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7/21/2019 Paper traducido I.pdf
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Desarrollo de dientes en embriones de pollo después de un
trasplante de cresta neural de ratón
Thimios A. Mitsiadis*†‡, Yvonnick Che´ raud§, Paul Sharpe*‡, and Josiane Fontaine-Pe´ rus§
*Departamento de Desarrollo Craneofacial, Guy, King, e Instituto Dental Santo Tomás, del Kings College de Londres, Piso
28 Torre de Guy, Hospital Guy, Londres SE1 9RT, Reino Unido; §Centre National de la Recherche Scientifique Unite' Mixte
de Recherche 6018, Faculte' de las Ciencias y des Técniqhes, Universite' de Nantes, 2 Rue de la Houssinie` re, BP
92208, 44322 Nantes Cedex 3, Francia; y † Laboratorio de Biología Mole' culaire et Cellulaire, Unite' Mixte de Recherche
5665, Centro Nacional de Investigación Científica, Ecole Normale Supe' rieure de Lyon, 46 Alle' e d'Italie, 69364 Lyon
Cedex 07, Francia
Editado por NM Le Douarin, Institut d'Embryologie Cellulaire et Mole' culaire du Centre Nationale de la Recherche
Scientifique, Nogent-sur-Marne Cedex, Francia, se aprobó el 01 de abril del 2003 (recibido para revisión el 21 de
noviembre 2002)
Las aves perdieron los dientes hace 70-80 millones
de años. Actualmente se piensa que es la
mesénquima derivada de la cresta neural craneal la
que ha perdido la capacidad odontogénica mientras
que el epitelio oral conserva las propiedades de
señalización necesarias para inducir la
odontogénesis. Para investigar la capacidad
odontogénica de ectomesénquima hemos utilizado
trasplantes del tubo neural de ratones en embriones
de pollo para reemplazar la población celular de la
cresta neural de pollo por células de la cresta neural
de ratón. Las quimeras de ratón y de pollo obtenidas
mostraron evidencia de formación de dientes que
demuestran que el epitelio oral aviar es capaz de
inducir un programa de desarrollo no aviar células
mesenquimales derivadas de la cresta neural de
ratones.
El desarrollo de la dentadura, en común con la formación
de muchos otros órganos de vertebrados, implica series
recíprocas de interacciones epitelio mesenquimales (1).
Estas interacciones inductivas son mediadas por factores
difusibles entre el epitelio oral y el mesénquima derivado
de la cresta neural (2, 3). En el embrión de ratón, el
período de inicio del desarrollo de los dientes se extiende
desde el día embrionario (E) 8, cuando las células de lacresta emergen de los pliegues neurales craneales, a E11,
cuando ocurre el engrosamientos local del epitelio oral (4
- 6). El epitelio se invagina hacia el mesénquima
subyacente para formar el germen dentario (E12.5-13).
Experimentos de recombinación de tejidos clásicos y
análisis molecular más recientes han identificado que el
epitelio oral proporciona información instructiva para la
iniciación del desarrollo de los dientes en ratones. El
epitelio dental presuntivo E9 -11 puede provocar
formación de los dientes incluso en mesénquima derivada
de la cresta neural que normalmente no forma dientes,
pero no es capaz de inducir la formación de los dientes en
un mesénquima derivada de la cresta no neural, tales
como el mesénquima de las extremidades (4, 7). Por E12,
cambian los potenciales odontogénicos al mesénquima,
que puede instruir a cualquier tipo de epitelio para
formar estructuras de dientes específicas (7-9). Estos
experimentos apuntan a la importancia de las señales
epiteliales en la iniciación de la formación de los dientes
en ratón.
Las aves perdieron su dentición hace casi 70 -80 millones
de años, pero un número de genes que inician la
odontogénesis se siguen expresando en sus arcadas (10,
11). Durante el desarrollo embrionario aviar, estructuras
rudimentarias que constan de engrosamientos locales
epiteliales se forman transitoriamente en el arco
mandibular (12, 13), y estos engrosamientos se parecen
mucho a los engrosamientos dentales murinos. Aunque
estas invaginaciones epiteliales comparten similitudes en
la organización y la morfología con primordios de dientes
de ratón, los mecanismos moleculares que regulan su
crecimiento parecen ser distintas, porque su desarrollo sedetiene en esta etapa, lo que puede ser debido al origen
de las células de la cresta neural y las diferencias
regionales o en el epitelio oral. Varios estudios in vitro
han sugerido que un número de genes implicados en la
formación de los dientes, y que permanecen silenciados
en las aves modernas, se pueden reactivar mediante una
señalización apropiada (8, 14). Epitelio de pollo islado
cultivado en combinación con mesénquima dental de
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ratón produjo estructuras dentales, lo que sugiere que es
el mesénquima derivado de la cresta neural craneal de
Aves modernas el cual ha perdido la capacidad
odontogénica, mientras que el epitelio oral conserva las
propiedades de señalización para inducir la
odontogénesis en el mesénquima competente (8 , 14, 15).
Desafortunadamente, estos enfoques carecen de
recombinación que se realiza in vitro, y por otra parte, es
difícil eliminar completamente la contaminación del
mesénquima de ratón con epitelio residual. Para
determinar si los dientes se pueden formar en las
mandíbulas en desarrollo de embriones de aves in ovo,
injertamos injertados cresta neural craneal de ratón en
pollos.
Materiales y métodos
Preparación de quimeras de pollo y de ratón Para la
microcirugía se utilizaron embriones de pollo JA657 de 1día de incubación (siete somitas) y embriones de ratones
suizos en E8 (cuatro a seis somitas). Se realizaron
intercambios recíprocos de las regiones definidas con
precisión del el tubo neural entre embriones de pollo y
ratón como se describió previamente (16). La región
cefálica a ser injertada fue delimitada en el ratón donante
y el huésped polluelo, luego se retiró desde el huésped y
fue sustituida por el injerto del donante (Fig. 1 superior).
Quimera embriones se incubaron in ovo durante
diferentes períodos (1-18 días).
Visualización de la migración celular de la cresta neural .Las quimeras muertas 1-2 días después de la cirugía se
prepararon para un montaje completo de hibridación in
situ con sondas de ratón para comprobar la migración
celular de la cresta neural a los territorios faciales de los
embriones de pollo huéspedes. Las cabecillas de las
quimeras más antiguas se prepararon en secciones para
el examen histológico e hibridación in situ. Para
determinar la presencia de tejido del donante en los
huéspedes, varias secciones de cada quimera se tiñeron
con bis-benzimida (tinción de Hoechst), como se describe
(16). La distribución de las células de la cresta neural de
ratón en la cabeza de las quimeras se visualizó mediante
una repartición de ADN que difiere entre los núcleos de
ratón y de pollo. (Las células de ratón tenían un aspecto
más brillante después de la tinción de Hoechst.)
Hibridación in situ e inmunohistoquímica en cortes de
tejido. Para la hibridación in situ, ribosondas específicas
marcadas de ratón (MMK, mMsx1, mPax9, mBarx1,
cPitx2, cFGF8, cBMP4, cShh) fueron utilizados. Todo el
montaje in situ de la hibridación y la hibridación in situ
en las secciones fueron realizados según Wilkinson (17).
Para la inmunohistoquímica, se usaron anticuerpos
purificados por afinidad contra varias proteínas
(sialoproteína de dentina, nestina). Se realizó tinción coninmunoperoxidasa (ABC Kit, Vector Laboratorios) como
se ha descrito previamente (18, 19). La tinción positiva
con peroxidasa produce color rojo en el microscopio de
luz.
Resultados y discusión
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Varias moléculas son bien conocidas por estar implicadas
en la iniciación de la formación de los dientes en murinos.
Pitx2 es un gen homeobox que se expresa inicialmente en
todo el epitelio oral del ratón y progresivamente se
restringe al epitelio dental (20). La proteína
morfogenética ósea 4 (BMP4), factor de crecimiento de
fibroblastos-8 (FGF8), y sonic hedgehog (Shh) están
involucrados en la determinación de los sitios de
formación de los dientes en ratones y la determinación
por etapas de la ectomesénquima en la papila dental (21-
25). Se ha documentado la expresión de BMP4 y FGF8
en el epitelio oral de polluelos en grandes dominios
durante el desarrollo embrionario (10). Aunque Shh se
expresa en las zonas de epitelio facial durante el
desarrollo del pollo, no se expresa en (ST21) el epitelio
dental temprano (11, 26). La expresión restringida de
estas moléculas a placodas dentales en el epitelio oral
durante el desarrollo del ratón es, pues, una indicación dela inducción de la odontogénesis.
Para investigar la capacidad odontogénica de células
ectomesenquimales de murinos y también examinar si el
epitelio oral aviar puede sufrir desarrollo dental
completo, hemos realizado una serie de trasplantes
homotopicos interespecíficos del tubo neural. El aspecto
dorsoventral conjunto del tubo neural murino rostral,
antes de su cierre (cuando todavía contiene todas las
células de la cresta neural craneal premigratorias), fue
trasplantado en un huésped aviar a partir del cual los
tejidos equivalentes se habían extirpado quirúrgicamente
(Fig. 1 superior). Las células de la cresta neural del ratón
ya habían invadido los procesos maxilares y mandibulares
del huésped de pollo a 1 a 2 días después de la cirugía
(Fig. 2A). Estas células contribuyen a la formación de
estructuras germinales de dientes en diferentes puntos de
tiempo después del injerto en los anfitriones de pollo
(Fig. 2 B-D y la Fig. 1 Baja). Los trasplantes de
prosencéfalo-mesencéfalo (serie B) y prosencéfalo-
mesencéfalo-rombencéfalo (serie C) contribuyeron a la
formación de estructuras de dientes en las quimeras de
pollo, mientras que no se obtuvieron estructuras dentales
de los trasplantes de prosencéfalo (serie A).
Se realizó un análisis molecular para examinar la
expresión de ambos marcadores tempranos y tardíos del
desarrollo dental en quimeras. Midquina (MK) es un
factor de diferenciación de crecimiento de unión a
heparina que se expresa en todas las células de la cresta
neural durante las primeras etapas del desarrollo
embrionario de ratón (18). Posteriormente, la expresión
de MK se regula en la gran mayoría de los tejidos y
órganos, pero su expresión persiste en los dientes en
murinos en desarrollo hasta E18 (estadio de campana
tardía) (19). En los embriones quiméricos, se encontró
que MK se expresa en una gran población de células de
la cresta neural de ratón que migran en los procesosmaxilar y mandibular del polluelo huésped (Fig. 3 A y C).
La expresión de la transcripción del homeodominio de
ratón que contiene factores de MSX1 y Pax9 fue mucho
más restringida, se producen específicamente en aquellas
poblaciones de células de los alrededores o en contacto
con el epitelio oral de pollo (Fig. 3 D-F). Estos hallazgos
sugieren que las células de la cresta neural que expresan
Pax9 y MSX1 con MK poseen potencial odontogénico,
porque la expresión de Pax9 y MSX1 se limita a
mesénquima dental desde las primeras etapas de la
odontogénesis murina (21, 22, 25). Llegamos a la
conclusión de que las interacciones de señalizaciónrecíprocas entre mesénquima derivada de la cresta neural
de ratón y regiones localizadas del epitelio oral de
polluelo son responsables de la posterior elaboración de
la forma específica y la estructura de los dientes descritos
anteriormente. La pérdida de dientes en Aves es, pues,
probablemente debido a la falta de moléculas derivadas
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de la cresta neural de señalización apropiadas implicadas
en las interacciones epitelio-mesenquimales.
Se había sugerido que la pérdida de BMP4 en rudimentos
de dientes '' vestigiales '' de pollos es responsable de la
falta de progreso en dientes (13). Para probar si la cresta
neural de los ratones contenía señales específicas que
pudieran inducir la expresión de BMP4 ectópico
localizado y la expresión de Shh en el epitelio oral del
polluelo, se realizó hibridación in situ en quimeras, de 2
a 4 días después de la cirugía. Aunque Pitx2 se expresó en
todo el epitelio oral (Fig. 4 F y L), la expresión de FGF8
ectópico en polluelo, Shh, y la expresión de BMP4 se
limitó a aquellas áreas que forman las placodas epiteliales
descritas anteriormente (Fig. 4 C-E, G, y I). Estas
regiones localizadas de expresión epitelial corresponden
a los sitios que cubren las células de la cresta neural del
ratón (Fig. 4 A, B, y K) que expresan MSX1, Barx1, y los
genes MK de los ratones (Fig. 4 H, J y M). Estos
resultados indican que, in vivo, las células de la cresta
neural pueden jugar un papel en la activación de la
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expresión de BMP4 y Shh en sitios de formación de
dientes en el epitelio oral murino.
Siete a nueve días después del injerto, el epitelio oral del
polluelo se había invaginado en el ectomesenquima
subyacente y había adquirido una configuración de brote
(Fig. 5 A y B). Al igual que durante la fase de capullo dedesarrollo de los dientes de ratón, las células
ectomesenquimales de ratón que rodearon las
invaginaciones epiteliales de pollo expresaron los genes
dentales específicos MSX1, PAX9, y Barx1 (Fig. 5 C, D,
y G). Aunque cada uno de estos genes se expresa en
células distintas del mesénquima dental, células del
mesénquima dental son las únicas células en el embrión
que expresan los tres genes. La expresión de MK, que
inicialmente fue generalizada en las células de la cresta
neural que migraban, se restringió en todo el epitelio
quimeral invaginado (Fig. 5F). Fue evidente el origen
oral del epitelio a partir de la detección del gen Pitx2 de
pollo (Fig. 5E). El crecimiento diferencial y posterior
plegado del epitelio dental se cree que está dirigido por
un centro de señalización transitorio conocido como el
nudo del esmalte (2, 3, 26). La expresión de Shh ha sido
observada en el nudo del esmalte de los dientes en
desarrollo del ratón (27). Del mismo modo, se observó la
expresión ectópica de Shh de pollo en una población
restringida de las células epiteliales en los gérmenes
dentales en la quimera (Fig. 5G), indicando la presencia
de un regulador de dientes en forma de estas estructuras.
Catorce días después del injerto, fueron evidentes
múltiples invaginaciones del epitelio oral, y se asemejan
las estructuras mineralizadas a los gérmenes de los
dientes que se observan debajo del epitelio oral (Fig. 6 A
y B). Estas estructuras en forma de dientes fueron
claramente distinguibles del hueso mineralizado
circundante. La deposición de la matriz mineral en las
estructuras en forma de dientes fue típica de la
deposición de la matriz de dentina observada en el
desarrollo de los dientes de embriones murinos, que
comienza en la punta de las cúspides, procede
apicalmente y sigue con la diferenciación de losodontoblastos. No se observaron túbulos dentinales,
porque estos dientes representan una etapa temprana de
la deposición mineral. Significativamente, la matriz del
esmalte derivada del epitelio estuvo ausente en estas
estructuras. La falta de formación del esmalte puede ser
debido a la terminación anticipada de la interacción entre
el epitelio y el mesénquima. Esta posibilidad puede ser
apoyada por el hecho de que la matriz de dentina no es
tan madura como en los dientes cuando la deposición del
esmalte se está produciendo en una capa más profunda
de la dentina. Se expresó Pitx2 en los pollos en el epitelio
de los gérmenes de los dientes en quimeras (Fig. 6 C y E)
y en varias estructuras inusuales formadas en la parte
anterior del epitelio oral (Fig. 6D). No se expresó Pitx2en las células epiteliales de pollos en contacto con la
matriz mineralizada, que es una reminiscencia de una
baja regulación de Pitx2 en ameloblastos observados en
dientes de ratón. Se expresaron los genes MSX1 de ratón
(Fig. 6F) y los genes Shh de pollo (Fig. 6G),
respectivamente, en el mesénquima dental y el epitelio de
los dientes en la quimera. Sialoproteína de dentina, una
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proteína de la matriz extra-celular no colágena producida
por odontoblastos (28) y osteoblastos (29), se detectó en
las células ectomesenquimales y la matriz mineralizada
(Fig. 6H). La nestina, proteína de filamentos intermedios,
un marcador de neuronas, músculos (30) y la
diferenciación de los odontoblastos y osteoblastos
maduros (31), también se detectó en las células
productoras de matriz de dentina en los gérmenes
dentarios en la quimera (Fig. 6 I y J). La presencia de
estos dos marcadores juntos en la misma capa de células
proporciona una fuerte indicación de que estas células
son odontoblastos.
Estos resultados muestran que, aunque dentro de células
de la cresta neural craneal de una especie no parezcan ser
prepaternizadas con respecto a sus destinos esqueléticos,
contienen la información para interpretar señales
epiteliales genéricas y se comportan de una manera
específica en la especie.
Damos las gracias a W. Butler (Universidad de Texas,
Houston) para la dentina sialoproteína anticuerpo; U.
Lendahl (Instituto Karolinska, Estocolmo) para el
anticuerpo nestina; S. Artavanis-Tsakonas, N. Le
Douarin, P. Lemaire, M. Maroto, y O. Pourqui'e de
valiosos comentarios; K. Dale para comentarios y
mejorar el manuscrito; y M. Zampieri para obtener ayuda
con la tinción de tricrómico de Masson. Este trabajo se
realizó en parte en el Instituto de la Biología du
D'eveloppement de Marsella, en el laborator a de C.
Goridis. La investigación fue apoyado por becas de la Asociación para la Investigación sur le Cáncer, la
Asociación Francesa contra las Miopatías, Centre
National de la Recherche Scientifique, el Wellcome
Trust, el Consejo de Investigación Médica, y la
Universidad de Nantes.