Reproduction sexuée des Embryophytes
B5
Plant feuillé de Polypode
Face inférieure d’une feuille
Sores nus Fronde
Nervure principale
Détail d’un sore
2 mm
100 µm
Déhiscence d’un sporange
100 µm
100 µm
Les spores
10 µm
Germination d’une sporeAtlas de Biologie végétale (Dunod) page 97
20 µm
Le prothalle (vue ventrale)
archégones
anthéridies
lame cordiforme chlorophyllienne
rhizoïdes
1 mm
zar : zone des archégones
cm : coussinet médian
an : anthéridies
Atlas de Biologie végétale (Dunod) page 97
B3.1b - Les anthéridies : gamétanges mâles
10 µm10 µm
10 µm
Atlas de BV (Dunod) p. 97
Spermatozoïdes flagellés et nageurs
1 µm
Atlas de Biologie végétale (Dunod) page 96
B3.1c - Les archégones : gamétanges femelles
20 µm
20 µm
col pluricellulaire
Développement du nouveau sporophyte sur le prothalle
prothalle
jeune fougère
5 mm
sporange
Plante feuillée (fougère)
Embryon àdéveloppement
immédiat
Méiospores (N)
Cellules mèresdes spores (2N)
MéioseZygote (2N)
ProthalleSpermatozoïde
Archégone
Oosphère Spermatozoïde
Anthéridie
FécondationZoïdogamie
B5.2 - Cycle de reproduction du polypode
SPOROPHYTE (2N)
DIPLOPHASE
GAMETOPHYTE (N)
HAPLOPHASE
Dissémination de l'espèce
Dispersion de l'information
génétique
Pistil ou gynécée
6 étamines formant l'androcée
Fleur de Lis
Périanthe = sépales + pétales
CT ovaire cfdiapo suivante
Formation du sac embryonnaireDans le nucelle de l’ovule, dans l’ovaire
1 mm1 carpelle
ovule
sac embryonnaire
B5.4a - L’ovule des angiospermes
0,5 mm
Cellule mère des mégaspores ou cellule sporogène : diploïde
10 µm
Méiose
10 µm
Mitoses
Stade 2 noyaux Stade 8 noyaux
100 µm
Atlas de BV tome 2 (Dunod) p.
B5.4b – Le gamétophyte femelle
100 µm
np = noyaux polaires
so = synergides + oosphère
Pistil ou gynécée
6 étamines formant l'androcée
Fleur de Lis
Périanthe = sépales + pétales
CT d'anthère
cf diapo suivante
Avant la méiose
100 µm
Atlas de BV tome 2 (Dunod) p.
100 µm
Début de méiose (prophase I)Atlas de BV tome 2 (Dunod) p.
Détail de la méiose dans l’anthère
Fin de la méiose
100 µm
Anthère mûre
1 mm
Détail de la paroi
10 µm
1 mm
B5.5 – Libération du pollen par la déhiscence des an thères
0,2 mm
De la microspore au grain de pollen
Pollinisation chez la violette (Viola odorata, Violariées)
Fleurs pétalifères allogames
CL pistil
Fleur d'Orchidéehttp://www.snv.jussieu.fr/bmedia/Pollinisation/Orch i.htm
1= Tépales 2= Pièces fertiles3= Anthère portant 2 pollinies4= Etamine stérile 5= Rostellum. 6= Labelle 7et 8 = Ovaire d'autres fleurs 9= Style + stigmate.
http://en.wikipedia.org/wiki/File:Orchis_sambicina_anatomia.jpg
Inflorescence des Poacées.Pollinisation anémogame
Épillet
Glume3 étamines avec
long filet et anthère pendante
La sauge commune. Pollinisation entomogamehttp://www.snv.jussieu.fr/bmedia/Pollinisation/sauge1.htm
Arum maculatum (Aracées)
spadice
fleurs stériles
fleurs mâles
fleurs femelles
Inflorescence
Fleur de l’Ophrys abeille
http://pedagogie.ac-amiens.fr/svt/spip/article-imprim.php3?id_article=203
B5.6 - Pollinisation entomogame chez la sauge
1 cm
Germination des tubes polliniques sur le stigmate
1 cm 0,1 mm
Détail d’un tube pollinique
0,1 mm
Styles compacts
Linaire Tomate
Styles creux
Entrée du tube pollinique par le micropyle
La double fécondation
B5.8 Développement embryonnaire de la capselle
B5.8b Développement embryonnaire de la capselle
hypocotyle
La graine de Ricin (Vue externe)
5 mm
Chalaze
Raphé
Tégument externe
Hile
Caroncule (recouvrant le micropyle)
Coupes longitudinales d'une graine de Ricin (après suppression du tégument externe)
1 cm
Tégument interne
Albumen
Cotylédon foliacé
Axe embryonnaire
Tégument interne
Albumen
Cotylédon foliacé
Gemmule
Tigelle
Radicule
Axe embryonnaire
Em
bryon
Coupe sagittale
Séparation suivant le plan intercotylédonaire
Coupe longitudinale sagittale d'une graine de Haricot (téguments ôtés)
Cicatrice du cotylédon enlevé
Gemmule
Hypocotyle
Radicule
Axe
embryonnaire
5 mm
Cotylédon tubérisé
Cotylédon tubérisé
Transformation de l'ovaire de Capselle en fruit : croisssance
Fruits charnus
Baie Drupe
Épicarpe
Mésocarpe
Endocarpe
Fruits secs
Déhiscent
Indéhiscent
B5-9. Modifications métaboliques accompagnant la maturation des fruits charnus.
C2H4 rejeté µl.kg-1.h-1
20
40
60
80
CO2 rejeté ml.kg-1.h-1
0
6 93 jours
CO2
C2H4
temps
20
40
60
50
amidon
glucides réducteurs
0
6 93 jours
temps
a - Rejets gazeux lors de la maturation de bananes b - Teneur en glucides lors de la maturation de bananes
30
10
% massique
0 0
B5-9. Modifications métaboliques accompagnant la maturation des fruits charnus.
2
4
6
8
Teneur en malate (% masse fraîche)
0
10 155 jours
temps
c - Teneur en acide organique dans des disques de pommes conservés à 12 °C
0
10
12
2
4
6
8
0
10 155 jours
temps
d - Pigments et constituants des parois lors de la maturation des poires .
0
10
(u.a.)
composés pectiques
chlorophylles
Autochorie
Ecballium (baie déhiscente)Balsamine (capsule)
Anémochorie
Samares
Erable
Pissenlit
Akène à aigrette Inflorescence ailée
Tilleul
Zoochorie
Akène crochus de la Benoîte
Ectozoochorie Endozoochorie
Tous les fruits charnus
graine àdéveloppement
différéÉtaminesCarpelles
Fleur
Plante feuillée
AlbumenEmbryon OvuleSacs
polliniques
Cellules mères des spores (2N)
MÉIOSEDOUBLE FÉCONDATION
SIPHONOGAMIE
Macrospore (N)
Zygote accessoire (3N)
Zygote principal (2N)
Sac embryonnaire
Pollen
Mitoses Mitose
Mitosegamétogénèse
GerminationDeveloppement
B5.7 - Cycle de reproduction d’une angiosperme
Microspores (N)
Dissémination de l'espèce
Dispersion de l'information
génétique
GAMETOPHYTES (N) . HAPLOPHASE
SPOROPHYTE (2N)
DIPLOPHASE
Gamètes mâles
Gamètes femelles