratamiento por lotes de los proceso de S (lotes) / EC (lotes).
82,90%
54,90%
98,60%
76,14%
21,13%
99,45%
0,00%
10,00%
20,00%
30,00%
40,00%
50,00%
60,00%
70,00%
80,00%
90,00%
100,00%
DBO5 DQO CF
Electrocoagulación por lotes vs Electrocoagulación por continuo
S (lotes, 10 min) + EC(lotes, 30 min)
S (lotes, 10 min) + EC(continuo, 60 min)
CAPITULO V
V. Evaluación técnica y económica
El proceso secuencial de sonicación y electrocoagulación para tratar el efluente de
la planta de tratamiento de aguas residuales de San Juan Miraflores ha
demostrado buenos resultados a escala laboratorio. Respecto a la sonicación, se
obtuvo un tiempo óptimo de 10 min. Respecto a la electrocoagulación por lotes,
pudimos obtener la densidad de corriente óptima a 100,3 A/m2; luego para flujo
continuo, un caudal óptimo de 0,18 l/min. A continuación se presenta el
presupuesto para la construcción de una planta de tratamiento secuencial de
sonicación y electrocoagulación al efluente de la PTAR- SJM, después del
tratamiento biológico, para mejorar la calidad del agua.
El dimensionamiento a escala Industrial de los equipos para tratar 2 m3/h de agua
residual procedente de PTAR- SJM manteniendo el tiempo de residencia que se
encontró para el reactor piloto, la distancia entre los electrodos (cátodo y ánodo)
constante, nos permitirá encontrar el número de electrodos en el reactor industrial.
Figura 5.1. Esquema de un sistema de sonicación/electrocoagulación a escala
industrial.
5.1. Cálculo del volumen del reactor industrial de electrocoagulación
A partir de los datos obtenidos del caudal óptimo y el volumen del reactor
podemos calcular el volumen del reactor industrial lo que equivale a:
145
Caudal óptimo:
Q=0,18 L/min
Volumen del reactor:
V=5 Litros
Tiempo de residencia:
t=V/Q = 0,46 horas
Entonces el volumen del reactor industrial será el producto del caudal
industrial por el tiempo de residencia: V =0,9 m3
Debido a la formación de espuma que se da por diseño se debe considerar
un factor de 0,8 para el volumen del reactor industrial.
Entonces:
Volumen del reactor = 1,7 m3
Figura 5.2. Dimensiones del reactor continuo a escala industrial (1,2 m x
1,2 m x 1,2 m)
5.2. Cálculo del número de electrodos
Se calcula el número de electrodos conociendo las dimensiones del
reactor, la distancia y el espesor de cada electrodo.
Ne= (L – S) / (E+S) (5.1)
146
Dónde:
L: Largo del reactor industrial (1,2 m)
E: Espesor de la plancha de hierro (0,005 m)
S: Distancia entre electrodos (0,03 cm)
Ne: Número de electrodos
Reemplazando los datos en la ecuación (5.1) y resolviendo, se obtiene:
Ne = 33 electrodos
El total de electrodos es de 33 cuya distribución es 16 ánodos y 17
cátodos, pero como se va a consumir solo el ánodo los electrodos del
cátodo podrían reemplazarlos por mantenerse intacto en el proceso de
electrocoagulación.
5.3. Cálculo del área total del electrodo
Las dimensiones de cada electrodo de hierro es 1,1 m x 1,1 m x 0,005 m.
El área seria 1,21 m2, entonces el área anódica total sería de 19,36 m2.
5.4. Cálculo de la intensidad de corriente de la EC
Para el cálculo de la intensidad de corriente a nivel industrial seria el
producto de la densidad óptima por el área total del ánodo industrial.
Intensidad de corriente=1 941,8 A
Potencia =4,7 kW
5.5. Cálculo de la energía consumida por volumen de efluente
La expresión matemática para el cálculo de la energía consumida es:
E=I*V/(Q*1000)
147
Dónde:
E: Energía consumida por volumen de efluente tratado (KWh/m3)
I: Intensidad de corriente (1 335 A)
V: Voltaje (2,4 Voltios)
Q: Caudal del efluente tratado (2,0 m3/h)
Reemplazar los datos, se tiene que la energía consumida por volumen de
efluente es:
E= 2,3 kWh/m3
5.6. Consumo de electrodo de hierro
El consumo de hierro por volumen de efluente se calcula con la Ley de
Faraday con la siguiente ecuación matemática:
MFe / Veflue = *I*M/ (F*n*Q*1000)
Dónde:
MFe: Masa de hierro consumida (kg)
Veflu: Volumen de efluente (m3)
I: Intensidad de corriente (1941,8 A)
M: Masa molar del hierro (55,8 g/mol)
F: Constante de Faraday (96 485 C/mol)
n: Número de electrones transferidos (2 para el caso del Fe)
Q: Caudal de efluente (2,0 m3/h)
El consumo de hierro por volumen de efluente es:
MFe / Veflue = 1,01 kg de hierro m3 de efluente.
5.7. Costo total para un sistema de sonicación y electrocoagulación a
escala industrial
El costo total para poner en funcionamiento una planta de tratamiento con
un sistema de electrocoagulación a nivel industrial seria la suma de los
costos de los reactores de almacenamiento, agitador, reactores
148
Industriales, planchas de hierro, rectificador y el costo de enfibrado de los
reactores, y el filtro prensa. El costo anual por reposición de los electrodos
y de los equipo será anual. El costo por consumo de energía será
considerado anualmente. Se tomó como como precio base de cent. S/.
23,05/kWh; costo actualizado por la empresa de distribución Luz del Sur
S.A.A. al 01 de mayo de 2017 en la región de Lima
Tabla 5.6. Presupuesto del costo para el sistema de tratamiento de
electrocoagulación de flujo continuo.
(*) Precios cotizados: junio del 2017.
N° Descripción Unidad Cantidad Precio
unitario (S/) Precio total parcial (S/)
1 Rectificador (10000 A – 24 V)
Unid. 1 6 290 6 290
2 Sonicador (Capacidad 30 L)
Unid. 12 3 175 38 100
3
Plancha de hierro 2,4mx1,2mx5mm
Unid. 49 320 15 680
4
Mano de obra para el soldado de los equipos y pintado
Unid. 3 1300 3 900
5 Recubrimiento con fibra de vidrio
Unid. 3 650 1 950
6 Filtro prensa con moto reductor
Unid. 1 12 000 12 000
7 Agitador 1,5 hp Unid. 1 1 450 1 450
8 Energía eléctrica
kWh 47 177 0.23 10 874,37
Costo total 90 244,4
CAPITULO VI
VI. Conclusiones
Se mejoró la calidad del efluente de la planta de tratamiento de aguas
residuales de San Juan de Miraflores (PTAR-SJM) mediante un proceso
secuencial de sonicación/electrocoagulación, porque se redujo el
contenido de DBO5, DQO y CF.
El proceso secuencial de sonicación/electrocoagulación es aplicable para
el tratamiento del efluente de la planta de tratamiento aguas residuales,
siempre y cuando los CF del efluente de la PTAR sea menores a
940 NMP/100 ml.
6.1. Sonicación por lotes
6.1.1. En el proceso de sonicación se produce un aumento de la temperatura
conforme transcurre el tiempo, esto es debido al colapso de las burbujas
de cavitación en el efluente produciendo enormes cantidades de energía,
el tiempo de sonicación no debe superar de los 40 minutos debido a que
se llega a superar el LMP (T< 35 ºC).
6.1.2. Con la sonicación se pudo reducir la concentración de los parámetros de
STS, aceites y grasas, DBO5, DQO y coliformes totales, para un tiempo
de 10 minutos (tiempo óptimo), pero algunos parámetros como turbiedad
y coliformes fecales aumentaron; asimismo, se pudo comprobar que a
mayor de 10 minutos de sonicación la reducción de las concentraciones
no es muy considerable y los costos de energía eléctrica aumentarían.
6.1.3. Con el proceso de sonicación se pudo obtener una mayor remoción de
sólidos totales suspendidos de 60% a los 40 minutos; una máxima
remoción de aceites y grasas de 96,51% a los 30 minutos, una máxima
remoción de la demanda bioquímica de oxígeno de 25,84% a los
40 minutos, una máxima remoción de la demanda química de oxígeno de
12,14% a los 10 minutos y una máxima remoción de coliformes totales de
26,09% a los 10 minutos.
150
6.2. Proceso secuencial de sonicación y electrocoagulación por lotes
6.2.1. La sonicación (10 min) y electrocoagulación (30 min) por lotes, nos
permitió reducir considerablemente la concentración de los parámetros de
DBO5, DQO y CF; hasta el punto de encontrarse por debajo del Estándar
de Calidad Ambiental – categoría 3, para uso de riego de vegetales, el
cual es de referencia.
6.2.2. Para la sonicación y electrocoagulación por lotes, se encontró que los
parámetros óptimos de operación son: 10 minutos de sonicación (35 kHz;
4,8 L) y 30 minutos de electrocoagulación (100,3 A/m2; 5 L) ya que a
estos tiempos se encuentra niveles de remoción considerables (DBO=
82,9 %; DQO= 54,9 % y CF= 98,6 %) y un menor costo de energía
eléctrica.
6.2.3. Con el proceso de sonicación por lotes (10 min) y electrocoagulación se
pudo obtener una mayor remoción de DBO5 de 87% a los 40 minutos de
electrocoagulación (150,4 A/m2), una máxima remoción de la DQO de
87,5% a los 40 minutos de electrocoagulación (150,4 A/m2), una máxima
remoción de CF de 99,8% a partir de los 20 minutos de
electrocoagulación (150,4 A/m2 y 200,5 A/m2).
6.2.4. En la sonicación el pH se mantiene constante; sin embargo, con el
proceso de electrocoagulación el pH aumenta mientras transcurre el
tiempo, debido al incremento de los iones OH- como resultado de la
electrolisis del agua en el cátodo, el máximo pH que se obtuvo fue de 9,4
a una densidad de corriente de 200,5 A/m2 para un tiempo de 50 minutos
(tS+EC).
6.2.5. La sonicación por lotes (10 minutos) y electrocoagulación (30 min;
100,3 A/m2; 5 L) incrementa levemente el pH (de 7,9 a 8,3) y los STS (13
a 45 mg/L); sin embargo, ambos cumplen con el ECA - categoría 3, el
cual es de referencia. La concentración final de STS se encuentran muy
por debajo de los LMP (150 mg/L).
151
6.3. Proceso secuencial de sonicación por lotes y electrocoagulación a
flujo continuo
6.3.1. Para el sistema de sonicación por lotes y electrocoagulación a flujo
continuo los parámetros óptimos de operación elegidos son: Para la
sonicación, frecuencia de 35 kHz y 10 minutos. Para la
electrocoagulación, la densidad de corriente de 100,3 m2 y caudal óptimo
0,18 L/min, alcanzando la estabilidad del sistema en 30 minutos de
electrocoagulación, ya que a estas condiciones se incrementan los niveles
de remoción y se obtiene un menor costo de energía eléctrica.
6.3.2. La sonicación (10 minutos) y electrocoagulación a flujo continuo
(Q=0,18 l/min; 30 minutos) nos permitió reducir considerablemente la
concentración de DBO5 (remoción= 74,1 %) y CF (remoción= 99,45%), las
concentraciones finales de DBO5 y CF están por debajo del Estándar de
Calidad Ambiental – categoría 3, para uso de riego de vegetales, el cual
es de referencia. Asimismo, se redujo la concentración de DQO
(remoción = 51,84 %), sin embargo, no se redujo por debajo del ECA -
categoría 3.
6.3.3. La sonicación por lotes (10 minutos) y electrocoagulación a flujo continuo
(Q=0,18 L/min) incrementa levemente el pH (de 7,9 a 8,3) y los STS (5 a
15,7 mg/L); sin embargo, ambos cumplen con el ECA - categoría 3, el
cual es de referencia. La concentración final de STS se encuentran muy
por debajo de los LMP (150 mg/L).
VII.- Recomendaciones
1. Se recomienda homogenizar el efluente por medio de la agitación y tener un mejor
resultado de los análisis antes y durante la sonicación - electrocoagulación para
poder tener una mejor resultado en la remoción de los contaminantes.
2. Se recomienda lijar bien la superficie de los electrodos antes y después de cada
corrida ya que esto disminuye la resistencia eléctrica en los electrodos y por tanto
la eficiencia del proceso.
3. Se sugiere colocar un compartimiento adicional en la parte inferior del reactor
(Electrocoagulación) por lotes, para que los flóculos se vayan sedimentando
durante el proceso y no se pueda adherir a la superficie de los electrodos, ya que
estos tienden a reducir la eficiencia del proceso.
4. En el caso de la electrocoagulación se recomienda hacer un estudio adicional
para poder conocer las condiciones de trabajo si se intercambiara los polos y de
esta manera tener un desgaste más uniforme y poder alargar la vida útil de los
electrodos.
5. Cuando se realizó el sistema continuo se trabajó con un cilindro de 210 litros, se
graduó el flujo de alimentación al reactor de flujo continuo, pero no fue tan fácil
mantener constante la alimentación, se recomienda alimentar al sistema con un
recipiente de mayor área transversal ya que de esta manera se tendría un flujo
casi constante.
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Wang, C. T., Chou, W. L., & Kuo, Y. M. (2009). Removal of COD from laundry
wastewater by electrocoagulation/electroflotation. Journal of Hazardous Materials.
Wu, T. Y., Guo, N., Teh, C. Y., & Hay, J. X. W. (2013). Advances in Ultrasound
Technology for Environmental Remediation. Dordrecht: Springer Netherlands.
Yadav N, K. R. (2014). Effect of Two Waves of Ultrasonic on Waste Water
Treatment. Journal of Chemical Engineering & Process Technology, 5(3), 3-8.
Ziylan, A., Dogan, S., Agopcan, S., Kidak, R., Aviyente, V., & Ince, N. H. (2014).
Sonochemical degradation of diclofenac: byproduct assessment, reaction
mechanisms and environmental considerations. Environmental Science and Pollution
Research, 21(9), 5929-5939. https://doi.org/10.1007/s11356-014-2514-7.
157
IX- Anexos
ANEXO A - Certificado de acreditación del Laboratorio Certimin ante el
Instituto Nacional de Calidad (INACAL)
DCE-AC-305
ertificado
La Dirección de Acreditación del Instituto Nacional de Calidad - INACAL en ejercicio de las
INACAL :f"¡''.tltu:r, f J t1, IC:·I _..,
rle ( dlh lrn•
Acreditación
atribuciones conferidas por Ley N' 30?24 Ley de Creación del INACAL. y conforme al Reglamento de Organizacion y
Func10nes del INACAL, aprobado por DS N 004-2015-PRODUCE y modificado por DS N' 008-2015-PRODUCE
OTORGA la presenl Renovación de la Acreditación a
I I S.
Cn su calidad de Laboratorio de Ensayo
Con base en el cumplimien o de los requisitos establecidos n la norma NTP-ISO/IEC 17025 2006 Requisitos Generales
para la Competencia de los Laboratorios de Ensayo y Calibración.
para el alcanc d la acreditación contenido n el formato DA-acr-05P-17F
facultándolo a emitir Informes de Ensayo con Valor Oficial
Sede Acreditada· Av Las Vegas N 845 distnto de San Juan de Miraflores provincia de Lima y depa11amento de Lima
Registto N LE 022
F cha de Renovación 02 de mayo de 2015
Fecha de Vencimiento 02 de mayo de 2019
fecha de emislon 07 de setlembrP d 2015 DA acr 01P O M Ver 00
DOCUMENTO NO CONTROLADO· Fuera del Alcance do Actualiz.ad6n
--,
ANEXO B - Informes de ensayo del laboratorio Certimin
LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUANO DE ACREDITACIÓN INACAL - DA
CON REGISTRO N° LE 022
SOLICITANTE:
DOMICILIO LEGAL
SOLICITADO POR:
SOLICITUD DE SERVICIO AMBIENTAL:
REFERENCIA
FECHA DE MUESTREO :
PROTOCOLO:
TIPO DE MUESTRA:
NÚMERO DE MUESTRAS
PRESENTACIÓN DE LAS MUESTRAS:
CONDICIÓN DE LAS MUESTRAS : RECEPCIONADAS
FECHA DE RECEPCIÓN :
IDENTIFICACIÓN DE LAS MUESTRAS:
FECHA DE EJECUCIÓN DE ENSAYO :
FECHA DE REPORTE :
PERIODO DE CUSTODIA :
INFORME DE ENSAYO
Nº
JUL 1055..R16
ENRIQUE CONDOR SALAZAR
�N·u:.022
Calle Rio Morona Mz A U. 13 Urb. Los Angeles de Vitarte Ate, Lima,
Enrique Candor Salazar
SSA Nº 633-16; Cadena de Custodia Nº 1647-16/CERTIMIN
Tesis UNI Mz A Lt 13 Urb. Los Angeles Ate I Lima/ Lima Arco Los Angeles
2016/07/06
Agua Residual Doméstica
19
Frascos de polietileno y vidrio refrigerados y sellados.
Muestra en buena condición para el análisis solicitado.
Jueves, 07 de Julio de 2016
Según se indica.
2016-07-07 al 2016-07-23
Sábado, 23 de Julio de 2016
Hasta un mes. De acuerdo a las recomendaciones de la metodologla o norma empleada.
SANTOS OROYA ROJAS
Gerente de Laboratorios
CIP. 053644
Lima, 23 de Julio de 2016
-Pmhlblda la reproducdOn lotal o pardal de este inlonne. &In euto�uici6n escr11a de CERTIMIN S.A."
Página 1 de 4
INACAL
"los resutados de tos ensayos no deben ser ulllluidos como una co�lficacl6n de conlonnldad con nonnas de producto o como ce rtif,cado del sis teme de calidad
de la entidad que lo produce"". los resultados corresponden a las muestres Indicadas.
CERTIMIN S.A. Av. Las Vegas N"845-San Juan de Mlraflores Telf.: (51-1) 205-5656 e-mail : [email protected]
UJ ... z w ...w ":;¡ o u o <( o Q'. o ...:::, <(
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LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUANO DE ACREDITACIÓN INACAL • DA CON REGISTRO N°LE 022
INFORME DE ENSAYO
Nº
JUL 1055.R16
� Aacf.stro N"U .022
RESULTADOS
Nº
,
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
Muestras
Codigo de Servicio M::iNO000 MlNO000 Elemento Fecha Tipo
Unidad Monitoreo Muestra
Limite de O..tecci.6n LO
PTARD-01 2016-07-06 14:00:00 Agua Residual Doméstica
SON-01 2016-07-06 14:30:00 Agua Residual Doméstica
EC-1-01 2016-07-06 14:40:00 Agua Residual Doméstica
EC-1-02 2016-07-06 1S:OO:OO Agua Residual Doméstica
EC-1-03 2016-07-06 15:20:00 Agua Residual Doméstica
EC-1--04 2016-07-06 15:30:00 Agua Residual Doméstica
EC-2-01 2016-07-06 16:00:00 Agua Residual Doméstica
EC-2-02 2016-07-06 16:10:00 Agua Residual Doméstica
EC-2-03 2016-07-06 16:30:00 Agua Residual Doméstica
EC-2--04 2016-07-06 17:00:00 Agua Residual Doméstica
EC-3--01 2016-07-06 17:10:00 Agua Residual Doméstica
EC-3--02 2016-07-06 17:30:00 Agua Residual Doméstica
EC-3--03 2016-07-06 18:00:00 Agua Residual Doméstica
EC-3-04 2016-07-06 16:40:00 Agua Residual Doméstica
EC-01 2016-07-06 19:00:00 Agua Residual Doméstica
EC-02 2016-07-06 19:30:00 Agua Residual Doméstica
EC-03 2016-07-06 20:00:00 Agua Residual Doméstica
DP-01 2016-07-06 00:00:00 Agua Residual Domé&tica
DP-02 Inicio: 2016-07-06 00:00:00 Agua Residual Doméstica
Muestras proporciondas por el cliente.
Las muestras perecibles fueron analizadas dentro de las 24 horas. Temperatura·, pH": son datos proporcionados por el cliente.
Elementos
HIU000 HIU000 Ml>.0183 Temperatura• pll* Tuxbide:z:
•e Unidad pll NTU l.O
18.S 7.90 3.5
22.2 7.90 4.2
19.6 8.10 121.0
19.4 8.20 91.5
20.4 8.30 57.7
22.6 8.40 16.2
20.0 8.30 45.6
21.2 8.50 91.3
21.3 8.80 82.2
21.S 9.10 36.7
21.0 8,70 56.2
22.0 8.80 59.1
19.5 9.10 106.0
22.7 9.40 21.1
19.6 8.40 25.8
19.9 8.30 96,8
22.5 9.00 69,1
- - -
- - -
Ml>.0174 �0002 Ml>.0756 MJ>.0757 MJ>.0789
STS AcyG OBO OQO Colifo:cmes Fecales.
mg/L mg/l. mg/L mg/L !lMP/l0OmL s o.so 2 .00 10 .00 l.8
13 <O.SO 18.47 84.07 940.0
11 <O.SO 15.37 84.52 490.0
91 <O.SO 6.29 60.75 290.0
84 <O.SO 3.75 79.25 230.0
45 <O.SO 3.16 37.93 13.0
33 <O.SO 3.27 26.92 <1.8
67 <O.SO 3.34 35.44 2.0
70 <O.SO 3.28 29.25 <1.8
76 <O.SO 3.58 32.20 4.5
33 <O.SO 2.40 10.47 <1.8
66 <O.SO 10.65 65.23 2.2
65 <O.SO 2.83 19.43 <1.8
86 <O.SO 4.02 48.09 <1,8
38 <O.SO 5.53 21.53 <1.8
33 <O.SO 3.45 26.66 <1.6
35 <O.SO 4.95 36.17 <1.8
62 <O.SO 3.37 34.67 <1.8
- - - - 13.0
- - - - 230.0
CERTIMIN S.A.. Av. La• V•o- &45 - S•n J� d• Ml..,.flo,.... T-,r.i (■"T-1) 2015-Saeca. -,n-.JI : -"'mlnca,a.�Jmln.-
Página 2 de 4
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mLABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUANO
DE ACREDrT ACIÓN INACAL • DA CON REGISTRO NºLE 022
INFORME DE ENSAYO
NºJUL1055.R16
Página 3 de 4
� �lrU-<>22
CONTROL DE CALIDAD
Nº
1
2
3
4
5
6
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8
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11
12
13
14
15
Muestras QC Elementos
Codigo de Servicio Ml\.0183 Mll.0174 Ml\.0756 Ml\.0757 Ml\.0789
Elemento TUl:bidu STS OBO OQO Col.ifo,:mes Fecales.
Unidad NTU mg/L mg/L mg/L NMP/l0OmL
Limite de O..tacción LO 1.0 s 2.00 10.00 1.8
Adición (% Recup.) - - - 101.9 -
Adición (% Recup.) - - - 107.8 -
Adición Rango(%) - - - 85.0 - 115,0 -
STO· Recuperación Obtenido(%) 100.0 100.0 90.6 108.0 -
STO - Rango (o/o) 95.0-105.0 91.0-109.0 84.�115.4 80.0-120.0 -
PTARD-01 (Original) - - 18.47 - -
EC-1-01 (Original) - 91 - - -
EC-1-01 (Oup) - 91 - - -
E�1 (Original) - 66 - 65.23 -
EC-3-01 (Oup) - 66 - 65.97 -
EC-3-04 (Original) 21.1 - - - -
EC-3-04 (Oup) 21.2 - - - -
EC-02 (Original) - - - - <1.8
EC-02(Dup) - - - - <1.8
Blanco <1.0 <5 <0.20 <10.00 -
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LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUANO DE ACREDITACIÓN INACAL • DA CON REGISTRO NºLE 022
METODOS DE ENSAYO Y CODIGOS DE SERVICIO
INFORME DE ENSAYO
NºJUL1055.R16
N' Descripción
1
2
3
4
5
6
7
8
Analito Denominación Cod. Serv (ll Norma o Referencia
Temperatura· Temperatura MA1000 SMEWW 22nd Ed. 2012 Part-2550 B. Pág 2�9 .APHA •AWWA• WEF. Temperature. Laboratory and Field Method
pH pH MA1000 SMEWW 22nd Ed. 2012 Part-4500-H+ A, B. Pág 4-91 .APHA -AWWA-WEF. pH Value. Electrometrlc Method
SMEWJV 22nd Ed.2012. Part-9221 E1. Pág.9-74,9-75. APHA-AWWA-WEF. Multiple-Tube Coliformes Fecales. Coliformes Fecales (Termotolerantes) MA0789 Fermentation Technique far Members of the Coliform Group. Fecal Coliform Procedure.
Thermotolerant coliform test (EC medlum).
DBO Demanda Bioquimica de Oxígeno MA0756 SMEI/I/IN 22nd Ed. 2012.Part-5210 B. Pag 5-5. APHA-AWWA-WEF. Biochemical Oxygen Demand (BOD). 5- Day BOD Test
DQO Demanda Quimlca de Oxígeno MA0757 SMEWW 22nd Ed.2012. Part-5220 D. Pág.5-20 APHA-AWWA-WEF. Chemicat Oxygen Demand (COD).Closed Reflux, Colorimetric Method.
STS Sólidos Totales Suspendidos MA0174 SMEWW 22nd Ed. 2012.Part-2540 D. Pág 2�6 APHA AI/I/INA WEF.Solids. Total Suspended Sollds Dried al 103 - 10S'C.
Turbidez Turbidez MA0183 SMEWJV-APHA-AWWA-WEF. 22nd Ed. 2012. Part-2130 B.Pág 2-13. Turbidity. Nephelometric Method.
AcyG Aceites y grasas MA0002 SMEWJV 22nd Ed. 2012.Part-5520 B Pag 5-40. APHA-AWWA-WEF. Oil and Grease.
Liquid-Liquid, Partition - Gravimetric Method
(í Los métodos indicados no han sido acreditados por el INACAL-DA.
(1} SMEWW: Standard Methods far the Examination of Water and Wastewater. APHA : American Public Health Association. AWWA: American Water Works Association. WEF : Water Emnronment Federation. EPA : Environmental Protection Agency.
ASTM: American Society far Testing and Materials. ISO: lntemational Organization far Standardization. NTP: Norma Técnica Peruana. NIOSH: The National lnstitute far Occupational Safety and Health.
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Página 4 de 4
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LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUANO DE ACREDITACIÓN INACAL- DA
CON REGISTRO N°LE 022
SOLICITANTE:
DOMICILIO LEGAL
SOLICITADO POR:
SOLICITUD DE SERVICIO AMBIENTAL:
REFERENCIA
FECHA DE MUESTREO :
PROTOCOLO:
TIPO DE MUESTRA:
NÚMERO DE MUESTRAS :
PRESENTACIÓN DE LAS MUESTRAS:
CONDICIÓN DE LAS MUESTRAS : RECEPCIONADAS
FECHA DE RECEPCIÓN :
IDENTIFICACIÓN DE LAS MUESTRAS:
FECHA DE EJECUCIÓN DE ENSAYO:
FECHA DE REPORTE :
PERIODO DE CUSTODIA :
INFORME DE ENSAYO
Nº
AGO1027.R16
ENRIQUE CONDOR SALAZAR
Calle Rio Morona Mz A Lt 13Urb. Los Angeles de Vitarte Ate, Lima,
Enrique Condor Salaz.ar
SSA N°722-16 Cadena de custodia Nº1794-16/ CERTIMIN
Tesistas UNI Carabayllo / Lima / Lima Monitoreo Calidad de Agua
2016/07/29
Agua Residual Doméstica
14
Frascos de polietileno refrigerados y sellados.
Muestra en buena condición para el análisis solicitado
Sábado, 30 de julio de 2016
Según se indica
2016-07-30 al 2016-08-10
Miércoles, 10 de agosto de 2016
Hasta un mes. De acuerdo a las recomendaciones de la metodologla o norma empleada.
SANTOS OROYA ROJAS
Gerente de Laboratorios
CIP. 053644
Lima, 10 de agosto de 2016
"Prohibida la reproducción total o parcial da esto Informo, Gin autorización escrito do CERTIMIN S.A."
Página 1 de 4
INACAL
DA - Perú
.. Los reoulados de los ensayos no deben aer uUíozados como una certificación do conformidad con normas do producto o como certificado del sistema de calidad
de le entidad que lo produce-. Los resUlledos corresponden e les muestres Indicadas.
CERTIMIN S.A. Av. Las Vegas N'845-San Juan de Mirafiores Tell.: (51-1) 205-5656
e-mail : [email protected]
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LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUANO
DE ACREDITACIÓN INACAL • DA CON REGISTRO Nº LE 022
INFORME DE ENSAYO
Nº
AGO1027.R16
� �Jr,,-U-022
RESULTADOS
N º
1
2
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4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
Muestras Elementos
COdigc de servicio M>NOOOO M>NOOOO Ml>.1000 Ml>.1000 MA0l83 HA0002 MA0l74 Ml'.0756 Ml'>.0757 Elemento Fecha Tipo Temperatura• pll,. 'l'uu>iti.z: 1'cyG STS PBO DQO
Unidad Monitoreo lmestra •e Unidad pR NTU mg/L mg/L mg/L mg/L
Limite de Petecci6n LI> l.O o.so s 2.00 10.00
PTARD-01 2016-07-29 12:00 Agua Residual Doméstica 18.0 7.90 2.1 <O.SO <5 28.88 69.43
SON-01 2016-07-29 12:30 Agua Residual Doméstica 21.0 7.90 6.4 <O.SO 5 27.30 64.54
Q1-01 2016-07-29 17:00 Agua Residual Doméstica 19.3 8.00 132.0 <O.SO 104 19.17 55.14
Q1-02 2016-07-29 17:15 Agua Residual Doméstica 19.4 8.00 85.8 <O.SO 75 7.47 51.84
Q1-03 2016-07-29 17:30 Agua Residual Doméstica 19.4 8.30 61.4 <O.SO 60 8.38 55.36
Q1-04 2016-07-29 17:45 Agua Residual Doméstica 19.3 8.30 20.2 <O.SO 15.7 6.89 54.76
Q2-01 2016-07-29 18:00 Agua Residual Doméstica 19.2 8.00 107.0 <O.SO 94 24.52 64.32
Q2-02 2016-07-29 18:15 Agua Residual Doméstica 19.3 8.20 68.6 <O.SO 60 8.93 45.48
Q2-03 2016-07-29 18:30 Agua Residual Doméstica 19.3 8.30 69.3 <O.SO 66 8,33 53.88
Q2-o4 2016-07-29 18:45 Agua Residual Doméstica 19.1 8.40 13.0 <O.SO 11.6 9.68 45.60
Q3-01 2016-07-29 19:00 Agua Residual Doméstica 18.7 8.00 27.6 <O.SO 13 18.24 65.36
Q3-02 2016-07-29 19:15 Agua Residual Doméstica 18.9 8.00 36.7 <O.SO 20 16.05 50.76
Q3-03 2016-07-29 19:30 Agua Residual Doméstica 18.7 8.00 34.4 <O.SO 27 9.45 55.52
Q3-04 2016-07-29 20:00 Agua Residual Doméstica 18.5 8.10 33.3 <O.SO 33 22.55 60.0S
Muestras proporcionadas por el cliente. Las muestras pereclbles fueron analizadas dentro de las 24 horas.
Temperatura·, pH": son datos proporcionados por el cliente.
Ml'>.0789 Coli:fo:,nes Fecal.es.
NMP/lOOmL l . 8
330.0
320.0
170.0
<1.8
<1.8
<1.8
170.0
60.0
49.0
28.0
170.0
70.0
65.0
30.0
Página 2 de 4
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CONTROL DE CALIDAD
Muestras QC
Codigo de Servicio Ml'.0183 MM174
Nº
Elemento Tw:bidez STS
Unidad NTU mq/L
Limita da Ocatacci6n LO 1.0 5
1 Adición (% Recup.) - -
2 Adición (% Recup.) - -
3 Adición Rango(%) - -
4 STD - Recuperación Obtenido(%) 100.0 100.0
5 STD - Rango(%) 95.0-105.0 91.0-109.0
6 PTARD-01 (Original) - -
7 01-02 (Original) - 75
8 01-02 (Dup) - 73
9 Q2-01 (Ori¡jnal) 107.0 -
10 02-01 (Dup) 106.0 -
11 03-03 (Original) - -
12 Q3-03 (Dup) - -
13 Blanco <1.0 <5
LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUANO
DE ACREDITACIÓN INACAL - DA CON REGISTRO NºLE 022
INFORME DE ENSAYO
Nº AGO1027.R16
Elementos
MM756 Ml'Jl757 Ml'Jl789
DBO DQO Colifo:r:mes !i"ecales.
mq/L mq/L 1IIMP /1 OOIIIL
2.00 10.00 1.8
- 96.1 -
- 94.2 -
- 85.0 - 115.0 -
96.9 102.9 -
84.6-115.4 80.0-120.0 -
28.88 - -
- - <1.8
- - <1.8
- - -
- - -
- 55.52 -
- 55.29 -
<0.20 <10.00 -
Página 3 de 4
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\11
LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUANO DE ACREDITACIÓN INACAL- DA CON REGISTRO NºLE 022
METODOS DE ENSAYO Y CODIGOS DE SERVICIO
INFORME DE ENSAYO
NºAGO1027.R16
N' Descripción
1
2
3
4
5
6
7
8
Analito Denominación Cod.Serv (1) Norma o Referencia
pH • pH MA1000 SMEWW 22nd Ed. 2012 Part-4600-H+ A, B. Pág 4-91 .APHA ·AWWA· WEF. pH Value. Electrometric Method
Temperatura• Temperatura MA1000 SMEWW 22nd Ed. 2012 Part-25S0 B. Pág 2-69 .APHA -AWWA- WEF. Temperatura. Laboratory and Fleld Method
Turbidez Turbidez MA0183 SMEWVV-APHA-AWVVA-WEF. 22nd Ed. 2012. Part-2130 B.Pág 2-13. Turbidity. Nephelometric Method.
SMEWVV 22nd Ed.2012. Part-9221 E1. Pág.9-74,g.75. APHA-AWWA-WEF. Multiple-Tube Coliformes Fecales. Coliformes Fecales (Termotolerantes) MA0789 Fermentation Technique for Members of the Coliform Group. Fecal Coliform Procedure.
Thermotolerant coliform test (EC medium).
DBO Demanda Bioquímica de Oxigeno MA0756 SMEWVV 22nd Ed. 2012.Part-5210 B. Pag 5-5. APHA-AWWA-WEF. Biochemical Oxygen Demand (BOD). 5- Day BOD Test
DQO Demanda Qui mica de Oxigeno MA0757 SMEWVV 22nd Ed.2012. Part-5220 D. Pág.5-20 APHA-AWWA-WEF. Chemlcal Oxygen Demand (COD).Closed Reflux. Colorimetric Method.
STS Sólidos Totales Suspendidos MA0174 SMEWW 22nd Ed. 2012.Part-2540 D. Pág 2-66 APHA AWVVA WEF.Sol ids. Total Suspended Solids Dried at 103. 105'C.
AcyG Aceites y grasas MA0002 SMEWW 22nd Ed. 2012.Part-5520 B Pag 5-40. APHA-AWVVA-WEF. Oil and Grease.
Liquid-Uquid, Partition • Gravimetric Method
(") los métodos indicados no han sido acreditados por el lNACAL-DA.
(1) SMEWW: Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater. APHA : American Public Health Assoclation. AWWA: American Water Works Association. WEF: Water Environment Federation. EPA : Environmental Protection Agency.
ASTM: American Society for Testing and Material s. ISO: lntemational Organization for Standardization. NTP: Norma Técnica Peruana. NIOSH: The National lnstitute for Occupational Safety and Health.
Página 4 de 4
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5 e: o c.
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�
LABORA TORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL
ORGANISMO PERUANO DE ACREDITACIÓN INACAL - DA
CON REGISTRO NºLE 022
SOLICITANTE
DOMICILIO LEGAL:
SOLICITADO POR :
SOLICITUD DE SERVICIO AMBIENTAL:
REFERENCIA :
FECHA DE MUESTREO :
PROTOCOLO:
TIPO DE MUESTRA:
NÚMERO DE MUESTRAS
PRESENTACIÓN DE LAS MUESTRAS:
CONDICIÓN DE LAS MUESTRAS RECEPCIONADAS
FECHA DE RECEPCIÓN :
IDENTIFICACIÓN DE LAS MUESTRAS:
FECHA DE EJECUCIÓN DE ENSAYO :
FECHA DE REPORTE :
PERIODO DE CUSTODIA :
INFORME DE ENSAYO
Nº
DIC1258.R15
FERNANDO TRIGOSO V.
Av. Metropolitana N°
391, Urb. Carabayllo Comas, Lima,
Fernando Trigoso V.
SSA Nº 803-15; Cadena de Custodia Nº 2775-15/CERTIMIN
Universidad Nacional de lngenieria San Juan de Miraflores / Lima / Lima Monitoreo de Calidad de Agua
2015/12/16
Agua Residual Doméstica
6
Roglotro NU: ·022
Frascos de polietileno y vidrio refrigerados y sellados.
Muestra en buena condición para el análisis solicitado.
Jueves, 17 de Diciembre de 2015
Muestra en buena condición para el análisis solicitado.
2015-12-17 al 2015-12-28
Lunes, 28 de Diciembre de 2015
Hasta un mes. De acuerdo a las recomendaciones de la metodología o norma empleada.
SANTOS OROYA ROJAS Gerente de Laboratorios
CIP. 053644
Lima, 28 de Diciembre de 2015
Página 1 de 9
INACAL DA- Perú
"Prohibida la reproducción total o parcial de este Informe, sin autorización escrita de CERTIMIN S.A" . .
"Los resultados de los ensayos no deben ser utilizados como una certificación de conformidad con normas de producto o como certJficado del sistema de calidad
de la entidad que lo produce•. Los resultados corresponden a las muestras Indicadas.
LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUANO DE ACREDITACIÓN INACAL • DA CON REGISTRO N'LE 022
RESULTADOS
,..
1
2
3
◄
5
6
Muestras
Cod1go cLa ••-rYi.cio NO•ODOO N)llOOO0 Jll�t.o l'echa Tipo
Vl>Ldad �ld.Ur.o �ua
IL,i.ait:a CM Det.accün U> PTAR--01 2015--12-16 13:30 Agua Residual Oomhtiea
PTAR--02 2015-12-16 14:15 .A(1ua Residual Oomhtica
PTAR--03 2015--12-16 15:55 Agua Resldual OomhtJea PTAR--04 2015-12-16 11·10 Agua Residual Oomhtlea
PTAR--05 2015--12-16 10.05 Agua Residual Oomhtica
PTAR--08 2015-12-16 21·10 Agua Residual Oomtslica
Muestras proporcionadas por el ci1ente Las muestras pereclt:ies fueron imelizades dentro de les 24 horas Temperature·, pH", delas proporcionados por el chenta
KUOOO NUOOO �•tur•• pi•
•e Vl>Ldad pi
2&.1 7.&0
rTJJ 7.ao
.,,, 1.ao
34.7 7.ao
.. ,, 7.70
,1.2 1.ao
Elementos
NI.OllJ Ml.01'14 Nl.0002 NaOl.2.2 Nl.01.22 -....... ... ky<> &.g(t.) ll(t)
IITtJ ..,,,. .,.,,. .,.,,. ..,,,. 1.0 • 0.50 0.002 0,02
44 8 24 <O 50 <O 002 0.04
28 1 20 <O 50 - -
25 8 24 <050 - -
22 1 28 <O 50 - -
45 4 15 <050 - -
23 8 27 <050 - -
INFORME DE ENSAYO _,...,.. ,,.,
Nº
DIC1258.R15
Hl.01.22 Ml.0122 Ma.0122 Nl.0122 M.0122 Nl.0122
&a(t.) Baft.) .. (t.) li(t.)• &(t.) Ca(t.)
... JL .,,,,. .. /J. ..,,,. .. , . .,.,,. 0.001 0,001 0.000] 0.02 O.DOS 0.05
<0008 0.020 <O 0003 c:0.02 O 263 82 59 - - - - - -
- - - - - -
- - - - - -
- - - - - -
- - - - - -
Nl.0122
Cd(t.J
.,.,,. 0.001
0.001 -
-
-
-
-
•
Muestras
Cod.igo d. ••-n-j.ci.o Nl.0122 Nl.0122 Ka..01.22
¡,,• &l�t.o Ca(t.) Co(t.) Cr(t)
... ,. w,/L ..., .l..ia:ite de O.t.ección U> 0.02 0.002 o.oot
1 PTAR-01 <002 0.003 <O 004
2 PTAR-02 - - -
3 PTAR-03 - - -
4 PTAR--04 - - -
5 PTAR-05 - - -
6 PTAR-Oa - - -
LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUANO DE ACREDITACIÓN INACAL - DA CON REGISTRO N°LE 022
Elementos
Hl.012.2 Nl.0122 Ni\012.2 IQ.0122 Nl.0122 Ma.0122 Hl.0122 Hl.0122 Nl.0122 Nl.01.22
C\aft) h(t.) &(t.) Li(t:) �(t.) Nbft) Mo(t.) ••Ct) lli(t) •<ti
... ,. .,,,. ... , . .,,,. ... , . .,,, . ... , . ... , . ... ,. ... , .0.00] 0.01 0,01 o.oo• 0.02 0.001 o.oot 0,01 0.002 º·º'
O 005 0.13 32.11 0,107 10&3 0.038 <O 004 142 00 O 013 13 10
- - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
INFORME DE ENSAYO _ ...... ..,,
Nº
DIC1258.R15
Nl.0122 Ni\0122 W.0122 Hl.0122 Na.0122 Hl.0122
ft>(t) C(tJ .. (t.) a.102 Ct) anft) lz: Ct)
ag/L ... ,. ... , . .,,, . ...,. .,,,. 0.01 º·ªº' 0.02 0,02 0.001 0.0001
<001 <0008 <002 10.27 <O 007 O 8146
- - - - - -
- - - - - -
- - - - - -
- - - - - -
- - - - - -
Nl.0122
H(tJ
-,/L
0.01
<001
-
-
-
-
-
Muestras
C.OdJ.p de seno-1.cJ..o Nl.012.2 Ml.0122 Hl.0122
¡,,• al.-.At• Tl(t.) V(t.) SJl(t)
-,/L -,/L -,/L Lia1.t. de Det.ooci.6D � 0.05 o.oos 0.005
1 PTAR..01 O 019
2 PTAR-02 - - -
3 PTAR-03 - - -
◄ PTAR-0◄ - - -
5 PTAR-05 - - -
6 PTAR-06 - - -
LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUANO DE ACREDITACIÓN INACAL • DA CON REGISTRO NºLE 022
Elffilentos
Nll.075, Nl.0711 MI.O?tt IAD'71' ""º DOO C..1.iloa:ae• roca.lo•, Coli�•---• Tot.&l.••
-,/L -,/L at:P/lOCIIIIL lta/lOClaL 2 Ἴ 10.00 1.1 1.1
27 20 114 85 33000.0 70000.0
25.60 102,41 130000 O 130000 O
38.60 100 13 130000,0 230000 O
27.27 101.17 170000 O 170000 O
43 13 101 38 220000 O 220000 O
31.07 100 85 23000 O 23000 O
INFORME DE ENSAYO _.,...._..,
Nº DIC1258.R15
CONTROL DE CALIDAD
Muestras QC
Codi.90 da ler., ic.io Kl..011]
i,r· Sl-.to hz:bi.d.as
JITO
J..iai.t.a ._ Det.acci,n U> 1.0
1 Ad1dá1 (% Recup.) -
2 Adldál (% Recup ) -
3 Adldál Rango(%) -
4 STO - Recuperac:100 Obtenido(% 100.0
5 STD ·Rango(%) 05 .0-105.0
6 PTAR-01 (Origino!) -
7 PTAR-01 (Dup) -
1 PTAR-02 (Original) 28 1
9 PT AR-02 (Dup) 28 5
10 PTAR-03 (Onglnol) -
11 PTAR-03(Dup) -
12 PTAR-o4 (Original) -
13 PTAR-o4 (Dup) -
14 Blanco <1 0
LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUANO DE ACREOITACIÓN INACAL • DA CON REGISTRO N'LE 022
Elementos
Nl.0114 Ha.0002 IAOl.22 JA.01.22 Kl..0122 Nl.O122 Nil.0122 lG.0122
... .t.oyO "91tl .l.l(t) Ail(t) k(t) .. (t) Bi(t)•
.,.,,. _,,. .,.,,. .,.,,. ..,,,. ..,,,. ..,,,. ..,,,. • o.so 0.002 0,02 0.001 0.001 O. OOOJ 0.02
- 116.0 116.8 102.2 104.8 97.0 102 O 10.0
- Q4.0 - - - - - -
- 85 0 - 115.0 850-115.0 850-115.0 850- 115 O 850- 115 O 85.0 • 115 O 85.0-116.0
100.0 101 O gg 2 QB.4 102.6 95.2 102.4 10.0
Ql 0-109 O 900-1100 85 0-115.0 85 0.115 O 85 0-115.0 85 .0-115 O 850-1150 85.0-115.0
24 <O 50 <O 002 0.04 <0006 0.020 <00003 <0.02
24 <050 <O 002 O 04 <O 008 0.020 <00003 <0.02
- - - - - - - -
- - - - - - - -
- - - - - - - -
- - - - - - - -
- - - - - - --
- - - - - - - -
< 5 <0 50 <0002 <002 <0006 <O 001 <O 0003 <0.02
INFORME DE ENSAYO _ ....... .,
Nº DIC1258.R15
Nil.0122 Nl.0122 Nl.O122 kl.0122 11111.0122
act> Ca(t) cd(t) C.(t.) Co(t)
..,,,. ..,,,. ..,,,. ..,,,. ... ,. º·ºº' 0.05 0.001 0.02 0.002
99.8 Q4 4 93 8 1100 95 O
- - - - -
85.0-115 O 850-1150 850- 115 O 850-1150 85 0- 115.0
ggo go.7 992 102 O 98 2
850-115.0 85 0-115 O 850-1150 850-1150 850-1150
0.263 82.5 9 0.001 <002 O 003
O 270 84.37 0.001 < 002 O 003
- - - - -
- - - - -
- - - - -
- - - - -
- - - - -
- - - - -
<O 003 <005 <0001 <002 <O 002
Muestras OC
Codigo de Se.r,,i.cio Nl.01.22
�-&}-,,t<, Cr(t)
_,/L Li&i.t.e de Det.ecci,n U> O.OOf;
1 Adiclál (% Recup.) g5 6
2 Adiclál (% Recup.) -
3 Adiaál Rango(%) 85.0 -115.0
• STO - Reeuperaaál Obtenido (•'4 Q8.4
5 STO· Rengo(%) 85 0.115 O
6 PTAR-01 (Original) <O 0()4
7 PTAR-01 (Oup) <O 004
8 PTAR-02 (Original) -
9 PTAR-02 (Oup) -
10 PTAR-03 (Original) -
11 PTAR-03 (Oup) -
12 PT AR-04 (Origlnel) -
13 PTAR-04 (Oup) -
14 Blanco •O 004
LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITAD O POR EL ORGANISMO PERUANO DE ACREOITACIÓN INACAL • DA CON REGISTR O N'LE 022
Elementos
tA0122 Nl.01.22 Nl.01.22 tA012.2 Nl.0112 tA0122 Na0122 ,a.0122 CUCt) Fe(t) lt(t) Li.(t.) ... ,,1 HD(t) Mo(t.) ••lt)
_,/L _,/L -,/L _,/L _,/L _,/L _,/L -,/L o.oo, 0.01 0.01 o.oot 0.02 0.001 0,004 0.01
ge• 100 O gg g 103 2 Q7 1 g5 4 100 8 100 O
- - - - - - - -
INFORME DE ENSAYO
Nº OIC1258.R15
Nl.0122 tA0122 IG.0122
•ilt) •Ct) �(t.)
_,/L -,/L _,/L
0.002 o.o, 0,01
Q1 6 00 O 02.0
- - -
85.0-115 O 850-1150 85 O· 115.0 85.0-1150 85 O -115.0 85.0 • 115.0 85.0 - 115 O 85.0-1150 85.0-1150 85 O -115 O 850-1150
Q1.0 100.0 100 O 103 2 Q5.6 Q7.2 100 8 100 O 95 O 102 4 g4 0
85.0-115 O 85 0-115.0 85 0-115.0 85 0-115.0 85 0-115.0 850-1150 85.0-115 O 850-1150 850-1150 850-1150 850-1150
0 .005 O 13 32.11 0.107 1063 O 036 <O 004 142.00 O 013 13 10 <001
O 005 O 15 3283 O 111 10 86 O 037 <0004 145 10 O 014 1344 <001
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - -
<0003 <001 <001 <O 004 <002 <0001 <O 004 <001 <0002 <006 <001
lG.0122
Do(t)
_,/L
º·ººª
Q8 0
-
850-1150
98 4
850-1150
<O 006
•O 006
-
-
-
-
-
-
<0006
IN�CAL DA.-P.,-{a 1-...-... _ Ac1o,ci111,, ..
Nl.0122
a.(t)
-,/L
0.02
106 O
-
850-1150
102 O
850-1150
<002
<002
-
-
-
-
-
-
<002
Muestras QC
Codi,zo d. ••rTi.ci.o Hl.0122
.. &1-•t.o 1102 Ct.)
.. /l.
J..iait.e de Det.eccü11 U> 0.02
1 AdiclOn (% Recop.) 99 .6
2 AdlclOn (% Recop ) -
3 Ad/clOn Rango(%) 85.0 • 115.0
• STO - Recoperac,On Obtenido(% 100.0
5 STO - Rengo(%) SS 0-115.0
6 PT AR-01 (Qrig;nel) 1g_27
7 PTAR-01 (Oup) 10 77
& PTAR-02 (Original) -
9 PTAR-02 (Oup) -
,o PTAR-03 (Original) -
11 PTAR-03 (Dup) -
12 PTAR-04 (Original) -
13 PTAR-04 (Dup) -
,. Blanco <002
LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUANO DE ACREDrTACIÓN INACAL - DA CON REGISTRO N"LE 022
Elementos
Ha.012.2 Ka.0122 HI.Oln Nl.O122 Hl.0122 Kl.O122 Kl.075C ••Ct.l Sr(t.) TJ.Ct) Tl(t) VCt.) &D(t) DIIO
-,/L -,/l. .,./L -...JJ. -,/L -,/L _,./L
0.007 º·ººº' 0.01 o.os º·ºº' 0.005 2.00
87.0 110 2 104 .0 104.0 99.8 97 6 -
- - - - - - -
85.0-1150 85 O• 115.0 850 - 115.0 85.0-1150 850 - 1150 85 O· 115.0 -
101.2 110 .2 106 O 106.0 98.8 ºº·º 103 8
85 0--115 O 850-115 O 85 0.115.0 65.0.115 O 85 0-115 O 850-1150 84 6-1154
<0 007 0 .8146 <001 <005 <0003 0.010 27.20
<0007 O 6334 <001 <0 05 <O 003 O 023 28.60
- - - - - - -
- - - - - - -
- - - - - - -
- - - - - - -
- - - - - - -
- - - - - - -
cO oo; <O 0007 <0 01 <005 <O 003 •O 006 <O 20
INFORME DE ENSAYO _,.,.... . ..,
N°
DIC1258.R15
140757 Na07H KI.O'rU DO<> Col.i1oDM• �.cal.••. Colifo-=-as Tot.a.1.••
-,/L IIIIG'/10a.L Jl90/100ml. 10.00 1.1 1.1
85.2 - -
856 - -
850 - 1150 - -
101.g - -
80 0-120 O - -
- - -
- - -
- 130000 O -
- 130000,0 -
100 13 - -
09.93 - -
- - 170000 0
- - 170000 0
<1000 - -
LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUANO DE ACREDITACIÓN INACAL • DA CON REGISTRO N"LE 022
METODOS DE ENSAYO Y CODIGOS DE SERVICIO
INFORME DE ENSAYO
N° OIC1258.R15
Nº Descripción
1
2
'
�
5
6
7
a
9
10
Ana lito �001:únación Cod • .Serv U I Noma o Referencia
Temperatura• Temperatura MA1000 SMEWW 22nd Ed. 2012 Pnrt-2650 B. Pag 2-69 .APHA -AWWA- WEF. Temperature. Labor atory and Re-Id Method
pH' pH MA1000
SMEWW 22nd Ed. 2012 Part..CS()().fi♦ A. B. P6g '"'91 .APHA -AWWA- WEF. pH Value. E .. ctromMJlc MaU)O(I
Ac;G Aceites y grasas MA0002 SMEWW 22nd Ed 2012 Part�520 B Peg 5-40 APHA-AWWA-WEF 01 end Groase Llquid--Liquld. Part1lion - Gravimetnc t-.-\ethod
SMEWW 22rd Ed 2012. Part-9221 El P3g 9-74,Q.75 APHA-AWWA-WEF Mu111ple-Tube Cohformes Fecales. Colíformes Fecales (Termololerentes MA0780 Fermentallon T ochnlque for Members of the Coutorm Group Fecal Coliform Proc.edure
Thermotolerent eoliform test (EC m&dlum)
SMEWW 22nd Ed 2012 Pen-9221 B, P;)g �. 0-60 APHA-AWWA-WEF MullJple-Tube Colrform83 Totales Colrformes Tola les MA0786 Fermentatlon Tochnlque for Membera of the Col1form Group Standard ToLel Coliform
Fermenta!lon T ochnlque
DBO Demanda Bloqulmlca de Oxigeno MA0756 SMEWW 22nd Ed 2012 Pert-.5210 B Peg 5-5 APHA-AWWA-WEF 81ochemlcal Oxygen Oemand (800). 6- Oay 800 Test
000 Demanda Oulmlca de Ox,geno MA0757 SMEWW 22nd Ed 2012 Part-5220 O P:tg 5-20 APHA-AWWA-WEF Chemicel Oxygen Demand (COO).Closed Rofluit. Co1orlmetnc Method
STS S611dos Totales Suspendidos MA0174 SMEWW 22nd Ed 2012 Pen-2540 O Pag 2�6 APHA AWWA WEF Solids Total Suspended Sollds Oried 01 103. 1os•c
Turbidez. Turbidez MA01B3 SMEWW 22nd Ed 2012 Per!-2130 8 P� 2-12 APHA-AWWA-WEF Turbld11y Nephe1omelfic Melhod
Verlos Varios MA0122 EPA Melhod 200 7 Re\/lslérl 4 4 Oelermlnatlon of meta16 and uace elements in water and wastes by lnductlwily Coupled Plasmo- Atomic Emls.slon Speclfometry
(•) Los mModos Indicados no han skfo acteditados por el INACAL-OA.
(1) SMEWW Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater APHA. Americen PubUc Heallh As50ClaUon AWWA. Ameñcan Water Works A.ssoclallon WEF Watet EnWonment Federation. EPA. EnWonmental Protecllon Agency
ASTM. American Soctety for T esting and Materlals ISO; lntemetional Organlz.aUon for StandardtzBtion NTP Norma T�cnlca Peruana
IN�CAL DA. Po-\1 .,_., ...... ,_,. ..........
LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUANO DE ACREDITACIÓN INACAL • DA CON REGISTRO N'LE 022
nal lnshtute for Oceupallona1 Sefoty and Heelth
INFORME DE ENSAYO
Nº DIC1258.R15
..,_,.ll"U•Oll
LABORATORIO D ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUA O DE ACREDITACIÓN INACAL • DA
CON REGISTRO N • LE 022
SOLICITANTE :
DOMICILIO LEGAL
SOLICITADO POR:
SOLICITUD DE SERVICIO AMBIENTAL:
REFERENCIA :
FECHA DE MUESTREO :
PROTOCOLO:
TIPO DE MUESTRA:
NÚMERO DE MUESTRAS
PRESENTACIÓN DE LAS MUESTRAS:
CONDICIÓN DE LAS MUESTRAS : RECEPCIONADAS
FECHA DE RECEPCIÓN :
IDENTIFICACIÓN DE LAS MUESTRAS
FECHA DE EJECUCIÓN DE ENSAYO
FECHA DE REPORTE :
PERIODO DE CUSTODIA :
INFORME DE ENSAYO
N º DIC1003.R15
FERNANDO TAIGOSO V.
Av. Metropolitana N º 391, Urb. Carabayllo Comas, Urna,
Fernando Trigoso V.
SSA Ng 736-15 Cadena de Custodia NP 2517-15/CERTIMIN
Universidad Nacional de lngenieria Carabayllo / Lima / Lima Moniloreo de Calidad de Agua
2015/11/25
Agua Residual Doméstica
6
Reglu.ro N-U: �022
Frascos de polletileno y vidrio refrigerados y sellados.
Muestra en buena condición para el análisis solicitado.
Jueves, 26 de Noviembre de 2015
Según se indica.
2015-11-26 al 2015-12-03
Jueves, 03 de Diciembre de 2015
Hasta un mes. De acuerdo a las recomendaciones de la metodologla o norma empleada.
SANTOS OROYA ROJAS
Gerente de Laboratorios
C/P. 053644
Lima, 3 de Diciembre de 2015
"P1ohlbldo lo roproduc:ción I0Ial o parcial do 0010 lnlormo, oln oulorlzaclOn oscrilo do CEATIMIN S.A."
Página 1 do O
INACAL DI\· P 111
"Los rosullodoo do los onsayos no dobon uor uIlllzodos como una corllllooclOn do conlormldad con normas do produolo o corno co111ilcedo dol alaIomo do colldod
do lo onlldod quo lo produce·. Los rosullados corroopondon o las muoolros lndlcoda1.
e RTIMIN S.A. Av. Las Vegas N º 845-Sen Juan de Mlrallores Tell.: (51-1) 205-5650 o-moll : [email protected]
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Página 2 de 8
LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUANO DE ACREDITACIÓN INACAL • DA CON REGISTRO N º LE 022
�
RESULTADOS
N•
1
2
3
4
5
6
Muestras
Codigo de Servicio MONOOOO NONOOOO
Elemento Fecha Tipo Unidad Monitoreo Muestra
Limite de Det=ci.6n LO
PTAR-01 2015-11 -2515:45 Agua Residual Doméstica
PTAR-02 2015-11-25 16:30 Agua Residual Doméstica
PTAR-03 2015-11-2517:10 Agua Residual Doméstica
PTAR -04 2015-11-25 18:15 Agua Residual Doméstica
PTAR-05 2015-11-25 19:35 Agua Residual Doméstica
PTAR-06 2015-11-25 21 :50 Agua Residual Doméstica
Muestras proporcionadas por el cliente. Las muestras perecibles fueron analizadas dentro de las 24 horas. Temperatura·, pH', datos proporcionados por el cliente.
MAlOOO MAlOOO Mll.0183 T-.n¡>eratura• pB• Tuz:bidez
•e Unidad pB RTtJ
1.0
23.0 7.30 14.6
27.0 7.40 28.6
31.0 7.30 16.8
34.0 7.40 15.2
35.0 7.40 16 .4
36.0 7.40 14.7
Elementos
Mll.0174 MA0002 Mll.0122 Mll.0122 STS Ac:yG Ag(t) Al(t)
mg/L mg/L mg/L mg/L
s o.so 0.002 0.02
40 17.19 <0.002 o.os
24 1.48 - -22 0.93 - -
17 0.60 - -
16 0.71 - -
17 0.62 - -
INFORME DE ENSAYO N • DIC1003.R15
Mll.0122 Mll.0122 Mll.0122 Mll.0122 As(t) Ba(t) Be(t) Bi(t)•
mg/L mg/L mg/L mg/L
0.008 0.001 0.0003 0. 02
<0.008 0.020 <0.0003 c0.02
- - - -
- - .. -
- - -· -
- - - -- - - -
CERTIMIN S.A. Av. Las Vegas 845 - San Juan de Miraflores Tell.: (51-1) 205-5656. e-mail: [email protected]
Jl�r.:-e..-U:-02�
!0.0122 !0.0122 B(t) Ca(t)
mg/L mg/L
0.003 o.os
0.283 90.02
- -- -- -- -- -
Mll.0122 Cd(t) mg/L
0. 001
<0.001
-·.. ---
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i 5l::> ..,!"
• -
Muestras
Codigo de Servicio NA0122 NA0122 MA0122 Elemento Ce(t) Co(t) Cr(t)
Rº
Unidad mg/L mg/L rr,¡/L Limite de Detección LD 0.02 0.002 0.004
1 PTAR-01 <0.02 0.002 <0.004
2 PTAR-02 - - -
3 PTAR--03 - - -
4 PTAR-04 - - -
5 PTAR-05 - - -
6 PTAR-06 - - -
MA0122 Cu(t)
mg/L 0.003
<0.003
-
-
-
-
-
LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUANO DE ACREDITACIÓN INACAL - DA CON REGISTRO Nº LE 022
Elementos
NA0122 NA0122 M1<0122 NA0122 M>.0122 MA0122 MA0122 re(t) Jt(t) Li(t) Mg(t) Mn(t) !(o (t) Ra(t)
11JIJ/L mg/L mg/L 'lllq/L mg/L mg/L mg/L
0.01 0.01 0.004 0.02 0.001 0.004 0.01
0.12 30.44 0.094 11.33 0.039 <0.004 121.67
- - - - - - -
- - - - - - -
- - - - - - -
- - - - - - -
- - - - - - -
Mll.0122 MJl.0122 Ni(t) P(t)
ffJg/L rng/L 0.002 0.06
0.018 14.48
-- -
- -
- --
- --
-- -
INFORME DE ENSAYO
N º DIC1003.R15
Mll0122 MA0122 Mll.0122 Mll.0122 Pb(t) Sb(t) Se(t) Si02(t) mg/L m,;/L rr,¡/L m,;/L 0.01 0.008 0.02 0.02
<0.01 <0.008 <0.02 15.50
- - - -
- .. - -
- - - -
- .. - -
- -- - -
CERTIMIN S.A. Av. Las Vegas 845 - San Juan de Mlraflores Telf.: (51-1) 205-5656. e-mail: [email protected]
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� �ll"U-0�
MA0122 MA0122 MM122 Sn(t) Sr(t) l'i(t) mg/L mg/L mg/L 0.007 0.0007 0.01
0.033 0.7938 <0.01
- - -
- - -
- - -
- - --
- - -
�
Muestras
Codigo de servicio MA0122 Mll.0122 Ml\0122
!:ll!lllento Tl(t) V(t) Zn(t) Nº
Unidad m,g/I. m,;/r. m,;/r. Limte de Detección I.D o.os 0 . 003 0.005
1 PTAR--01 c0.05 «l.003 0.019
2 PTAR--02 - - -
3 PTAR--03 - - -
4 PTAR--04 - - ..
5 PTAR--05 - - .. 6 PTAR--06 - - -
Ml\0756
DBO
ro,¡/r. 2.00
25.77
20.91
20.59
21.81
19.11
20.84
LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR El ORGANISMO PERUANO DE ACREDITACIÓN INACAL • DA CON REGISTRO N ° LE 022
Elementos
Mll0757 Mll0789
DQO Coliformes recales.
m,;/r. l'IMP/lOOmr.
10.00 1.8
81.77 7900.0
71.84 17000.0
93.02 13000.0
82.16 22000.0
78.71 33000.0
91.85 11000.0
MJ>.0786
Colifo:cus TotalGs NMP/100mr.
l.S
23000.0
17000.0
33000.0
28000.0
46000.0
22000.0
INFORME DE ENSAYO
N º DIC1003.R15
CERTIMIN S.A. Av. Las Vegas 845. San Juan de Miraflores Tell.: (51-1) 205-5656. e-mail: [email protected]
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CONTROL DE CALIDAD
Muestras OC Codigo de Su,ricio MA01 83 MA0174
Elemento Turbidez STS Nº
Qnidad NTt1 mg/L Limite di! Deteccl6n LO 1 .0 s
1 Adición (% Recup.) - -
2 Adición (% Recup.) - -
3 Adición Rango (%) - -
4 STO - Recuperación Obtenido (%) 100.0 100.0
5 STO • Rango (%) 95.0-105.0 91.0-109.0
6 PTAR-01 (Original) - -
7 PTAR-01 (Oup) - -
8 PTAR-02 (Original) 28.6 -
9 PTAR-Q2 (Dup) 28.6 -
10 PTAR-03 (Original) - 22
11 PTAR-03 (Oup) - 20
12 PTAR-06 (Original) - -
13 PTAR-06 (Dup) - -
14 Blanco <1.0 <5
MA0002 AeyG
mg/L o.so
98.0
100.1
85.0 - 115.0
97.0
90.0-110.0
17.19
17.32
-
-
-
-
-
-
<0.50
LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUANO DE ACREDITACIÓN INACAL • DA CON REGISTRO N • LE 022
Elementos MA0122 MJ.0122 MA0122 IQ.0122 MA0122 Ag(t) Al(t) As(t) Ba(t) Be(t) mg/L mg/L mg/L mg/L mg/L
0 .002 0 .02 0 .00 8 0.001 0.0003
101.6 100.4 101.8 103.0 99.6
- - - - -
SS.O - 115.0 85.0 · 115.0 85.0 • 115.0 SS.O- 115.0 85.0 • 115.0
100.8 100.4 101.0 103.0 99.6
85.0-115.0 85.0-115.0 85.0-115.0 85.0-115.0 85.0-115.0
<0.002 0.08 <0.008 0.020 <0.0003
<0.002 0.08 <0.008 0.020 <0.0003
- - - - -
- - - - -
- - - - -
- - - - -
- - - - -
- - - - -
<0.002 <0.02 <0.008 <0.001 <0.0003
MA0122 Bi(t)•
mg/L 0.02
102.0
-
85.0 - 115.0
102.0
85.0-115.0
<0.02
<0.02
-
--
-
-
-
<0.02
INFORME DE ENSAYO
N • DIC1003.R15
MA0122 MA0122 MA0122 B(t) ca(t) Cd(t) mg/L mg/L mg/L
0 .003 o.os 0 .001
100.0 99.8 100.0
.. - -
85.0 • 115.0 SS.O· 115.0 85.0 - 115.0
100.2 100.0 99.8
85.0-115.0 85.0-115.0 85.0-115.0
0.283 90.02 <0.001
0.279 89.94 <0.001
- - -
.. - -
- - ..
- - ..
- .. -
- - -
<0.003 <0.05 <0.001
CERTIMIN S.A. Av. Las Vegas 845 - San Juan de Miraflores Tell.: (51-1) 205-5656. e-mail: [email protected]
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� lt�ct:l"e1MX•02.2
MA0122 MA0122 Ce(t) Co(t) mg/L m,;/L 0 .02 0 .002
108.0 98.2
- -
85.0 -115.0 85.0 • 115.0
104.0 98.0
85.0-115.0 85.0-115.0
<0.02 0.002
<0.02 0.002
- -
- -
- -
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- -
<0.02 <0.002
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Muestras QC
Codi.go de Servicio NA0122
Nº Elemento Cr(t)
Oni.dad mg/L Limite de Deteec.!.6n LD 0.004
1 Adición (% Recup.) 103.6
2 Adición (% Recup.) -
3 Adición Rango (%) 85.0 - 115.0
4 STO -Recuperación Obtenido (o/o) 103.0
5 STO -Rango (%) 85.0-115.0
6 PTAR-01 (Original) <0.004
7 PTAR-01 (Oup) <0.004
8 PTAR-02 (Original) -
9 PTAR-02 (Oup) -
10 PTAR-03 (Original) -
11 PTAR-03 {Dup) -
12 PTAR-06 (Original) -
13 PTAR-06 (Dup) -
14 Blanco <0.004
Página 6 de 8
LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUANO
DE ACREDITACIÓN INACAL- DA CON REGISTRO Nº LE 022
�
NA0122 NA0122 NA0122 W.0122 MJ>.0122
Cu(t) Fe(t) lt(t) Li(t) Mg(t)
mg/L mg/L mg/L mg/L mg/L 0.003 0.01 0.01 0.004 0.02
105.4 104.0 100.0 99.4 98.4 - - - - -
85.0 - 115.0 85.0 - 115.0 85.0-115.0 85.0 - 115.0 85.0 - 115.0
105.0 102.0 99.9 99.4 98.4
85.0-115.0 85.0-115.0 85.0-115.0 85.0·115.0 85.0-115.0
<0.003 0.12 30.44 0.094 11.33
<0.003 0.12 30.52 0.094 11.26 - - - -- -
- - - - -
-- - - - -
- - - - -
- - - - -
- - - - -
<0.003 <0.01 <0.01 <0.004 <0.02
Elementos
Ml'.0122 MA0122 M>.0122
Mn(t) Mo(t) Na(t)
mg/L mg/L mg/L 0.001 0.004 0.01
101.0 102.8 100.4
- - -
85.0 - 115.0 85.0 - 115.0 85.0 - 115.0
101.0 102.4 100.4
85.0-115.0 85.0-115.0 85.0-115.0
0.039 <0.004 121.67
0.038 <0.004 121.97 - - -
- - -
- - --
- - -
- - -
- - -
<0.001 <0.004 <0.01
INFORME DE ENSAYO
N ° DIC1003.R15
MA0122 MM122 Ml'.0122
Ni.(t) P(t) Pb(t)
mg/L mg/L rog/L 0.002 0.06 0.01
100.0 103.6 100.0 - - -
85.0 - 115.0 85.0 - 115.0 85.0 - 115.0
100.0 103.6 100.0
85.0-115.0 85.0-115.0 85.0-115.0
0.018 14.48 <0.01
0.018 14.29 <0.01 -- -- -
- -- -
- - -
- - -
-- - -
- - --
<0.002 <0.06 <0.01
CERTIMIN S.A. Av. Las Vegas 845 • San Juan de Miraflores Tell.: (51-1) 205-5656. e-mail: [email protected]
�i:-1.1:-022
MA0l22 MA0122
Sb(t) Se(t)
mg/L mg/L 0.008 0.02
105.0 102.0 - -
85.0-115.0 SS.O -115.0
105.0 102.0
85.0-115.0 85.0-115.0
<0.008 <0.02
<0.008 <0.02 - -
- -
- -
- -
- -
- -
<0.008 <0.02
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Muestras OC
Codigo de Servicio Mll.0122
Nº Elemento S102 (t)
Unidad mg/L
Limite de Detección LO 0.02
1 Adición (% Recup.) 100.8
2 Adición (% Recup.) -
3 Adición Rango (%) 85.0- 115.0
4 STO - Recuperación Obtenido (%) 101.2
5 STO - Rango (%) 85.0-115.0
6 PTAR-01 (Oñginal) 15.50
7 PTAR-01 (Dup) 15.33
8 PTAR-02 (Original) -
9 PTAR-02 (Dup) -10 PTAR-03 (Oñginal) -
11 PTAR-03 (Dup) -
12 PTAR-06 (Oñginal) -
13 PTAR-06 (Dup) -
14 Blanco <0.02
Ml\.012.2
Sn{t)
mg/L
0.007
103.0
-
85.0 - 115.0
103.0
85.0-115.0
0.033
0.032
-
-
-
-
--
<0.007
LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUANO DE ACREDJT ACIÓN INACAL • DA CON REGISTRO N º LE 022
�
MM122 Mll.012.2 MA012.2 Mll.0122
Sr{t) Ti{t) Tl(t) V(t)
mg/L m,¡/L mg/L mg/L
0.0007 0.01 0.05 0.003
101.0 102.0 102.0 100.0
- - - -
85.0 - 115.0 85.0 - 115.0 85.0 - 115.0 85.0- 115.0
101.0 100.0 102.0 99.8
85.0-115.0 85.0-115.0 85.0-115.0 85.0-115.0
0.7938 <0.01 <0.05 <0.003
0.7916 <0.01 <0.05 <0.003
- - - -
- - - --
- - - -
- - - -
- - - -
- - - -
<0.0007 <0.01 <0.05 <0.003
Elementos
Mll.0122 MA0756 Zn(t) DBO
m,¡/L mg/L
0.005 2.00
103.0 -
- -
85.0 -115.0 -
103.0 111.2
85.0-115.0 84.6-115.4
0.019 -
0.018 -
- -
- -
- -
- -
- 20.84
- 21.04
<0.005 <0.20
MA0757
DQO
mg/L
10.00
89.2
90.1
85.0- 115.0
112.7
80.0-120.0
-
-
--
93.02
93.19
-
-
<10.00
INFORME DE ENSAYO
N º DIC1003.R15 � ... ffl'OIM.I-02.2
Ml'L0789 MA0786 Colifo,:mes FecaJ.es. Colifoi::mes Total.es
NMP/100mL NMP/l0OmL
1.8 1.8
- -
- -
- -
- -
- -
- -
- -- 17000.0
- 17000.0
13000.0 -
13000.0 -
- -
- -
- --
CERTIMIN S.A. Av. Las Vegas 845 - San Juan de Mlraflores Teff.: (51-1) 205-5656. e-mail: [email protected]
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LABORATORIO DE ENSAYO ACREDITADO POR EL ORGANISMO PERUANO DE ACREDITACIÓN INACAL - DA CON REGISTRO N º LE 022
INFORME DE ENSAYO
N º DIC1003.R15
METODOS DE ENSAYO Y CODIGOS DE SERVICIO
Ne
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
Descripción
Analit.o Denominación Cocl..Serv (l) Norma o Referencia
pH" pH MA1000 SMEWW 22nd Ed. 2012 Part-4500-H+ A, B. Pág 4-91 .APHA-AWWA• WEF. pH Value. Electrometric Method
Temperatura· Temperatura MA1000 SMEWW 22nd Ed. 2012 Part-2550 B. Pág 2-69 .APHA-AWWA-WEF. Temperature. Laboratory and Field Method
AcyG Aceites y grasas MA0002 SMEWW 22nd Ed. 2012.Part-5520 B Pag 5-40. APHA-AWWA-WEF. 011 and Grease. Liquid-Uquid. Partition • Gravimetric Method
SMEWW 22nd Ed.2012. Part-9221 E1. Pág.9-74.9-75. APHA-AWWA-WEF. Multiple-Tube Coliformes Fecales. Coliformes Fecales (Termotolerantes) MA0789 Fermenlatlon Technique for Members of lhe Coliform Group. Fecal Coliform Procedure.
Thermotolerant colilorm lest (EC meclium).
SMEWW 22nd Ed. 2012. Part-9221 B. Pág 9-66. 9·69. APHA-AWWA-WEF. Multiple-Tube Coliformes Totales Coliformes Totales MA0786 Fermentation Technlque for Members of the Coliform Group. Standard Total Coliform
Fermentation Technique.
DBO Demanda Bioquímica de Oxígeno MA0756 SMEWW 22nd Ed. 2012.Part-5210 B. Pag 5-5. APHA-AWWA-WEF. Biochemical Oxygen Demand (BOD). 5- Day 800 Test
000 Demanda Química de Oxigeno MA0757 SMEWW 22nd Ed.2012. Part-5220 D. Pág.5-20 APHA-AWWA-WEF. Chemical Oxygen Demand (COD).Closed Reflux. Colorimetric Method.
STS Sólidos Totales Suspendidos MA0174 SMEWW 22nd Ed. 2012.Part-2540 D. Pág 2-66 APHA AWWA WEF.Sollds. Total Suspended Solids Dried at 103 - 105"C.
Turbidez Turbidez MA0183 SMEWW 22nd Ed. 2012. Part-2130 B.Pág 2-12. APHA-AWWA-WEF. Turbldity. Nephelometric Method.
Varios Varios MA0122 EPA. Method 200.7. Revisión 4.4. Determination of metals and trace elements in water and wastes by lnductively Coupled Plasma- Atomic. Emission Spectrometry.
(") Los métodos indicados no han sido acreditados por el INACAL-DA.
(1) SMEWW: Standard Melhods fer the Examination of Water and Wastewate,. APHA : American Public Heal1h Association. AWWA: American Water Works Association. WEF : Water Environment Federation. EPA : Environmental Protection Agency. ASTM: American Society fer Testing and Materials. íSO: lntemational Organization for Standardization. NTP: Norma Técnica Peruana. NIOSH: The National lnstitute for Occupational Safety and Heatth.
CERTIMIN S.A. Av. Las Vegas 845. San Juan de Mlraflores Telf.: (51-1) 205-5656. e-mail: [email protected]
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ANEXO C - Condiciones para el muestreo y preservación de las
muestras de agua
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ConservaeJ6n y/o PrnervaclO,,
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ANIW1 • tultut '" Cl.lff'MNSA
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AltJ//,J1 t ,u.lur ,,, CtAtNN S.A.
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AlúU..-1 • tuliur tn CUfTMN I.A.
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.AnJl/al1 • ,ullat •" CU'f96H S.A.
AMJhJl1,,u11a,.,,c�SA.
AMJ'r/1 • ruttur •" CUITMN S.A.
.AN/a/1 • tu6ur•11 C6�SA.
.ANJaJ,,,.,,.,_.,.,,cvtflillNS.A.
Alúl'-• 1 ru.lll• tnCVfl�SA.
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.AM/lolo I r•lllut ,,. CVfJ'MN I.A..
A/úlúll • ,.,&ut tn CUra6H SA.
ANJ/ol11 ,uau, •" CvtrNNs.A.
DOCUMENTO NO CONTROLADO -Fuera del Alcance de Actualización
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Dlllermlnadón
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CONDICIONES PARA MUESTREO Y PRESERVACIÓN DE MUESTRAS DE AGUA
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• ,._•gua1�,:i■a1,ir1o,�ra.oo1 ,...,_ ...... 1,..-
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Conservadón y/o Preservación
Pa11�,1..,.,.� &r,pn.,.,., o.-Agt.,1rtuiut\111rttadoo,&odedofN•,. .. Offt.Oolio116ato ... _1IIO"l!,c,o,lOe -�·
Agt.,•• 11,obi<io Sedle<hriN .,.,. ''""-"" r-...,111 .. -.il'll. par L•ir....n
Affl'G9rwl•l•c.
A,,...,_,.,,,•c,.,.ui.nva .. ,
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Mtortoot-16'�lt.lp,1tt\OOl'lt.,.■"ldo�P1.11t1p>+tA,Jri?ora, ll"C
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AMU., • ruáut '" CVtTf/MI S.A.
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DOCUMENTO NO CONTROLADO -Fuera del Alcance de Actualización
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CONDICIONES PARA MUESTREO Y PRESERVACIÓN DE MUESTRAS DE AGUA
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DOCUMENTO NO CONTROLADO -Fuera del Alcance de Actualización
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OCIM_,M REV27/201S,09,,2S
ANEXO D - Información de la planta de tratamiento de aguas
residuales - SJM
Características Caudal DBO ingreso DOO
Tipo de Tratamiento
Técnologia Area requerida Componentes Rejas
Desarenado, Tanques de aireacion
Tanques de decantacion Estación de bombeo de lodos Lechos de secado Camara de contacto de cloro Observaciones
COMPARATIVO DE PLANTAS DE TRATAMIENTO DE AGUAS RESIDUALES
PTAR San antonlo de Carapongo 70 Vs 350 mg/1 no indica
Lodos activados de aireacion prolongada
Convencional 1 Ha.
01 Manual no tiene 02 manual 6 unidades
6 unidades con barrelodos manual 6 unidades 18 lechos de secado 01 unidad
PTAR Balneario San Bartolo Sur 38.6 Vs 270 mg/1 620 mg/1 Lodos Activados en Bach (Secuencial Bach Reactor Aero0ux (compacta) 0.1 Ha
01 reja gruesa manual 02 militamices 01 mecanizado 4 unidades
01 unidad de digeslion aerobia de lodos 01 centrifuga de secado de lodos 01 unidad
San Juan de Miraflores 4001/s 250 mg/1 no indica
Lagunas aireadas
convencional 20 Ha
04 rejas automaticas no tiene 04 semiautomaticos 8 lagunas de mezcla completa 12 lagunas de mezcla parcial 8 lagunas de sedlmentacion 24 lagunas de pulimento
bomba de dragado de lodos 8 lechos de secado 02 unidades
Conformada por 4 series de lagunas dispuestas en Es una plan_ta ".1odular co�venclonal, su grado En una. planta modular. con un alto grado de forma paralela. Diseñada para tratar eoo vs, sin de automatazacron es baJo, con sobrecargas automatazaclon, Es un sistema compacto, de los embargo trata 400 1/s por falta de aireadores altas tiende a deteriorarse la calidad del ◄. reactores _de aireacion uno de ellos en lorm (problema de diseño). Ocupan gran cantidad de e0u�nte. Los lechos de secado generan gran cicl1ca funciona como un decantado,. Esta espacio, Se encuentra aledaña a un una poblaclon y a cantrdad de mosquitos. Se ubica dentro de d1se_ñada para tratar las cargas lnstantaneas que una zona agrícola. Requiere de mucho personal para terrenos de cultivo. pudieran llegar al sistema. su O eraclon mantenimiento.
Vista parcl1la de ta planta S.A. C1r1pongo
sedapal �
PLANTA DE TRATAMIENTO DE AGUAS RESIDUALES
Gerencia Recolección, Tratamiento y Disposición Final SAN JUAN
Equipo de Operación y Mantenimiento de Plantas de Aguas Residuales
ANTECEDENTES Reemplaza a las antiguas Lagunas de Oxidación de la PTAR San Juan.
UBICACION
·Ca-racterísticas - - -Descripción - <. ·.:-1caudal de Diseño 800 1/s, sin embargo tiene limitación
por la excesiva carga orgánica que llega a la planta. Actualmente trata 4001/s
Sistema de Tratamiento Lagunas Aireadas
Distrito San Juan Miraflores.
COMPONENTES -Sistema de Pretratamiento:
. Rejas
. Desarenadores
-Sistema de Tratamiento:
. Lagunas de Mezcla Completa
. Lagunas de Mezcla Parcial
. Sedimentadores
- Sistema de Desinfección
sedapa �
PLANTA DE TRATAMIENTO DE AGUAS RESIDUA
--=-
Gerencia Recolección, Tratamiento y Disposición Final Equipo de Operación y Mantenimiento de Plantas de Aguas Residuales
ANTECEDENTES
Forma parte del Proyecto San Bartolo, financiado por el Gobierno de Japón, reemplaza
a las antiguas Lagunas de Oxidación de San
Características Descripción
Area Total (Ha) 38 Has
Entorno Urbano
Tipo de Desagüe Doméstico
Caudal - DBO de diseño 800 1/s - 250 mg/1
Sistema de Tratamiento Lagunas Aireadas
Uso de Efluente Riego de Áreas verdes
Us1cAc10N
SAN JUAN
Se encuentra ubicada Av. Pedro Miotta sin entre ETECEN y Parque Zonal Huayna Capac- Distrito de San Juan Miraflores
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PLANTA DE TRATAMIENTO DE AGUAS RESIDUAi¡¡
SAN JUAN Gerencia Recolección, Tratamiento y Disposición Final Equipo de Operación y Mantenimiento de Plantas de Aguas Residuales
omponentes •Rejas(5), desarenadores (5)
•Lagunas de Mezcla Completa (8)
•Lagunas de Mezcla Parcial (12)
•Sedimentadores(B) y Lechos Secado (10)
•Instalaciones de cloración(2)
OBRAS de Mejoramiento •Se ha mejorado el entornoecológico de la Planta mediante laimplementación de las áreas
verdes
• I mplementacíón estacionamiento
Maquinaria Pesada
Pre-Tratamiento Tratamiento Blológlco I
Desinfección 1
1 1 1
Uso - - - - - - - - - - - .. - - - - - - - - - - - - - - - - - - -.- - - - - - - - - - - - - -,- - - - - - - - - - - - - -�
ego - -: : : Areas
Rejas : Lag. Aireada : Lag. de Verdºs , , Sedimentación
OeS8fenador : :
Qiq Desechos
Al Relleno Sanitario
( '' /. 1 ' . \.
Mezcla Mezcla comp/ela parcial
<===1 '.
J} Lodos
s Secado de
Lodos
Cuerpo Receptor
ANEXO E - Estándar de calidad Ambiental y Límite máximo
permisibles para Efluentes de plantas de Tratamiento de Aguas
Residuales
10 NORMAS LEGALES Miércoles 7 de Junto de 2017 / 'tf!/! El Peruano
Aprueban Estándares de Calidad Ambiental CECA) para Agua y establecen Disposiciones Complementarias
DECRETO SUPREMO Nº 004-2017-MINAM
EL PRESIDENTE DE LA REPÚBLICA
CONSIDERANDO:
Que, el numeral 22 del artículo 2 de la Constitución Política del Perú establece que toda persona tiene derecho a gozar de un ambiente equilibrado y adecuado al desarrollo de su vida;
Que, de acuerdo a lo establecido en el artículo 3 de la Ley N° 28611, Ley General del Ambiente, en adelante la Ley, el Estado, a través de sus entidades y órganos correspondientes, diseña y aplica, entre otros, las normas que sean necesarias para garantizar el efectivo ejercicio de los derechos y el cumplimiento de las obligaciones y responsabilidades contenidas en la Ley;
Que, el numeral 31.1 del artículo 31 de la Ley, define al Estándar de Calidad Ambiental (ECA) como la medida que establece el nivel de concentración o del grado de elementos, sustancias o parámetros físicos, químicos y biológicos, presentes en el aire, agua o suelo, en su condición de cuerpo receptor, que no representa riesgo significativo para la salud de las personas ni al ambiente; asimismo, el numeral 31.2 del artículo 31 de la Ley establece que el ECA es obligatorio en el diseño de las normas legales y las políticas públicas, así como un referente obligatorio en el diseño y aplicación de todos los instrumentos de gestión ambiental;
Que, de acuerdo con lo establecido en el numeral 33.1 del artículo 33 de la Ley, la Autoridad Ambiental Nacional dirige el proceso de elaboración y revisión de ECA y Límites Máximos Permisibles (LMP) y, en coordinación con los sectores correspondientes, elabora o encarga las propuestas de ECA y LMP, los que serán remitidos a la Presidencia del Consejo de Ministros para su aprobación mediante Decreto Supremo;
Que, en virtud a lo dispuesto por el numeral 33.4 del artículo 33 de la Ley, en el proceso de revisión de los parámetros de contaminación ambiental, con la finalidad de determinar nuevos niveles de calidad, se aplica el principio de gradualidad, permitiendo ajustes progresivos a dichos niveles para las actividades en curso;
Que, de conformidad con lo establecido en el literal d) del artículo 7 del Decreto Legislativo Nº 1013, Ley de Creación, Organización, y Funciones del Ministerio del Ambiente, este ministerio tiene como función especificaelaborar los ECA y LMP, los cuales deberán contar conla opinión del sector correspondiente y ser aprobadosmediante Decreto Supremo;
Que, mediante Decreto Supremo Nº 002-2008-MINAM se aprueban los ECA para Agua y, a través del Decreto Supremo Nº 023-2009-MINAM, se aprueban las disposiciones para su aplicación;
Que, asimismo, mediante Decreto Supremo Nº
015-2015-MINAM se modifican los ECA para Agua yse establecen disposiciones complementarias para suaplicación;
Que, mediante Resolución Ministerial Nº
331-2016-MINAM se crea el Grupo de Trabajo encargadode establecer medidas para optimizar la calidad ambiental,estableciendo como una de sus funciones especificas,el analizar y proponer medidas para mejorar la calidadambiental en el país;
Que, en mérito del análisis técnico realizado se ha identificado la necesidad de modificar, precisar y unificar la normatividad vigente que regula los ECA para agua;
Que, mediante Resolución Ministerial Nº
072-2017-MINAM, se dispuso la prepublicación delproyecto normativo, en cumplimiento del Reglamentosobre Transparencia, Acceso a la Información PúblicaAmbiental y Participación y Consulta Ciudadana enAsuntos Ambientales, aprobado por Decreto SupremoNº 002-2009-MINAM, y el artículo 14 del Reglamentoque establece disposiciones relativas a la publicidad,
publicación de Proyectos Normativos y difusión de Normas Legales de Carácter General, aprobado por Decreto Supremo N° 001-2009-JUS; en virtud de la cual se recibieron aportes y comentarios al mismo;
De conformidad con lo dispuesto en el numeral 8 del articulo 118 de la Constitución Política del Perú, así como el numeral 3 del artículo 11 de la Ley Nº 29158, Ley Orgánica del Poder Ejecutivo;
DECRETA:
Artículo 1.- Objeto de la norma La presente norma tiene por objeto compilar
las disposiciones aprobadas mediante el Decreto Supremo N° 002-2008-MINAM, el Decreto Supremo N
º 023-2009-MINAM y el Decreto Supremo Nº
015-2015-MINAM, que aprueban los Estándares de Calidad Ambiental (ECA) para Agua, quedando sujetos alo establecido en el presente Decreto Supremo y el Anexoque forma parte integrante del mismo. Esta compilaciónnormativa modifica y elimina algunos valores, parámetros,categorías y subcategorías de los ECA, y mantieneotros, que fueron aprobados por los referidos decretossupremos.
Artículo 2.- Aprobación de los Estándares de Calidad Ambiental para Agua
Apruébase los Estándares de Calidad Ambiental (ECA) para Agua, que como Anexo forman parte integrante del presente Decreto Supremo.
Artículo 3.- Categorías de los Estándares de Calidad Ambiental para Agua
Para la aplicación de los ECA para Agua se debe considerar las siguientes precisiones sobre sus categorías:
3.1 Categoría 1: Poblacional y recreacional
a) Subcategoria A: Aguas superficiales destinadasa la producción de agua potable
Entiéndase como aquellas aguas que, previo tratamiento, son destinadas para el abastecimiento de agua para consumo humano:
- A 1. Aguas que pueden ser potabilizadas condesinfección
Entiéndase como aquellas aguas que, por sus características de calidad, reúnen las condiciones para ser destinadas al abastecimiento de agua para consumo humano con simple desinfección, de conformidad con la normativa vigente.
- A2. Aguas que pueden ser potabílizadas contratamiento convencional
Entiéndase como aquellas aguas destinadas al abastecimiento de agua para consumo humano, sometidas a un tratamiento convencional, mediante dos o más de los siguientes procesos: Coagulación, floculación, decantación, sedimentación, y/o filtración o procesos equivalentes; incluyendo su desinfección, de conformidad con la normativa vigente.
- A3. Aguas que pueden ser potabilizadas contratamiento avanzado
Entiéndase como aquellas aguas destinadas al abastecimiento de agua para consumo humano, sometidas a un tratamiento convencional que incluye procesos físicos y químicos avanzados com� precloración, _microfiltración ultra filtración nanofiltractón, carbón activado, ósmosis
0
inversa o procesos equivalentes establecidos por el sector competente.
b) Subcategoría B: Aguas superficiales destinadas
para recreación Entiéndase como aquellas aguas destinadas al uso
recreativo que se ubican en zonas marino_ costeras ocontinentales. La amplitud de las zonas marino coster�s es variable y comprende la franja del mar entre el limt!e de la tierra hasta los 500 m de la linea paralela de baJa marea. La amplitud de las zonas continentales es definida por la autoridad competente:
� El Peruano/ Miércoles 7 de Junio de 2017 NORMAS LEGALES 11
- B1. Contacto primarioEntiéndase como aquellas aguas destinadas al
uso recreativo de contacto primario por la Autoridad de Salud, para el desarrollo de actividades como la natación, el esquí acuático, el buceo libre, el surf, el canotaje, la navegación en tabla a vela, la moto acuática, la pesca submarina o similares.
- B2. Contacto secundarioEntiéndase como aquellas aguas destinadas al uso
recreativo de contacto secundario por la Autoridad de Salud, para el desarrollo de deportes acuáticos con botes, lanchas o similares.
3.2 Categoría 2: Extracción, cultivo y otras actividades marino costeras y continentales
a) Subcategoría C1: Extracción y cultivo demoluscos, equinodermos y tunicados en aguas marino costeras
Entiéndase como aquellas aguas cuyo uso está destinado a la extracción o cultivo de moluscos (Ej.: ostras, almejas, charos, navajas, machas, conchas de abanico, palabritas, mejillones, caracol, lapa, entre otros), equinodermos (Ej.: erizos y estrella de mar) y tunicados.
b) Subcategoría C2: Extracción y cultivo de otrasespecies hidrobiológicas en aguas marino costeras
Entiéndase como aquellas aguas destinadas a la extracción o cultivo de otras especies hidrobiológicas para el consumo humano directo e indirecto. Esta subcategoría comprende a los peces y las algas comestibles.
c) Subcategoría C3: Actividades marino portuarias,industriales o de saneamiento en aguas marino costeras
Entiéndase como aquellas aguas aledañas a las infraestructuras marino portuarias, actividades industriales o servicios de saneamiento como los emisarios submarinos.
d) Subcategoría C4: Extracción y cultivo deespecies hidrobiológicas en lagos o lagunas
Entiéndase como aquellas aguas cuyo uso está destinado a la extracción o cultivo de especies hidrobiológicas para consumo humano.
3.3 Categoría 3: Riego de vegetales y bebida de anímales
a) Subcategoría D1: Riego de vegetalesEntiéndase como aquellas aguas utilizadas para el
riego de los cultivos vegetales, las cuales, dependiendo de factores como el tipo de riego empleado en los cultivos, la clase de consumo utilizado (crudo o cocido) y los posibles procesos industriales o de transformación a los que puedan ser sometidos los productos agrícolas:
-Agua para riego no restringidoEntiéndase como aquellas aguas cuya calidad permite
su utilización en el riego de: cultivos alimenticios que se consumen crudos (Ej.: hortalizas, plantas frutales de tallo bajo o similares); cultivos de árboles o arbustos frutales con sistema de riego por aspersión, donde el fruto o partes comestibles entran en contacto directo con el agua de riego, aun cuando estos sean de tallo alto; parques públicos, campos deportivos, áreas verdes y plantas ornamentales; o cualquier otro tipo de cultivo.
-Agua para riego restringidoEntiéndase como aquellas aguas cuya calidad permite
su utilización en el riego de: cultivos alimenticios que se consumen cocidos (Ej.: habas); cultivos de tallo alto en los que el agua de riego no entra en contacto con el fruto (Ej.: árboles frutales); cultivos a ser procesados, envasados y/o industrializados (Ej.: trigo, arroz, avena y quinua); cultivos industriales no comestibles (Ej.: algodón), y; cultivos forestales, forrajes, pastos o similares (Ej.: maíz forrajero y alfalfa).
b) Subcategoría D2: Bebida de animalesEntiéndase como aquellas aguas utilizadas para
bebida de animales mayores como ganado vacuno,
equino o camélido, y para animales menores como ganado porcino, ovino, caprino, cuyes, aves y conejos.
3.4 Categoría 4: Conservación del ambiente acuático
Entiéndase como aquellos cuerpos naturales de agua superficiales que forman parte de ecosistemas frágiles, áreas naturales protegidas y/o zonas de amortiguamiento, cuyas características requieren ser protegidas.
a) Subcategoría E1: Lagunas y lagos Entiéndase como aquellos cuerpos naturales de agua
lénticos, que no presentan corriente continua, incluyendo humedales.
b) Subcategoría E2: RíosEntiéndase como aquellos cuerpos naturales de agua
lóticos, que se mueven continuamente en una misma dirección:
- Ríos de la costa y sierraEntiéndase como aquellos ríos y sus afluentes,
comprendidos en la vertiente hidrográfica del Pacífico y del Titicaca, y en la parte alta de la vertiente oriental de la Cordillera de los Andes, por encima de los 600 msnm.
- Ríos de la selvaEntiéndase como aquellos ríos y sus afluentes,
comprendidos en la parte baja de la vertiente oriental de la Cordillera de los Andes, por debajo de los 600 msnm, incluyendo las zonas meándricas.
c) Subcategoría E3: Ecosistemas costeros ymarinos
- EstuariosEntiéndase como aquellas zonas donde el agua de
mar ingresa en valles o cauces de ríos hasta el límite superior del nivel de marea. Esta clasificación incluye marismas y manglares.
- MarinosEntiéndase como aquellas zonas del mar
comprendidas desde la línea paralela de baja marea hasta el límite marítimo nacional.
Precísese que no se encuentran comprendidas dentro de las categorías señaladas, las aguas marinas con fines de potabilización, las aguas subterráneas, las aguas de origen minero - medicinal, aguas geotermales, aguas atmosféricas y las aguas residuales tratadas para reuso.
Artículo 4.-Asignación de categorías a los cuerpos naturales de agua
4.1 La Autoridad Nacional del Agua es la entidad encargada de asignar a cada cuerpo natural de agua las categorías establecidas en el presente Decreto Supremo atendiendo a sus condiciones naturales o niveles de fondo de acuerdo al marco normativo vigente.
4.2 En caso se identifique dos o más posibles categorías para una zona determinada de un cuerpo natural de agua, la Autoridad Nacional del A�ua define la categoría aplicable, priorizando el uso poblac1onal.
Artículo 5.- Los Estándares de Calidad Ambiental para Agua como referente oblfgatorio
5.1 Los parámetros de los EC� para Ag_ua _ quese aplican como referente obligatorio_ en el _diseno Yaplicación de los instrumentos de gestión ambiental, �e determinan considerando las siguientes variables, segun corresponda:
a) Los parámetros asociados a los contamin_a�tesque caracterizan al efluente del proyecto o la act1v1dad productiva, extractiva o de servicios.
b) Las condiciones naturales que caractenza _n elestado de la calidad ambiental de las aguas superficiales que no han sido alteradas por causas antrópicas.
c) Los niveles de fondo de los cuerpos naturalesde agua; que proporcionan información acerca_ de las concentraciones de sustancias o agentes físicos,
12 NORMAS LEGALES Miércoles 7 de Junio de 2017 / � El Peruano
químicos_ o biológicos presentes en el agua y que puedan al Ministerio del Ambiente la información generada en el ser de origen natural O antrópico. des�rrollo de estas actividades con relación a la calidad
d) E( efect?_ de ot�as descargas en la zona, tomando amb1e_ntal de lo� cuerpos naturales de agua, a fin de en _cons_1derac1on los impactos ambientales acumulativos que. sirva como insumo para la elaboración del Informe Y sinérg1cos que se presenten aguas arriba y aguas abajo Nacional del Estado del Ambiente y para el Sistema de la descarga del efluente y que influyan en el estado Nacional de ln�ormación Ambiental (SINIA). actual de la calidad _ambient�I de los cuerpos naturales de 8.2 La autoridad competente debe remitir al Minister·,0 del agua donde se realiza la actividad. A b. 1
e) Otras características particulares de la actividad o el
m ,ente a relación d� aq_�ellos cuerpos naturales de agua
t exceptu!3dos de la aphcac1on del ECA para Agua, referidos
en orno que pueden influir en la calidad ambiental de los en los hteral�s a) y c) del artículo 6 del presente Decreto cuerpos naturales de agua. Supremo, adJun!ando �I sustento técnico correspondiente.
8.3. �I Ministerio del Ambiente establece los proced1m1entos, plazos y los formatos para la remisión de
la información. 5.2 La aplicación de los ECA para Agua como
reft::rent-=: obligatorio está referida a los parámetros que se 1dent1ficaron considerando las variables del numeral
anterior, según corresponda, sin incluir necesariamente
todos los parámetros establecidos para la categoría o
subcategoría correspondiente.
Articulo 6.- Consideraciones de excepción para la aplicación de los Estándares de Calidad Ambiental para Agua
E_n. aquellos cuerpos naturales de agua que por sus cond1c1ones naturales o, por la influencia de fenómenos naturales, presenten parámetros en concentraciones superiores_ a la �teg?ría de ECA para Agua asignada, se e�ceptua la aph�c1ón de los mismos para efectos del
monitoreo de la calidad ambiental, en tanto se mantenga uno o más de los siguientes supuestos:
a)_ Características geológicas de los suelos y subsuelos que influyen en la calidad ambiental de determinados
cuerpos naturales de aguas superficiales. Para estos casos se demostrará esta condición natural con estudios técnicos científicos que sustenten la influencia natural de una zona en particular sobre la calidad ambiental de los cuerpos naturales de agua, aprobados por la Autoridad Nacional del Agua.
b) Ocurrencia de fenómenos naturales extremosque dete�ina con�iciones por exceso (inundaciones) � por carencia (sequ,as) de sustancias o elementos que componen el cuerpo natural de agua, las cuales deben ser reportadas con el respectivo sustento técnico.
c) Desbalance de nutrientes debido a causasnaturales, que a su vez genera eutrofización o el crecimiento excesivo de organismos acuáticos, en algunos casos potencialmente tóxicos (mareas rojas). Para tal efecto, se debe demostrar el origen natural del
desbalance de nutrientes, mediante estudios técnicos científicos aprobados por la autoridad competente.
�) Otras co_ndiciones debidamente comprobadas mediante estudios o informes técnicos científicos actualizados y aprobados por la autoridad competente.
Artículo 7.- Verificación de los Estándares de Calidad Ambiental para Agua fuera de la zona de mezcla
7 .1 En cuerpos naturales de agua donde se vierten aguas tratadas, la Autoridad Nacional del Agua verifica el cumplimiento de los ECA para Agua fuera de la zona de
mezcla, entendida esta zona como aquella que contiene
el v�lur,:ien de agua_ e� el cuerpo receptor donde se logra la d1luc1ón del vert1m1ento por procesos hidrodinámicos y dispersión, sin considerar otros factores como el
decaimiento bacteriano, sedimentación asimilación en materia orgánica y precipitación química'.
7.2 Durante la evaluación de los instrumentos de �estión ambi!=ntal, las autoridades competentes consideran y/o verifican el cumplimiento de los ECA para Agua fuera de la zona de mezcla, en aquellos parámetros asociados prioritariamente a los contaminantes que
caracterizan al efluente del proyecto o actividad. 7.3 La metodología y aspectos técnicos para la
determinación de las zonas de mezcla serán establecidos por la Autoridad Nacional del Agua, en coordinación con el
Ministerio del Ambiente y la autoridad competente.
Artículo 8.- Sistematización de la información
8.1 Las autoridades competentes de los tres niveles de gobierno, que realicen acciones de vigilancia, monitoreo, control, supervisión y/o fiscalización ambiental remitirán
Artículo 9.- Refrendo
. �I presente f?ecreto Supremo es refrendado por la Ministra del Ambiente, el Ministro de Agricultura y Riego, el . f".11ntstro de Energía y Minas, la Ministra de Salud, el
Ministro de la Producción y el Ministro de Vivienda Construcción y Saneamiento.
DISPOSICIONES COMPLEMENTARIAS FINALES
Primera.- Aplicación de los Estándares de Calidad Ambiental para Agua en los instrumentos de gestión ambiental aprobados . La aplicación d� los ECA para Agua en los instrumentos de gestión ambiental aprobados, que sean de carácter preventivo, se realiza en la actualización o
modificación de los mismos, en el marco de la normativa vige�te del Sistema Nacional de Evaluación del Impacto
Ambiental (SEIA). En el caso de instrumentos correctivos la aplicación de los ECA para Agua se realiza conforme á la normativa ambiental sectorial.
Segunda.- Del Monitoreo de la Calidad Ambiental del Agua
Las acciones de vigilancia y monitoreo de la calidad del agua debe realizarse de acuerdo al Protocolo Nacional para el Monitoreo de la Calidad de los Recursos Hídricos Superficiales aprobado por la Autoridad Nacional del Agua.
Tercera.- Métodos de ensayo o técnicas analíticas
. El Ministerio del Ambiente, en un plazo no mayor a seis (6) meses contado desde la vigencia de la presente
norma, establece los métodos de ensayo o técnicas analíticas aplicables a la medición de los ECA para Agua aprobados por la presente norma, en coordinación con el
Instituto Nacional de Calidad (INACAL) y las autoridades competentes.
DISPOSICIONES COMPLEMENTARIAS T RANSITORIAS
Primera.- Instrumento de gestión ambiental y/o plan integral en trámite ante la Autoridad Competente
Los titulares que antes de la fecha de entrada en vigencia de la norma, hayan iniciado un procedimiento
administrativo para la aprobación del instrumento de
gestión ambiental y/o plan integral ante la autoridad competente, tomarán en consideración los ECA para Agua vigentes a la fecha de inicio del procedimiento.
Luego de aprobado el instrumento de gestión ambiental
por la autoridad competente, los titulares deberán considerar lo establecido en la Primera Disposición Complementaria Final, a afectos de aplicar los ECA para Agua aprobados mediante el presente Decreto Supremo.
Segunda.- De la autorización de vertimiento de aguas residuales tratadas
Para la autorización de vertimiento de aguas residuales tratadas, la Autoridad Nacional del Agua, tomará en cuenta los ECA para Agua considerados en la aprobación del instrumento de gestión ambiental
correspondiente .
Tercera.- De la aplicación de los Estándares de Calidad Ambiental para Agua en cuerpos naturales de agua no categorizados
En tanto la Autoridad Nacional del Agua no haya asignado una categoría a un determinado cuerpo
natural de agua, se debe aplicar la categoría del
l':ir 's;;t El Peruano/ Miércoles 7 de Junio de 2017 NORMAS LEGALES
recurso hldrico al que este tributa, previo análisis de dicha Autoridad.
DISPOSICIÓN COMPLEMENTARIA DEROGATORIA
Única.- Derogación de normas referidas a Estándares de Calidad Ambiental para Agua
Derógase el Decreto Supremo Nº 002-2008-MINAM,
el Decreto Supremo Nº 023-2009-MINAM y el Decreto
Supremo N° 015-2015-MINAM.
Dado en la Casa de Gobierno, en Lima, a los seis días del mes de junio del año dos mil diecisiete.
PEDRO PABLO KUCZYNSKI GODARD Presidente de la República
ANEXO
JOSÉ MANUEL HERNÁNDEZ CALDERÓN Ministro de Agricultura y Riego
ELSA GALARZA CONTRERAS Ministra del Ambiente
GONZALO TAMAYO FLORES Ministro de Energía y Minas
PEDRO OLAECHEA ÁLVAREZ-CALDERÓN Ministro de la Producción
PATRICIA J. GARCIA FUNEGRA Ministra de Salud
EDMER TRUJILLO MORI Ministro de Vivienda, Construcción y Saneamiento
Categoría 1: Poblacional y Recreacional
Subcategoría A: Aguas superficiales destinadas a la producción de agua potable
A1 A2 AJ Parámetros Unidad de medida Aguas que pueden Aguas que pueden ser Aguas que pueden
ser potabilizadas con potabilizadas con tratamiento ser potabilizadas con desinfección convencional tratamiento avanzado
FÍSICOS- aulMICOS Aceiles y Grasas mg/L 0,5 1,7 1,7 Cianuro Total mg/L 0,07 .. ..
Cianuro Libre mg/L .. 0,2 0,2 Cloruros mg/L 250 250 250
Color (b) Color verdadero 15 100 (a) ..
Escala PVCo Conductividad (µS/cm) 1 500 1600 ..
Demanda Bioquímica de Oxigeno (DBOJ mg/L 3 5 10
Dureza mg/L 500 .. ..
Demanda Química de Oxigeno mg/L 10 20 30 (DQO) Fenoles mg/L 0,003 .. ..
Fluoruros mg/L 1,5 .. ..
Fósforo Total mg/L 0,1 0,15 0,15
13
Materiales Flotantes de Origen Ausencia de material flotante de Ausencia de material flotante de Ausencia de material flotante Antropogénico Nitratos (NO;) (c) mg/L Nitritos (NO;) (d) mg/L Amoniaco- N mg/L Oxigeno Disuelto mg/L (valor mínimo) Potencial de Hidrógeno (pH) Unidad de pH Sólidos Disueltos Totales mg/L Suttatos mg/L Temperatura ·c
Turbiedad UNT
INORGÁNICOS
Aluminio mg/L Antimonio mg/L Arsénico mg/L Bario mg/L Berilio mg/L Boro mg/L Cadmio mg/L Cobre mg/L Cromo Total mg/L Hierro mg/L Manganeso mg/L Mercurio mg/L Molibdeno mg/L
origen antrópico 50 3
1,5
� 6
6,5-8,5 1 000 250 63
5
0,9 0,02 0,01 0,7
0,012 2,4
0,003 2
0,05 0,3 0,4
0,001 0,07
origen antrópico de origen antrópico 50 50 3 ..
1,5 ..
� 5 � 4
5,5-9,0 5,5 - 9,0 1 000 1 500 500 ..
63 ..
..
100
5 5 0,02 ..
0,01 0,15 1 ..
0,04 0,1 2,4 2,4
0,005 0,01 2 2
0,05 0,05 1 5
0,4 0,5 0,002 0,002 ..
..
14 NORMAS LEGALES Miércoles 7 de Junio de 2017 / W- El Peruano
A1 A2 A3
Parámetros Unidad de medida Aguas que pueden Aguas que pueden ser Aguas que pueden ser potabilizadas con potabilizadas con tratamiento ser potabilizadas con
desinfección convencional tratamiento avanzado
Níquel mg/L 0,07 .. ..
Plomo mg/L 0,01 0,05 0,05 Selenio mg/L 0,04 0,04 0,05 Uranio mg/L 0,02 0,02 0,02 Zinc mg/L 3 5 5 ORGÁNICOS
Hidrocarburos Totales de mg/L 0,01 Petróleo (C. - C • .J 0,2 1,0
T rihalometanos ( e ) 1,0 1,0 1,0 Bromoformo mg/L 0,1 .. .. Clorofonmo mg/L 0,3 .. ..
Dibromoclorometano mg/L 0,1 .. ..
Bromodiclorometano mg/L 0,06 .. ..
l. COMPUESTOS ORGÁNICOS VOLÁTILES1, 1, 1-T ricloroetano mg/L 0,2 0,2 ..
1, 1-Dicloroeteno mg/L 0,03 .. ..
1,2 Dicloroetano mg/L 0,03 0,03 ..
1,2 Diclorobenceno mg/L 1 tt ..
Hexaclorobutadieno mg/L 0,0006 0,0006 ..
Tetracloroeteno mg/L 0,04 .. ..
Tetracloruro de carbono mg/L 0,004 0,004 ..
T ricloroeteno mg/L 0,07 0,07 ..
fil.EX
Benceno mg/L 0,01 0,01 ..
Etilbenceno mg/L 0,3 0,3 ..
Tolueno mg/L 0,7 0,7 ..
Xilenos mg/L 0,5 0,5 ..
l::lislr!!!,a[bu¡Q� 8c!lmáli,Q� Benzo(a)pireno mg/L 0,0007 0,0007 ..
Pentaclorofenol (PCP) mg/L 0,009 0,009 tt
Q¡g¡¡n2f2�f2roo2� Malatión mg/L 0,19 0,0001 ..
Q¡ga□�l!lrnsl2�
Aldrin + Dieldrin mg/L 0,00003 0,00003 ..
Clordano mg/L 0,0002 0,0002 ..
Dicloro Difenil Tricloroetano mg/L 0,001 0,001 .. (DDT) Endrin mg/L 0,0006 0,0006 ..
Heptacloro + Heptacloro mg/L 0,00003 0,00003 ..
Epóxido Lindano mg/L 0,002 0,002 ..
,C.arl!.a.aJ.al ..
Aldicarb mg/L 0,01 0,01
11 Cl8t:IQIQ�lt:l8S
Microcistina-LR mg/L 0,001 0,001 ..
111 61EEt:IILQS EQLICLQMQQS
Bifenilos Policlorados (PCB) mg/L 0,0005 1 0,0005 1..
MICROBIOLÓGICOS Y PARASITOLÓGICOS Coliformes Totales NMP/100 ml 50 ..
..
Coliformes Termotolerantes NMP/100 mi 20 2 000 20 000
Formas Parasitarias N" Organismo/L o .. ..
Escherichia coli NMP/100 ml o .. ..
Vibrio cholerae Presencia/100 mi Ausencia Ausencia Ausencia
Organismos de vida libre (algas, protozoarios, <5x10' copéfiodos, rotiferos, N' Organismo/L o <5x10' nem todos, en todos sus estadios evolutivos) (Q
(a) 100 (para aguas claras). Sin cambio anormal (para aguas que presentan coloración natural).(b) Después de la filtración simple.(c) En caso las técnicas analíticas determinen la concentración en unidades de Nitratos-N (NO3·-N), multiplicar el
resultado por el factor 4.43 para expresarlo en las unidades de Nitratos (NO3·).
l'J}1 l;i: El Peruano/ Miércoles 7 de Junio de 2017 NORMAS LEGALES 15
(d) En el caso las técnicas analíticas determinen la concentración en unidades de Nitritos-N (NO2·-N), multiplicar elresultado por el factor 3.28 para expresarlo en unidades de Nitritos (NO
2·).
(e) Para el cálculo de los Trihalometanos, se obtiene a partir de la suma de los cocientes de la concentración de cada uno de los parámetros (Bromoformo, Cloroformo, Dibromoclorometano y Bromodiclorometano), con respecto a sus estándares de calidad ambiental; que no deberán exceder el valor de 1 de acuerdo con la siguiente fórmula:
Ce/oro formo Cdibromoclorometano Cbromodiclorometano Cbromoformo ECAclol'O[ormo + ECAdibromoclorometano + ECAbromodiclorometano + ECAbromoformo
5 1
Dónde:
C= concentración en mg/L y ECA= Estándar de Calidad Ambiental en mg/L (Se mantiene las concentraciones del Bromoformo, cloroformo,
Dibromoclorometano y Bromodiclorometano). (f)Aquellos organismos microscópicos que se presentan en forma unicelular, en colonias, en filamentos o pluricelulares.t,. 3: significa variación de 3 grados Celsius respecto al promedio mensual multianual del área evaluada.
Nota 1:
- El símbolo ** dentro de la tabla significa que el parámetro no aplica para esta Subcategoría.- Los valores de los parámetros se encuentran en concentraciones totales, salvo que se indique lo contrario.
Subcategoría B: Aguas superficiales destinadas para recreación
B1 B2
Parámetros Unidad de medida Contacto Contacto primario secundario
FISICOS- QUIMICOS
Ausencia Aceites y Grasas mg/L de película
visible
Cianuro Libre mg/L 0,022 0,022
Cianuro Wad mg/L 0,08
Color Color verdadero Sin cambio Sin cambio Escala PUCO normal normal
Demanda Bioquímica de mg/L 5 10 Oxigeno (DBOJ
Demanda Química de mg/L 30 50 Oxigeno (DQO)
Ausencia Detergentes (SAAM) mg/L 0,5 de espuma
persistente
Materiales Flotantes de Ausencia Ausencia de material de material Origen Antropogénico flotante flotante
Nitratos (NOj-N) mg/L 10
Nitritos (NO2-N) mg/L
Olor Factor de dilución Aceptable a 25º
c
Oxigeno Disuelto mg/L 2: 5 2: 4 (valor minimo)
Potencial de Hidrógeno Unidad de pH 6,0 a 9,0 (pH)
Sutturos mg/L 0,05
Turbiedad UNT 100
INORGÁNICOS
Aluminio mg/L 0,2
Antimonio mg/L 0,006
Arsénico mg/L 0,01
Bario mg/L 0,7
B1 B2
Parámetros Unidad de medida Contacto Contacto primario secundario
Berilio mg/L 0,04 ..
Boro mg/L 0,5 ..
Cadmio mg/L 0,01 ..
Cobre mg/L 2 ..
Cromo Total mg/L 0,05 ..
Cromo VI mg/L 0,05 ..
Hierro mg/L 0,3 ..
Manganeso mg/L 0,1 ..
Mercurio mg/L 0,001 ..
Níquel mg/L 0,02 ..
Plata mg/L 0,01 0,05
Plomo mg/L 0,01 tt
Selenio mg/L 0,01 ..
Uranio mg/L 0,02 0,02
Vanadio mg/L 0,1 0,1
Zinc mg/L 3 ..
MICROBIOLÓGICOS Y PARASITOLÓGICO
Coliformes NMP/100 mi 200 1 000 Termotoleranles
Escherichia coli NMP/100ml Ausencia Ausencia
Formas Parasitarias N' Organismo/L o ..
Giardia duodena/is N° Organismo/L Ausencia Ausencia
Enterococos intestinales NMP/100ml 200 ..
Satmonella spp Presencia/100 mi o o
Vibrio cholerae Presencia/100 mi Ausencia Ausencia
Nota 2:
- UNT: Unidad Nefelométrica de Turbiedad.- NMP/100 mi: Número más probable en 100 mi.- El símbolo ** dentro de la tabla significa que el
parámetro no aplica para esta Subcategoria. - Los valores de los parámetros se encuentran �n
concentraciones totales, salvo que se indique lo contrario.
16 NORMAS LEGALES Miércoles 7 de Junio de 2017 / �1-' El Peruano -
Categoría 2: Extracción, cultivo y otras actividades marino costeras y continentales
C1 C2 C3 C4
Parámetros Extracción y cultlvo de Extracción y cultivo Actividades marino Extracción y
Unidad de medida moluscos, equinodermos de otras especies portuarias, Industriales cultlvo de especies y tunicados en aguas hldroblológicas en o de saneamiento en hidroblológicas en
marino costeras aguas marino costeras aguas marino costeras lagos o lagunas
FISICOS- QUIMICOS
Aceites y Grasas mg/L 1,0 1,0 2,0 1,0 Cianuro Wad mg/L 0,004 0,004 .. 0.0052 Color (después de filtración Color verdadero 100 (a) 100 (a) ..
simple) (b) Escala PVCo 100 (a)
Materiales Flotantes de Origen Ausencia de material Ausencia de material Ausencia de material Ausencia de material Antropogénico flotante flotante flotante flotante Demanda Bioquímica de Oxígeno mg/L .. 10 10 10 (DBOJ Fósforo Total mg/L 0,062 0,062 .. 0,025 Nitratos (NO;) (c) mg/L 16 16 .. 13 Oxigeno Disuelto (valor mínimo) mg/L 2: 4 2: 3 2: 2,5 2: 5 Potencial de Hidrógeno (pH) Unidad de pH 7-8,5 6,8-8,5 6,8-8,5 6,0-9,0 Sólidos Suspendidos Totales mg/L 80 60 70 ..
Sulfuros mg/L 0,05 0,05 0,05 0,05 Temperatura ·c t.3 t. 3 t. 3 t. 3
INORGÁNICOS
Amoniaco Total (NHJ mg/L .. .. .. ( 1) Antimonio mg/L 0,64 0,64 0,64 ..
Arsénico mg/L 0,05 0,05 0,05 0,1 Boro mg/L 5 5 .. 0,75 Cadmio mg/L 0,01 0,01 .. 0,01 Cobre mg/L 0,0031 0,05 0,05 0,2 Cromo VI mg/L 0,05 0,05 0,05 0,10 Mercurio mg/L 0,00094 0,0001 0,0018 0,00077 Nlquel mg/L 0,0082 0,1 0,074 0,052 Plomo mg/L 0,0081 0,0081 0,03 0,0025 Selenio mg/L 0,071 0,071 .. 0,005 Talio mg/L .. .. .. 0,0008 Zinc mg/L 0,081 0,081 0,12 1,0
ORGÁNICO
Hidrocarburos Totales de Petróleo mg/L 0,007 0,007 0,01 ..
{fracción aromática)
lllffoll!1� �11ll,l11rn�!!�
Bffenilos Policlorados (PCB) mg/L 0,00003 0,00003 0,00003 0,000014
ORGANOLÉPTICO
Hidrocarburos de Petróleo mg/L 1 No visible l No visible No visible ..
MICROBIOLÓGICO
Coliformes Termotolerantes INMP/100ml 1 :s 14 (área aprobada) {d) 1 s 30 1 000 200 INMP/100ml 1 :s 88 (área restringida) (d) 1
(a) 100 (para aguas claras). Sin cambio anormal (para aguas que presentan coloración natural).(b) Después de la filtración simple.(c) En caso las técnicas analíticas determinen la concentración en unidades de Nitratos-N (NO3·-N), multiplicar el
resultado por el factor 4.43 para expresarlo en las unidades de Nitratos (NO3"). • •
(d) Área Aprobada: Áreas de donde se extraen o cultivan moluscos bivalvos seguros para el comercio directo Yconsumo, libres de contaminación fecal humana o animal, de organismos patógenos o cualquier sustancia deletérea ovenenosa y potencialmente peligrosa.
Área Restringida: Áreas acuáticas impactadas por un grado de contaminación donde se extraen moluscos bivalvos
seguros para consumo humano, luego de ser depurados. /:J. 3: significa variación de 3 grados Celsius respecto al promedio mensual multianual del área evaluada.
Nota 3:
- El símbolo ** dentro de la tabla significa que el parámetro no aplica para esta Subcategorla.- Los valores de los parámetros se encuentran en concentraciones totales, salvo que se indique lo contrario.
(1) Aplicar la Tabla Nº 1 sobre el estándar de calidad de concentración de Amoniaco Total en función del pH Ytemperatura para la protección de la vida acuática en agua dulce (mg/L de NH3).
'1' El Peruano/ Miércoles 7 de Junio de 2017 NORMAS LEGALES 17
Tabla Nº 1: Estándar de calidad de Amoniaco Total en función de pH y temperatura para la protección de la
vida acuática en agua dulce (mg/L de NH3)
Temperatura pH (ºC)
6 6,5 7,0 7,5 8,0 8,5 9,0 10,0
o 231 73,0 23,1 7,32 2,33 0,749 0,250 0,042
5 153 48,3 15,3 4,84 1,54 0,502 0,172 0,034
10 102 32,4 10,3 3,26 1,04 0,343 0,121 0,029
15 69,7 22,0 6,98 2,22 0,715 0,239 0,089 0,026
20 48,0 15,2 4,82 1,54 0,499 0,171 0,067 0,024
25 33,5 10,6 3,37 1,08 0,354 0,125 0,053 0,022
30 23,7 7,50 2,39 0,767 0,256 0,094 0,043 0,021
Nota:
(*)El estándar de calidad de Amoniaco total en función de pH y temperatura para la protección de la vida acuática en agua dulce, presentan una tabla de valores para rangos de pH de 6 a 1 O y Temperatura de O a 30ºC. Para comparar la temperatura y pH de las muestras de agua superficial, se deben tomar la temperatura y pH próximo superior al valor obtenido en campo, ya que la condición más extrema se da a mayor temperatura y pH. En tal sentido, no es necesario establecer rangos.
("*)En caso las técnicas analíticas determinen la concentración en unidades de Amoniaco-N (NH
3-N),
multiplicar el resultado por el factor 1,22 para expresarlo en las unidades de Amoniaco (NH
3).
Categoría 3: Riego de vegetales y bebida de animales
Parámetro&
D1: Riego de vegetales
Unidad de Agua para medida Agua
r!:�;:0 para riego
(c) restringido
FÍSICOS- QUÍMICOS Aceites y Grasas mg/L 5 Bicarbonatos mg/L 518 Cianuro Wad mg/L 0,1 Cloruros mg/L 500
Color Color(b) verdadero 100 (a) Escala PU
Co Conductividad (µS/cm) 2 500 Demanda Bioquímica de mg/L 15 Oxigeno (DBO Demanda Química mg/L 40 de Oxigeno (DQO) Detergentes mg/L 0,2 (SAAM)
Fenoles mgll 0,002 Fluoruros mg/L Nitratos (NO;-N) + mgll 100 Nitritos (NO ·-N) Nitritos (NO ·-N) mgll 10 Oxigeno Disuelto mgll <! 4 (valor minimo)Potencial de Unidad de 6,5-8,5 Hidrógeno (pH) pH Sulfatos mgll 1 000 Temperatura ·c ll 3
INORGÁNICOS
Aluminio mg/L 5
D2: Bebida deanimales
Bebida de animales
10
0,1
100 (a)
5 000
15
40
0,5
0,01
100
10
<! 5
6,5- 8,4
1 000 ll 3
5
D1: Riego de vegetales
Parámetros Unidad de Agua paramedida riego no Agua
restringido para riego
(c) restringido
Arsénico mg/L 0,1 Bario mgll 0,7 Berilio mgll 0,1 Boro mgll 1 Cadmio mgll 0,01 Cobre mgll 0,2 Cobalto mgll 0,05 Cromo Total mgll 0,1 Hierro mg/L 5 Litio mgll 2,5Magnesio mgll -
Manganeso mgll 0,2 Mercurio mgll 0,001 Niquel mgll 0,2 Plomo mgll 0,05 Selenio mgll 0,02 Zinc mgll 2 ORGÁNICO
l!i�ail2� e21i,l2r1a2�
Bifenilos µg/L 0,04Policlorados (PCB)PLAGUICIDAS
Paratión µg/L 35
Qcg1a2,12rnd2� Aldrln µgil 0,004 Clordano µgil 0,006 Dicloro Difenil T ricloroetano µg/L 0,001 (DDT) Dieldrln µgil 0,5Endosu�án µgil 0,01 Endrin µg/L 0,004 Heptacloro y
Heptacloro µgil 0,01 Epóxido Lindano µgil 4
�111lilmill2
Aldicarb µg/L 1 MICROBIOLÓGICOS Y PARASITOLÓGICO
Coliforrnes NMPl100 1 000 2 000 Terrnotolerantes mi
Escherichia cofi NMPI100 1 000 ..
mi Huevos de Huevo/L 1 1 Helmintos
D2: Bebida de animales
Bebida de animales
0,2 ..
0,1 5
0,05 0,5 1 1 ..
2,5 250 0,2 0,01
1 0,05 0,05 24
0,045
35
0,7 7
30
0,5 0,01 0,2
0,03
4
11
1 000
..
..
(a): Para aguas claras. Sin cambio anormal (para aguas que presentan coloración natural).
(b): Después de filtración simple. . . (c): Para el riego de parques publicas, campos deportivos, áreas verdes y plantas ornamentales, �ólo aplican los parámetros microbiológicos y paras1tológ1cos del tipo de riego no restringido.
1::,. 3: significa variación de 3 grados Cels1us respecto al promedio mensual multianual del área evaluada.
Nota 4:
- El slmbolo •• dentro de la tabla significa que elparámetro no aplica para esta Subcategorla.
- Los valores de los parámetros se encuentran �nconcentraciones totales, salvo que se indique lo contrario.
18
Parámetros
FISICOS- aulMICOS Aceites y Grasas (MEH) Cianuro Libre
Color (b)
Clorofila A Conductividad Demanda Bioquimica de Oxigeno (DBOJ Fenoles Fósforo total Nitratos (NO;) (c) Amoniaco Total (NH.J Nitrógeno Total Oxigeno Disuelto (valor mínimo) Potencial de Hidrógeno (pH) Sólidos Suspendidos Totales Sulfuros Temperatura
INORGÁNICOS Antimonio Arsénico Bario Cadmio Disuelto Cobre Cromo VI Mercurio Níquel Plomo Selenio Talio Zinc
ORGÁNICOS
C2m11uul!Hi Qrg60I,2i ll2lilll�§ Hidrocarburos Totales de Petróleo Hexaclorobutadieno
�
Benceno
llida!rnilua!l! Ar2mí!l,2i Benzo(a)Pireno Antraceno Fluoranteno
8I�Dll2l! �211,l!!tid!!i Bttenilos Policlorados (PCB)
PLAGUICIDAS
Qr.g1011fl!1fl!tid!!i Malatión Paratión
Qr.gm1,lmd111 Aldrin Clordano DDT (Suma de 4,4'-DDD y4,4-DDE) Dieldrin Endosulfán Endrin Heptacloro
NORMAS LEGALES Miércoles 7 de Junio de 2017 / � El Peruano
Categoría 4: Conservación del ambiente acuático
Unidad de medida
mg/L mg/L
Color verdadero Escala PVCo
mg/L (µS/cm)
mg/L
mg/L mg/L mg/L mg/L mg/L mg/L
Unidad de pH mg/L mg/L ·c
mg/L mg/L mg/L mg/L
mg/L
mg/L
mg/L
mg/L mg/L
mg/L mg/L mg/L
mg/L
mg/L
mg/L
mg/L mg/L mg/L
mg/L
mg/L mg/L
mg/L mg/L
mg/L
mg/L mg/L mg/L mg/L
E1: Lagunas y lagos
5,0 0,0052
20 (a)
0,008 1 000
5
2,56 0,035
13
(1)
0,315 � 5
6,5 a 9,0 s 25 0,002 ti 3
0,64 0,15 0,7
0,00025 0,1
0,011 0,0001 0,052
0,0025 0,005
0,0008 0,12
0,5
0,0006
0,05
0,0001 0,0004 0,001
0,000014
0,0001 0,000013
0,000004 0,0000043
0,000001
0,000056 0,000056 0,000036 0,0000038
E2: Ríos
Costa y síerra
5,0 0,0052
20 (a)
..
1 000
10
2,56 0,05 13 (1) ..
� 5 6,5 a 9,0 s 100 0,002 ti 3
0,64 0,15 0,7
0,00025 0,1
0,011 0,0001 0,052 0,0025 0,005
0,0008 0,12
0,5
0,0006
0,05
0,0001 0,0004 0,001
0,000014
0,0001 0,000013
0,000004 0,0000043
0,000001
0,000056 0,000056 0,000036
0,0000038
Selva
5,0 0,0052
20 (a)
..
1 000
10
2,56 0,05 13 (1) ..
� 5 6,5 a 9,0 s 400 0,002 ti 3
0,64 0,15
1 0,00025
0,1 0,011
0,0001 0,052
0,0025 0,005
0,0008 0,í2
0,5
0,0006
0,05
0,0001 0,0004 0,001
0,000014
0,0001 0,000013
0,000004 0,0000043
0,000001
0,000056 0,000056 0,000036 0,0000038
E3: Ecosístemas costeros y marinos
Estuarios Marinos
5,0 5,0 0,001 0,001
.. ..
.. ..
.. ..
15 10
5,8 5,8 0,124 0,062 200 200 (2) (2) .. ..
� 4 � 4 6,8- 8,5 6,8-8,5 s 100 s 30 0,002 0,002 ti 2 ti 2
.. ..
0,036 0,036 1 ..
0,0088 0,0088 0,05 0,05 0,05 0,05
0,0001 0,0001 0,0082 0,0082 0,0081 0,0081 0,071 0,071 .. ..
0,081 0,081
0,5 0,5
0,0006 0,0006
0,05 0,05
0,0001 0,0001
0,0004 0,0004
0,001 0,001
0,00003 0,00003
0,0001 0,0001 .. ..
.. ..
0,000004 0,000004
0,000001 0,000001
0,0000019 0,0000019
0,0000087 0,0000087
0,0000023 0,0000023
0,0000036 0,0000036
t� � El Peruano/ Miércoles 7 de Junio de 2017 NORMAS LEGALES 19
E2: Ríos
Parámetros Unidad de E1: Lagunas y
medida lagos Costa y sierra
Heptacloro Epóxido mg/L 0,0000038 0,0000038
Lindano mg/L 0,00095 0,00095
Penlaclorofenol (PCP) mg/L 0,001 0,001
!;ul!i!mi!l2
Aldicarb mg/L 0,001 0,001
MICROBIOLÓGICO
Coliformes Termotolerantes NMP/100ml 1 000 2 000
Selva
0,0000038
0,00095
0,001
0,001
2 000
E3: Ecosistemas costeros y marinos
Estuarios
0,0000036 ..
0,001
0,00015
1 000
Marinos
0,0000036 ..
0,001
0,00015
2 000
(a) 100 (para aguas claras). Sin cambio anormal (para aguas que presentan coloración natural).(b) Después de la filtración simple.(c) En caso las técnicas analíticas determinen la concentración en unidades de Nitratos-N (NO
3·-N), multiplicar el
resultado por el factor 4.43 para expresarlo en las unidades de Nitratos (NO3
·). t:,, 3: significa variación de 3 grados Celsius respecto al promedio mensual rnultianual del área evaluada.
Nota 5:
- El símbolo ,.,. dentro de la tabla significa que el parámetro no aplica para esta Subcategoría.- Los valores de los parámetros se encuentran en concentraciones totales, salvo que se indique lo contrario.(1) Aplicar la Tabla Nº 1 sobre el estándar de calidad de concentración de Amoniaco Total en función del pH y
temperatura para la protección de la vida acuática en agua dulce (rng/L de NH3) que se encuentra descrita en la Categoría 2: Extracción, cultivo y otras actividades marino costeras y continentales.
(2) Aplicar la Tabla Nº 2 sobre Estándar de calidad de Amoniaco Total en función del pH, la temperatura y la salinidadpara la protección de la vida acuática en agua de mar y estuarios (rng/L de NH3).
Tabla Nº 2: Estándar de calidad de Amoniaco Total en función del pH, la temperatura y la salinidad para
la protección de la vida acuática en agua de mar y estuarios (mg/L de NH3)
pH Temperatura (ºC)
o 5 10 15 20 25 30 35
Salinidad 10 g/kg
7,0 41,00 29,00 20,00 14.00 9,40 6,60 4,40 3,10
7,2 26,00 18,00 12,00 8,70 5,90 4,10 2,80 2,00
7,4 17,00 12,00 7,80 5,30 3,70 2,60 1,80 1,20
7,6 10,00 7,20 5,00 3,40 2,40 1,70 1,20 0,84
7,8 6,60 4,70 3,10 2,20 1,50 1,10 0,75 0,53
8,0 4,10 2,90 2,00 1,40 0,97 0,69 0,47 0,34
8,2 2,70 1,80 1,30 0,87 0,62 0,44 0,31 0,23
8,4 1,70 1.20 0,81 0,56 0,41 0,29 0,21 0,16
8,6 1,10 0,75 0,53 0,37 0,27 0,20 0,15 0,11
8,8 0,69 0,50 0,34 0,25 0,18 0,14 0,11 0,08
9,0 0,44 0,31 0,23 0,17 0,13 0,10 0,08 0,07
Salinidad 20 g/kg
7,0 44,00 30,00 21,00 14,00 9,70 6,60 4,70 3,10
7,2 27,00 19,00 13,00 9,00 6,20 4,40 3,00 2,10
7,4 18,00 12,00 8,10 5,60 4,10 2,70 1,90 1,30
7,6 11,00 7,50 5,30 3,40 2,50 1,70 1,20 0,84
7,8 6,90 4,70 3,40 2,30 1,60 1,10 0,78 0,53
8,0 4,40 3,00 2,10 1,50 1,00 0,72 0,50 0,34
8,2 2,80 1,90 1,30 0,94 0,66 0,47 0,31 0,24
8,4 1,80 1,20 0,84 0,59 0,44 0,30 0,22 0,16
8,6 1,10 0,78 0,56 o, 41 0,28 0,20 0,15 0,12
8,8 0,72 0,50 0,37 0,26 0,19 0,14 0,11 0,08
9,0 0,47 0,34 0,24 0,18 0,13 0,10 0,08 0,07
Sallnldad 30 g/kg
7,0 47,00 31,00 22,00 15,00 11,00 7,20 5,00 3,40
7,2 29,00 20,00 14,00 9,70 6,60 4,70 3,10 2,20
7,4 19,00 13,00 8,70 5,90 4,10 2,90 2,00 1,40
7,6 12,00 8,10 5,60 3,70 3,10 1,80 1,30 0,90
7,8 7,50 5,00 3,40 2,40 1,70 1,20 0,81 0,56
pH Temperatura (ºC)
o 5 10 15 20 25 30 35
8,0 4,70 3,10 2,20 1,60 1,10 0,75 0,53 0,37
8,2 3,00 2,10 1,40 1,00 0,69 0,50 0,34 0,25
8,4 1,90 1,30 0,90 0,62 0,44 0,31 0,23 0,17
8,6 1,20 0,84 0,59 0,41 0,30 0,22 0,16 0,12
8,8 0,78 0,53 0,37 0,27 0,20 0,15 0,11 0,09
9,0 0,50 0,34 0,26 0,19 0,14 0,11 0,08 0,07
Notas:
(*)El estándar de calidad de Amoniaco Total en función del pH, la temperatura y la salinidad para la protección de la vida acuática en agua de mar y estuarios, presentan una tabla de valores para rangos de pH de 7,0 a 9,0, Temperatura de O a 35ºC, y Salinidades de 1 O, 20 y 30 g/ kg. Para comparar la Salinidad de las muestras de agua superficial, se deben tornar la salinidad próxima inferior (30, 20 o 1 O) al valor obtenido en la rn��stra, y� q_ue la condición más extrema se da a menor salinidad. As1rnIsrno, para comparar la temperatura y pH de las muestras de agua superficial, se deben tornar la temperatura y pH próximo superior al valor obtenido en campo, ya que la condición más extrema se da a mayor temperatura y pH. En tal sentido, no es necesario establecer rangos.
(**)En caso las técnicas anallticas determinen la concentración en unidades de Arnoniaco-N (NH3-N), multiplicar el resultado por el factor 1.22 para expresarlo en las unidades de Amoniaco (NH3).
NOTA GENERAL:
- Para el parámetro de Temperatura el símboloti significa variación y se dete�rnina�á co_nsiderando la media histórica de la información d1spon1ble en los últimos 05 años corno máximo y de 01 año corno mínimo, considerando la estacionalidad.
- Los valores de los parámetros están referidos a la concentración máxima, salvo que se precise otra condición.
- Los reportes de laboratorio deberán cont_ernplar corno parte de sus informes de Ensayo los Límites deCuantificación y el Límite de Detección.
1529835-2
El Peruano
Lima, miércoles 17 de marzo de 2010 W NORMAS LEGALES 415675
de impuestos o de derechos aduaneros de ninguna clase o denominación.
Artículo 5°.- La presente Resolución Suprema serárefrendada por el Presidente del Consejo de Ministros.
Regístrese, comuníquese y publíquese.
ALAN GARCÍA PÉREZ Presidente Constitucional de la República
JAVIER VELASQUEZ QUESQUÉN Presidente del Consejo de Ministros
469446-6
Aprueba Límites Máximos para los efluentes de Tratamiento de Aguas Domésticas o Municipales
DECRETO SUPREMO Nº 003-2010-MINAM
Permisibles Plantas de
Residuales
EL PRESIDENTE DE LA REPÚBLICA
CONSIDERANDO:
Que, el artículo 3° de la Ley Nº 28611, Ley General del Ambiente, dispone que el Estado, a través de sus entidades y órganos correspondientes, diseña y aplica, las políticas, normas, instrumentos, incentivos y sanciones que sean necesarias para garantizar el efectivo ejercicio de los derechos y el cumplimiento de las obligaciones y responsabilidades contenidas en dicha ley;
Que, el numeral 32.1 del artículo 32º de la Ley General del Ambiente define al Limite Máximo Permisible - LMP, como la medida de concentración o grado de elementos, sustancias o parámetros físicos, químicos y biológicos, que caracterizan a un efluente o una emisión, que al ser excedida causa o puede causar daños a la salud, al bienestar humano y al ambiente. Su determinación corresponde al Ministerio del Ambiente. Su cumplimiento es exigible legalmente por el Ministerio del Ambiente y los organismos que conforman el Sistema Nacional de Gestión Ambiental. Los criterios para la determinación de la supervisión y sanción serán establecidos por dicho Ministerio;
Que, el numeral 33.4 del artículo 33º de la Ley Nº 28611 en mención dispone que, en el proceso de revisión de los parámetros de contaminación ambiental, con la finalidad de determinar nuevos niveles de calidad, se aplique el principio de la gradualidad, permitiendo ajustes progresivos a dichos niveles para las actividades en curso;
Que, el literal d) del artículo 7° del Decreto Legislativo NO 1013, Ley de Creación, Organización y Funciones del Ministerio del Ambiente - MINAM, establece como función específica de dicho Ministerio, elaborar los Estándares de Calidad Ambiental (ECA) y Limites Máximos Permisibles (LMP), de acuerdo con los planes respectivos. Deben contar con la opinión del sector correspondiente, debiendo ser aprobados mediante Decreto Supremo;
Que, mediante Resolución Ministerial Nº 121-2009-MINAM, se aprobó el Plan de Estándares de Calidad Ambiental (ECA) y Limites Máximos Permisibles (LMP) para el año fiscal 2009 que contiene dentro de su anexo la elaboración del Limite Máximo Permisible para los efluentes de Plantas de Tratamiento de fuentes domésticas;
Que el artículo 14° del Reglamento de la Ley del Sistema Nacional de Evaluación de Impacto Ambiental (SEIA) aprobado mediante Decreto Supremo Nº 019-2009-MINAM, establece que el proceso de evaluación de impacto ambiental comprende medidas que aseguren, entre otros, el cumplimiento de los Estándares de Calidad Ambiental, los Limites Máximos Permisibles y otros parámetros y requerimientos aprobados de acuerdo a la legislación ambiental vigente; del mismo modo, en su artículo 28° el citado reglamento señala que, la modificación del estudio ambiental o la aprobación de instrumentos de gestión ambiental complementarios,
implica necesariamente y según corresponda la actualización de los planes originalmente aprobados al emitirse la Certificación Ambiental;
De conformidad con lo dispuesto en el numeral 8) del artículo 118° de la Constitución Política del Perú y el numeral 3 del artículo 11º de la Ley Nº 29158 Ley Orgánica del Poder Ejecutivo;
DECRETA:
Artículo 1º.- Aprobación de Límites Máximos Permisibles (LMP) para efluentes de Plantas de Tratamiento de Agua Residuales Domésticas o Municipales (PTAR)
Aprobar los Limites Máximos Permisibles para efluentes de las Plantas de Tratamiento de Aguas Residuales Domésticas o Municipales, los que en Anexo forman parte integrante del presente Decreto Supremo y que son aplicables en el ámbito nacional.
Artículo 2°.- Definiciones Para la aplicación del presente Decreto Supremo se
utilizarán los siguientes términos:
- Planta de Tratamiento de Aguas ResidualesDomésticas o Municipales (PTAR): Infraestructura y procesos que permiten la depuración de las aguas residuales Domésticas o Municipales.
- Límite Máximo Permisible (LMP).- Es la medida dela concentración o del grado de elementos, sustancias o parámetros físicos, químicos y biológicos, que caracterizan a una emisión, que al ser excedida causa o puede causar daños a la salud, al bienestar humano y al ambiente. Su cumplimiento es exigible legalmente por el MINAM y los organismos que conforman el Sistema de Gestión Ambiental.
- Protocolo de Monitoreo.- Procedimientos ymetodologías establecidas por el Ministerio de Vivienda, Construcción y Saneamiento en coordinación con el MINAM y que deben cumplirse en la ejecución de los Programas de Monitoreo.
Artículo 3°.- Cumplimiento de los Límites Máximos Permisibles de Efluentes de PTAR
3.1 Los LMP de efluentes de PTAR que se establecen en la presente norma entran en vigencia y son de cumplimiento obligatorio a partir del día siguiente de su publicación en el Diario Oficial El Peruano.
3.2 Los LMP aprobados mediante el presente Decreto Supremo, no serán de aplicación a las PTAR con tratamiento preliminar avanzado o tratamiento primario que cuenten con disposición final mediante emisario submarino.
3.3. Los titulares de las PTAR que se encuentren en operación a la dación del presente Decreto Supremo y que no cuenten con certificación ambiental, tendrán un plazo no mayor de dos (02) años, contados a partir de la publicación del presente Decreto Supremo, para presentar ante el Ministerio de Vivienda, Construcción y Saneamiento su Programa de Adecuación y Manejo Ambiental; autoridad que definirá el respectivo plazo de adecuación.
3.4 Los titulares de las PTAR que se encuentren en operación a la dación del presente Decreto Supremo y que cuenten con certificación ambiental, tendrán un plazo no mayor de tres (03) años, contados a partir de la publicación del presente Decreto Supremo, para presentar ante el Ministerio de Vivienda, Construcción y Saneamiento, la actualización de los Planes de Manejo Ambiental de los Estudios Ambientales; autoridad que definirá el respectivo plazo de adecuación.
Artículo 4°.- Programa de Monitoreo
4 1 Los titulares de las PTAR están obligados a reali�ar el monitoreo de sus efluentes, de conformidad con el Programa de Monitoreo aprobado por el Ministerio de Vivienda, Construcción y Saneamiento. El Programa de Monitoreo especificará la ubicación de lo� puntos de control, métodos y técnicas adecuadas; asI como los parámetros y frecuencia de muestreo para cada uno de ellos.
415676 W NORMAS LEGALESEl Peruano
Lima, miércoles 17 de marzo de 2010
4.2 _El Ministe_rio . de Vivienda, Construcción y Saneamiento podra disponer el monitoreo de otros parámetros que no estén regulados en el presente Decreto Supremo, cuando existan indicios razonables de riesgo a la salud humana o al ambiente.
4.3 Sólo será considerado válido el monitoreo c�nform_e al Pro_tocolo de Monitoreo establecido por el M1nisteno de V1v1enda, Construcción y Saneamiento realizado por Laboratorios acreditados ante el Instituto Nacional de Defensa del Consumidor y de la Propiedad Intelectual - INDECOPI.
Artículo 5°.- Resultados de monitoreo
5.1 . El Ministerio de Vivienda, Construcción y Saneamiento es responsable de la administración de la base de datos del monitoreo de los efluentes de las PTAR por lo que l<:J� titulares de las actividades están obligados a reportar penod1camente los resultados del monitoreo de los parámetros_ regulados en el Anexo de la presente norma, de conformidad con los procedimientos establecidos en el Protocolo de M�nitor1::o aprobado por dicho Sector.
5.2 _El Min1ste�10 de Vivienda, Construcción y San1::am1ento debera elaborar y remitir al Ministerio del Amb1en_te den_tro de los pri_m�ros noventa (90) días de cada ano, un informe estadIst1co a partir de los datos de monitoreo presentados por los Titulares de las PTAR dura_nte el año a_nte�or,_ lo cual será de acceso público a traves del portal instItuc1onal de ambas entidades.
Artículo 6°.- Fiscalización y Sanción. La fi�calización del cumplimiento de los LMP y otras
d1spos1c1ones aprobadas _en el presente Decreto Supremo estará a cargo de la autoridad competente de fiscalización según corresponda.
Artículo 7°.- RefrendoE_I _ presente Dee:reto Supremo será refrendado por
el Ministro del Ambiente y por el Ministro de Vivienda Construcción y Saneamiento.
DISPOSICIÓN COMPLEMENTARIA FINAL
Única.- El Ministerio de Vivienda, Construcción y Saneamiento, en coordinación con el MINAM, aprobará el Protocolo de Monitoreo de Efluentes de PTAR en un plazo no mayor a doce (12) meses contados a partir de la vigencia del presente dispositivo.
. Dado en la Casa de Gobierno. en Lima, a los dieciséis d1as del mes de marzo del año dos mil diez.
ALAN GARCIA PÉREZ Presidente Constitucional de la República
ANTONIO JOSÉ BRACK EGG Ministro del Ambiente
JUAN SARMIENTO SOTO Ministro de Vivienda, Construcción y Saneamiento
ANEXO
LIMITES MÁXIMOS PERMISIBLES
PARA LOS EFLUENTES DE PTAR
PARÁMETRO UNIDAD LMP DE EFLUENTES PARA VERTIDOS A
CUERPOS DE AGUAS
Aceites y grasas mg/L 20
Coliformes Termotolerantes NMP/100 10,000 ml
Demanda Bioquímica de mg/L 100 Oxígeno
Demanda Química de mg/L 200 Oxigeno
pH unidad 6.5-8.5
Sólidos Totales en mUL 150 Suspensión
Temperatura ·e <35
469446-2
Designan responsable de brindar información pública y del contenido del portal de internet institucional del Ministerio
RESOLUCIÓN MINISTERIAL Nº 036-2010-MINAM
Lima, 16 de marzo de 2010
CONSIDERANDO:
Qu_e, mediante Decreto Legislativo Nº 1013, se aprobo la Ley de Creación, Organización y Funciones del Ministerio del Ambiente;
Que,. la L_ey_ de Transparene:ia y Acceso a la Información Publica, cuyo Texto Unico Ordenado fue aprobad? por Decreto Supremo Nº 043-2003-PCM, tiene por finalidad promover la transparencia de los actos del Estado y regular el derecho fundamental del acceso a la información consagrado en el numeral 5 del artículo 2º de la Constitución Política del Perú;
Que, . el artículo _3° d� la citada Ley, señala que el Estado tiene la obhgac1on de entregar la información que de�!=inden las personas en aplicación del principio de publicidad, para cuyo efecto se designa al funcionario responsabl� d_e entregar la información solicitada;
Que, asImIsmo, de acuerdo a lo previsto en el artículo 5° de la mencionada Ley, las Entidades Públicas deben identificar al funcionario responsable de la elaboración de los Portales de Internet;
Que, mediante Resolución Ministerial Nº 070-2008-MINAM, se designó a la señorita Cristina Miranda Seas como funcionaria responsable de brindar información que demanden las personas, y responsable del contenido de la información ofrecida en el Portal de Internet del Ministerio del Ambiente;
Que, por razones del servicio y considerando la renuncia al cargo que desempeñaba en el Ministerio del Ambiente la servidora citada en el considerando precedente, resulta necesario designar al personal responsable de brindar información en el marco de la Ley de Transparencia y Acceso a la Información Pública y responsable del Portal de Internet Institucional;
Con el visado de la Secretaría General y de la Oficina de Asesoría Jurídica; y
De conformidad con lo establecido en el Decreto Legislativo Nº 1'013, Ley de Creación, Organización y Funciones del Ministerio del Ambiente; el Texto único Ordenado de la Ley de Transparencia y Acceso a la Información Pública, aprobado por Decreto Supremo Nº 043-2003-PCM; y el Decreto Supremo Nº 007-2008-MINAM que aprueba el Reglamento de Organización y Funciones del Ministerio del Ambiente;
SE RESUELVE:
Artículo 1 °.- Designar al abogado Hugo Milko Ortega Polar como Responsable de brindar la información pública del Ministerio del Ambiente y Responsable del contenido de la información ofrecida en el Portal de Internet Institucional, de conformidad con el Texto Único Ordenado de la Ley de Transparencia y Acceso a la Información Pública, aprobado por Decreto Supremo Nº 043-2003-PCM.
Artículo 2°.- Todos los órganos del Ministerio del Ambiente, bajo responsabilidad, deberán facilitar la información y/o documentación que les sea solicitada como consecuencia de lo dispuesto en el artículo precedente, dentro de los plazos establecidos en la normatividad vigente.
Articulo 3°.- Disponer que la presente Resolución se publique en el Diario Oficial El Peruano y en Portal de Internet del Ministerio del Ambiente.
Articulo 4°.- Notificar la presente Resolución a todos los órganos del Ministerio del Ambiente, al Órgano de Control Institucional y al responsable designado.
Regístrese, comuníquese y publíquese.
ANTONIO JOSÉ BRACK EGG Ministro del Ambiente
469445-1