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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE ODONTOLOGÍA
UNIDAD DE INVESTIGACIÓN, TITULACIÓN Y GRADUACIÓN
MICROFILTRACIÓN POST DESPROTEINIZACIÓN Y
BLANQUEAMIENTO EN PIEZAS RESTAURADAS CON RESINA
COMPUESTA: ESTUDIO IN VITRO
Trabajo de Investigación como Requisito previo a la Obtención del Grado Académico de
Odontóloga
AUTOR:
CÁRDENAS CEVALLOS PATRICIA GISELA
TUTOR:
DR. FRANCISCO IVÁN PINTADO GUERRA
COTUTOR:
DR. WILSON GUSTAVO RUEDA LANDAZURI
QUITO - ECUADOR
Abril-2015
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DEDICATORIA
A MIS PADRES POR SER MI APOYO
INCONDICIONAL
A MIS HERMANOS POR SU PACIENCIA
ALEGRÍA Y AYUDA
A MI ABUELITA PORQUE SIEMPRE CONFIÓ EN
QUE YO ALCANZARÍA MI META, EN SU
MEMORIA.
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AGRADECIMIENTO
Agradezco a mi querido tercer mosquetero, Dios por ayudarme y llevarme de la mano siempre.
A mi abuelita que a pesar de no estar conmigo ya, nunca dudó de que llegaría a mi meta y porque nunca me falto su bendición antes de un examen o exposición difícil.
A mi padre por sus consejos, por su apoyo y por estar siempre ahí para mí y mis hermanos a pesar de todo.
A mi madre por sus interminables desvelos, por todo su amor y sacrificios.
A mi amada hermana Daniela por su comprensión y paciencia al ayudarme con la tecnología que alguna vez aprendí en el colegio pero se me había olvidado, por las incontables noches de compañía y gracias por ese café que siempre hizo milagros.
A mi hermanito por bajar el volumen de su música preferida para que yo pueda concentrarme y por siempre sacar una sonrisa de esta cara preocupada.
A mi querida amiga Kata por la amistad tan grande y sincera que una persona si quiera pueda soñar en esta vida.
A mi amigo Kacho por sus locuras, por su paciencia, por su sinceridad, por siempre estar dispuesto a ayudarme.
Por último a mi pequeña luna por llegar a mi vida y llenarla de felicidad.
Un agradecimiento especial a mi tutor el Dr. Francisco Pintado y a mi cotutor el Dr. Gustavo Rueda por su motivación y guía en este el último peldaño para alcanzar mi meta.
Gracias…
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AUTORIZACIÓN DE LA AUTORÍA INTELECTUAL
Yo, Cárdenas Cevallos Patricia Gisela, en calidad de autora de la tesis realizada sobre:
MICROFILTRACION POST DESPROTEINIZACIÓN Y BLANQUEAMIENTO EN PIEZAS
RESTAURADAS CON RESINA COMPUESTA: ESTUDIO IN VITRO, por la presente
autorizó a la UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR, hacer uso de todos los contenidos
que me pertenecen o de parte de los que contienen esta obra, con fines estrictamente académicos
o de investigación.
Los derechos que como autor me corresponden, con excepción de la presente autorización,
seguirán vigentes a mi favor, de conformidad con lo establecido en los artículos 5, 6, 8,19 y
demás pertinentes de la ley de propiedad intelectual y su reglamento.
…………………………………………
Cárdenas Cevallos Patricia Gisela
171834621-4
[email protected]
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INFORME DE APROBACIÓN DEL TUTOR
En mi carácter de Tutor del Trabajo de Grado, presentado por la señorita Cárdenas Cevallos
Patricia Gisela, para optar por el Grado de odontóloga cuyo Título es: MICROFILTRACION
POST DESPROTEINIZACIÓN Y BLANQUEAMIENTO EN PIEZAS RESTAURADAS CON
RESINA COMPUESTA: ESTUDIO IN VITRO. Considero que dicho Trabajo reúne los
requisitos y méritos suficientes para ser sometido a la presentación pública y evaluación por
parte del jurado examinador que se designe.
En la ciudad de Quito a los 09 días del mes de enero del 2015.
----------------------------------------------------------
Dr. Francisco Iván Pintado Guerra
CI. 170703341-9
Director del proyecto
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CERTIFICADO DEL TRIBUNAL
MICROFILTRACION POST DESPROTEINIZACIÓN Y BLANQUEAMIENTO EN
PIEZAS RESTAURADAS CON RESINA COMPUESTA: ESTUDIO IN VITRO.
Autora: Cárdenas Cevallos Patricia Gisela
APROBACIÓN DEL JURADO EXAMINADOR
El presente trabajo de investigación, luego de cumplir con todos los requisitos normativos,
en nombre de la UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR, FACULTAD DE
ODONTOLOGÍA se aprueba; por lo tanto el jurado que se detalla a continuación, autoriza al
postulante la presentación a efectos de la sustentación pública.
Quito, 09 de Abril del 2015
……………………………
Dra. Ana del Carmen Armas Vega
Miembro del tribunal
……………………………
Dr. Jimmy Humberto Tintín Gómez
Miembro del Tribunal
……………………….
Dr. Diego Antonio Sigcho López
Miembro del Tribunal
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DECLARACIÓN
Yo, Cárdenas Cevallos Patricia Gisela, declaro bajo juramento que el trabajo aquí escrito es
de mi autoría; que no ha sido previamente presentado para ningún grado o calificación
profesional; y que he consultado las referencias bibliográficas que se incluyen en este
documento.
A través de la presente declaración sedo mis derechos de propiedad intelectual
correspondientes a este trabajo, a la UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR, según lo
establecido por la ley de propiedad intelectual, por su reglamento y normativa Institucional
vigente.
…………………………………………
Cárdenas Cevallos Patricia Gisela
171834621-4
[email protected]
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CERTIFICACIÓN
Por medio de la presente, hago constar que he leído el protocolo del Proyecto de Tesis de
Grado presentado por la señorita CÁRDENAS CEVALLOS PATRICIA GISELA para optar
al título de ODONTÓLOGO, y que acepto asesorar a la estudiante en calidad de tutor, durante
la etapa del desarrollo del trabajo hasta su presentación y evaluación.
----------------------------------------------------------
Dr. Francisco Iván Pintado Guerra
CI. 170703341-9
Director del proyecto
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ÍNDICE DE CONTENIDOS
DEDICATORIA ............................................................................................................................ ii
AGRADECIMIENTO .................................................................................................................. iii
AUTORIZACIÓN DE LA AUTORÍA INTELECTUAL ............................................................. iv
INFORME DE APROBACIÓN DEL TUTOR ............................................................................. v
CERTIFICADO DEL TRIBUNAL .............................................................................................. vi
DECLARACIÓN ......................................................................................................................... vii
CERTIFICACIÓN ...................................................................................................................... viii
RESUMEN.................................................................................................................................. xiv
ABSTRACT ................................................................................................................................. xv
INTRODUCCIÓN ......................................................................................................................... 1
CAPITULO I ................................................................................................................................ 2
1. PROBLEMA ......................................................................................................................... 2
1.1. Planteamiento del Problema .............................................................................................. 2
1.2. Justificación ....................................................................................................................... 2
1.3. Objetivos de la Investigación ............................................................................................. 3
1.3.1. Objetivo General ........................................................................................................... 3
1.3.2. Objetivos Específicos .................................................................................................... 3
1.4. Hipótesis ............................................................................................................................ 3
CAPITULOII ............................................................................................................................... 4
2. MARCO TEÓRICO ............................................................................................................ 4
2.1. Microfiltración ................................................................................................................... 4
2.2. Cavidades Dentales ............................................................................................................ 4
2.2.1. Clasificación de las cavidades .............................................................................................. 5
2.3. Resinas compuestas ........................................................................................................... 5
2.3.1. Antecedentes ................................................................................................................. 5
2.3.2. Definición ...................................................................................................................... 6
2.3.3. Composición de las Resinas Compuestas ...................................................................... 6
2.3.4. Clasificación de las resinas compuestas ........................................................................ 7
2.3.5. Propiedades de las resinas compuestas .......................................................................... 9
2.4. Soluciones desinfectantes de la superficie dental ............................................................ 11
2.4.1. Hipoclorito de sodio como desproteinizante ............................................................... 11
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2.4.2. Clorhexidina ................................................................................................................ 12
2.5. Clareamiento dental ......................................................................................................... 13
2.5.1. Pigmentación dentaria ....................................................................................................... 14
2.5.1.1. Pigmentaciones extrínsecas ..................................................................................... 14
2.5.1.2. Pigmentaciones intrínsecas .................................................................................... 14
2.5.2. Tipos de clareamiento.................................................................................................. 15
2.5.2.1. Clareamiento externo .............................................................................................. 16
2.5.2.2. Clareamiento interno ............................................................................................... 16
2.5.3. Agentes clareadores ..................................................................................................... 17
2.5.3.1. Peróxido de hidrógeno ............................................................................................ 17
2.5.3.2. Peróxido de carbamida ............................................................................................ 17
2.5.3.3. Perborato de sodio ................................................................................................... 17
2.5.4. Mecanismo de acción de los agentes aclaradores ........................................................ 17
2.5.5. Indicaciones Contraindicaciones y Consecuencias ................................................... 18
2.5.5.1. Indicaciones ............................................................................................................ 18
2.5.5.2. Contraindicaciones .................................................................................................. 18
2.5.5.3. Consecuencias ......................................................................................................... 18
CAPITULO III ........................................................................................................................... 19
3. MATERIALES Y MÉTODOS .......................................................................................... 19
3.1. Tipo de Estudio ..................................................................................................................... 19
3.2. Universo y Muestra .......................................................................................................... 19
3.2.1. Criterios de Inclusión .................................................................................................. 20
3.2.2. Criterios de Exclusión ................................................................................................. 21
3.3. Operacionalización de Variables ..................................................................................... 22
3.4. Metodología ..................................................................................................................... 23
3.4.1. Recolección de la muestra ........................................................................................... 23
3.4.2. Limpieza de la muestra ................................................................................................ 23
3.4.3. Preparación de la cavidad ............................................................................................ 25
3.4.4. Restauración con resina compuesta ............................................................................. 27
3.4.5. Pulimiento de las Restauraciones ................................................................................ 29
3.4.6. Separación de los cuerpos de prueba ........................................................................... 30
3.4.7. Colocación del desproteinizante (hipoclorito de sodio 5.25%) ................................... 30
3.4.8. Aplicación del agente clareador .................................................................................. 31
3.4.9. Sellado de conductos y superficies dentales ................................................................ 34
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3.4.10. Proceso de Termociclado ............................................................................................ 35
3.4.11. Corte de las piezas dentarias ........................................................................................ 36
3.4.12. Observación al estereoscopio de los cuerpos de muestra ............................................ 37
3.5. Recolección de datos ....................................................................................................... 39
CAPITULO IV ........................................................................................................................... 43
4. RESULTADOS ................................................................................................................... 43
4.1. Análisis estadístico de los resultados ................................................................................... 47
4.2. Discusión ............................................................................................................................... 51
CAPITULO V ............................................................................................................................. 53
5. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES ............................................................... 53
5.1. Conclusiones ......................................................................................................................... 53
5.2. Recomendaciones .................................................................................................................. 54
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS ......................................................................................... 55
ÍNDICE DE ANEXOS
Anexo N° 1: Certificado de Traductor ......................................................................................... 62
Anexo N° 2: Certificado del Tutor Urkund ................................................................................ 63
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ÍNDICE DE FIGURAS
Figura N° 1: Pigmentaciones internas .......................................................................................... 15
Figura N° 2: Recolección de la muestra ....................................................................................... 23
Figura N° 3: Profilaxis utilizando ultrasonido (NSK AS2000) .................................................... 24
Figura N° 4: Profilaxis utilizando pieza de mano de baja velocidad (NSK EC E7403696) y
cepillo profiláctico ............................................................................................................... 24
Figura N° 5: Lavado luego de la profilaxis .................................................................................. 25
Figura N° 6: Preparación cavitaria: A) primero con una fresa esférica de diamante B)
terminando con una fresa cilíndrica de diamante ................................................................ 26
Figura N° 7: Estandarización de cavidades .................................................................................. 26
Figura N° 8: Grabado ácido: A) Colocación del ácido fosfórico B) Lavado C) Secado.............. 27
Figura N° 9: Sistema adhesivo: A) Colocación del adhesivo con un microbrush B)
Fotoactivación ..................................................................................................................... 28
Figura N° 10: Restauración de la cavidad: A) Aplicación de la resina B) Fotoactivación .......... 28
Figura N° 11: Lámpara de fotopolimerización ............................................................................ 29
Figura N° 12: Pulimiento de las resinas ....................................................................................... 29
Figura N° 13: Grupos de prueba .................................................................................................. 30
Figura N° 14: Piedra Pómez e Hipoclorito .................................................................................. 31
Figura N° 15: A) Agente clareador (FGM Whiteness HPmaxx) B) GRUPO B C) GRUPO C ... 31
Figura N° 16: Mezcla del agente clareador A) Fase 1 peróxido de hidrógeno B) Fase 2
espesante .............................................................................................................................. 32
Figura N° 17: Aplicación del agente clareador en los grupos B y C ........................................... 33
Figura N° 18: Limpieza del gel clareador A) con sonda de succión B) con gasa ........................ 34
Figura N° 19: Sellado de superficies dentales .............................................................................. 35
Figura N° 20: Proceso de termociclado ....................................................................................... 36
Figura N° 21: Corte de las piezas dentarias A) disco de diamante masterdent B) motor de alta
velocidad ............................................................................................................................. 36
Figura N° 22: Estereoscopio Carl Zeiss Modelo: Jena, Laboval 3 .............................................. 37
Figura N° 23: Fotografía de diente no tratado ............................................................................ 38
Figura N° 24: Fotografía de diente tratado con hipoclorito de sodio y peróxido de hidrógeno . 38
Figura N° 25: Fotografía de diente tratado con peróxido de hidrógeno ..................................... 39
Figura N° 26: Regla digital TRUPER STAILESS STEEL .......................................................... 39
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xiii
ÍNDICE DE TABLAS
Tabla Nº 1: Significado de la formula ............................................................................................... 19
Tabla Nº 2: Tamaño de la muestra .................................................................................................... 20
Tabla Nº 3: Valores de microfiltración en (mm) del Grupo B .......................................................... 40
Tabla Nº 4: Valores de microfiltración en (mm) del Grupo B .......................................................... 41
Tabla Nº 5: Valores de microfiltración en (mm) del Grupo C .......................................................... 42
Tabla Nº 6: Valores de microfiltración en porcentaje del Grupo A .................................................. 44
Tabla Nº 7: Valores de microfiltración en porcentaje del Grupo B .................................................. 45
Tabla Nº 8: Valores de microfiltración en porcentaje del Grupo C .................................................. 46
Tabla Nº 9: Análisis estadístico con prueba de Kolmogorov-Smirnov y Shapiro-Wilk ................... 47
Tabla Nº 10: Nomenclatura ............................................................................................................... 48
Tabla Nº 11: Análisis estadístico con prueba de ANOVA ................................................................ 48
Tabla Nº 12: Análisis estadístico con ANOVA ................................................................................ 49
Tabla Nº 13: Comparaciones múltiples prueba de Tukey ................................................................. 49
Tabla Nº 14: Tukey en porcentajes ................................................................................................... 50
ÍNDICE DE GRÁFICOS
Gráfico N° 1: Porcentajes de Microfiltración ................................................................................... 50
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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE ODONTOLOGÍA
CARRERA DE ODONTOLOGÍA
MICROFILTRACION POST DESPROTEINIZACIÓN Y BLANQUEAMIENTO EN
PIEZAS RESTAURADAS CON RESINA COMPUESTA: ESTUDIO IN VITRO.
AUTOR: Cárdenas Cevallos Patricia Gisela
TUTOR: Dr. Francisco Pintado
RESUMEN
El objetivo de este estudio fue determinar el grado de microfiltración en piezas restauradas
con resina compuesta sometidas a desproteinización con hipoclorito de sodio y aclaramiento a
base de peróxido de hidrógeno. Para la cual se emplearon 60 terceros molares humanos
completamente sanos, almacenados en suero fisiológico, a los cuales se les realizo una
preparación cavitaria clase V en su cara vestibular, para posteriormente restaurarlas con resina
compuesta, los dientes fueron divididos de manera aleatoria en tres grupos de 20 piezas cada
uno. El grupo A o grupo control que no fue tratado, el grupo B fue tratado con una mezcla de
hipoclorito de sodio al 5.25% y piedra pómez durante un minuto, para luego aplicar peróxido de
hidrogeno al 35% en tres aplicaciones de 15 minutos cada una y el grupo C: tratado únicamente
con peróxido de hidrogeno al 35% aplicado de la misma manera que en el segundo grupo.
Luego los grupos fueron sometidos a un proceso de termociclado en una solución acuosa de
azul de metileno, tras lo cual se procedió al corte y análisis bajo observación en el
estereoscopio, para asignar valores de microfiltración según el grado de penetración de la
tinción en la interface diente –restauración. Concluyendo que la utilización de peróxido de
hidrógeno al 35% como agente aclarador provoca un aumento significativo de la microfiltración
en piezas restauradas con resina compuesta, y descartando que la aplicación previa de
hipoclorito de sodio haga una diferencia importante en este aumento.
Palabras clave: MICROFILTRACIÓN, ACLARADORES, RESINA COMPUESTA.
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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE ODONTOLOGÍA
CARRERA DE ODONTOLOGÍA
MICROLEAKAGE POST DESPROTEINITATION AND WHITENING
RESTORED IN RESIN COMPOSITE PARTS: STUDY IN VITRO.
AUTOR: Cárdenas Cevallos Patricia Gisela
TUTOR: Dr. Francisco Pintado
ABSTRACT
The goal of this study was to determine the level of micro-filtration in dental pieces restored
with composed resin after being subjected to deproteination with sodium hypochlorite and
whitening with hydrogen peroxide. To this end, this study used 60 completely healthy human
third molars, stored in physiological saline, and subjected to V-class cavity preparation on its
vestibular face in order to then restore them using a compound resin. Teeth were randomly
divided into three groups; group A was the control group and received no treatment; group B
was treated with a 5.25% sodium hypochlorite and pumice stone for a minute, to then apply a
35% hydrogen peroxide solution three times, for fifteen minutes each time; and group C was
treated with 35% hydrogen peroxide in the same manner as group 2. The groups were then
subjected to thermocycling in an aqueous methylene blue solution, after which pieces were cut
and observed under the stereo-microscope in order to assign micro-filtration values according to
the level of penetration of the dye within the tooth-restoration interphase. This study concludes
that the use of 35% hydrogen peroxide as a whitening agent causes a significant rise in micro-
filtration in pieces restored with compound resin, with no significant difference upon use of
sodium hypochlorite.
Keywords: MICRO-FILTRATION, LIGHTENING, COMPOUND RESIN.
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1
INTRODUCCIÓN
En la actualidad debido a las exigencias de la sociedad las personas se encuentran en una
constante búsqueda de belleza y armonía, dándole un lugar primordial a la apariencia de la sonrisa
por lo que tratan incansablemente de modificar el tono natural de sus dientes, sin importar los
procedimientos a los cuales estos órganos se vean sometidos. De esta manera el aclareamiento
dental se ha convertido en uno de los tratamientos más demandados en la odontología estética
actual; sin percatarse del daño que puede llegar a causar en las restauraciones de resina ya
existentes en la cavidad bucal del paciente (Rencoret, Monsalves, & Bader, 2012).
“Los aclaramientos reducen la microdureza de las resinas compuestas y aumentan
la microfiltración marginal en la interface restauración/diente.” (Abril, 2013)
Puesto que las resinas compuestas son el material de obturación de primera elección para el
tratamiento de lesiones cariosas ya que permiten restablecer la forma estética y función a la pieza
dental, más sin embargo es necesario tomar en cuenta que a pesar de la evolución de estos
materiales; no ha sido posible superar el daño que provoca en un tratamiento restaurador la
aparición de la brecha diente restauración a causa de la contracción de la resina en el momento de
la polimerización; y que a la larga conlleva a la aparición de microfiltraciones (Baum, Phillips, &
Lund, 1984).
Es por lo cual Barrancos & Barrancos (2006), catalogaron a la microfiltración como el motivo
principal de fracaso en los tratamientos restauradores, la misma que puede verse agravada debido a
los cambios de temperatura que se dan en la cavidad bucal al ingerir alimentos, tal como lo señalo
Lois, Paz, Pazos, & Rodríguez (2004) de igual manera Díez (2005), destacó que el composite al
estar expuesto a elevación de temperatura tiende a dilatarse, provocando una excesiva presión en
las paredes de la cavidad logrando la fatiga de los tejidos dentarios, lo que conlleva a la aparición
de microfracturas y a largo plazo macrofracturas. Por el contrario al disminuir la temperatura el
composite se contrae provocando una apertura de la interfaz diente-restauración lo que permite el
ingreso de microorganismos y fluidos al interior de la cavidad.
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2
CAPITULO I
1. PROBLEMA
1.1. Planteamiento del Problema
Dado que la boca se encuentra localizada en la parte central de la cara, los pacientes buscan mejorar
su apariencia; para lo cual el clareamiento dental es uno de los tratamientos estéticos más solicitados en
la actualidad ya que es considerado como un procedimiento no tan invasivo y poco costoso que logra
este objetivo.
Más es necesario conocer tal como lo mencionaron Rencoret, Monsalves, & Bader (2012) que
debido a la alta capacidad oxidativa los aclaradores dentales pueden romper los enlaces poliméricos
de los composites dejándolos más susceptibles a la degeneración.
Es por lo antes mencionado que nos vemos en la necesidad de realizar una investigación que nos
permita determinar si el uso de agentes aclaradores en piezas restauradas con resinas compuestas, son
responsables de los diferentes cambios estructurales, que causan microfiltración.
Siendo así primordial establecer las siguientes interrogantes:
¿Existen diferencias en el grado de microfiltración en restauraciones de resina compuesta tomando
en cuenta el uso o no de agentes aclaradores a base de peróxido de hidrógeno?
¿La microfiltración aumentará al colocar un pontecializador del aclaramiento en las piezas
restauradas con resina?
1.2. Justificación
Debido a la gran de demanda de tratamientos estéticos que hoy por hoy existe por parte de los
pacientes, es necesario conocer acerca de los materiales usados en dichos procedimientos y del
beneficio y perjuicio que causan a nivel de cavidad bucal sobre todo a nivel de aquellas piezas
dentales que sean visto afectadas por lesiones cariosas que ya han sido restauradas previamente con
resinas compuestas; ya que estas a pesar de sus muchas ventajas y de que tecnológicamente han
avanzado mucho, todavía no son capaces de adherirse fielmente a los tejidos dentarios sin dejar
brechas que supongan el ingreso de microorganismos y provoquen a corto o a largo plazo
microfiltración (Rencoret, Monsalves, & Bader, 2012).
Es por esta razón que nos hemos visto en la necesidad de realizar el siguiente trabajo
experimental para comprobar si los agentes clareadores y las sustancias que se utilizan para
potencializar su acción perjudican o no el sellado marginal de restauraciones de resina compuesta.
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3
1.3. Objetivos de la Investigación
1.3.1. Objetivo General
Determinar el grado de microfiltración en piezas restauradas con resina compuesta sometidas a
desproteinización con hipoclorito de sodio y aclaramiento a base de peróxido de hidrógeno.
1.3.2. Objetivos Específicos
Medir el grado de microfiltración en dientes restaurados con resina compuesta.
Medir el grado de microfiltración al usar un agente aclarador a base de peróxido de
hidrogeno al 35%.
Medir el grado de microfiltración al usar hipoclorito de sodio al 5.25% como
desproteinizante y potenciador del agente aclarador.
Comparar cuál de los grupos tiene mayor grado de microfiltración en la interfaz diente-
restauración.
1.4. Hipótesis
Existe mayor microfiltración en piezas restauradas con resina compuesta al utilizar agentes
aclaradores a base de peróxido de hidrógeno e hipoclorito de sodio como desproteinizante.
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4
CAPITULO II
2. MARCO TEÓRICO
2.1. Microfiltración
Podemos decir que la microfiltración es el paso de iones, moléculas, fluidos y bacterias
entre una pared de la cavidad y el material restaurativo. Este espacio también conocido como
interfaz diente-restauración no ha podido llegar a ser de cero a pesar de todos los avances
tecnológicos que en odontología restaurativa se han logrado, y esto nos conduce a un fracaso a
mediano plazo en lo que a restauraciones de resina se refiere (Diez, 2005).
En estudios realizados por Carrillo (2012) se mencionó que un “46%” de las restauraciones
son debido a caries primaria y que un “54%” a caries secundaria lo que quiere decir que los
tratamientos restaurativos iniciales fracasaron.
Una de las causas principales por lo que se dan estos fracasos son los coeficientes de
variación térmica, estos fenómenos tienen lugar al momento de ingerir alimentos, así al
aumentar la temperatura la resina se dilata y provoca presión contra las paredes de la cavidad y
esto conlleva a una fatiga de la misma lo que puede terminar en microfracturas y macrofacturas
a largo plazo, por otra parte al disminuir la temperatura la resina se contrae provocando que la
interfaz diente restauración se abra, estos dos cambios de temperatura dan como resultado un
fenómeno de bombeo de microorganismos en la interface; tal como lo señalo Diez (2005) a lo
cual también agrego que la contracción de polimerización que se da al momento de fotoactivar
la resina podría ser un factor adicional.
Debido a esta contraccion es común la formacion de una brecha diente- resina que tal como
lo señalaron Bordoni, Escobar, & Ramón (2010) compromete a la restauración pudiendo
afectar a la pulpa y presentando como consecuencia una hipersensibilidad y pigmentación tanto
del diente como del material.
Esta brecha al ser microscópica será imposible de preveer a simple vista inmediatamente
terminada la restauración, es por eso que decimos que el fracaso clínico se verá a mediano o
largo plazo con la aparición de microfiltraciones (Macchi, 2007).
2.2. Cavidades Dentales
La caries es una patología infectocontagiosa causada por diferentes factores que afecta al
órgano dental causando desmineralización; pudiendo verse afectada cualquier superficie dental y
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5
será dependiendo de esto que variará el tipo de cavidad que se realice. Así de acuerdo con los
avances que se han ido dando en operatoria dental ha sido necesario actualizar diferentes conceptos
(Mount G. , 1999).
“Una de las palabras más utilizadas en odontología es cavidad”. Desde el
punto de vista semántico y tomando una definición sencilla, “cavidad” es el
espacio hueco en un cuerpo cualquiera” (LANATA, 2005, pág. 36).
Mientras que Barrancos & Barrancos (2.006) señaló que la palabra cavidad no es la adecuada
para definir este espacio; por lo que él prefirió utilizar la palabra “preparación”.
“Preparación cavitaria es la forma interna que se le da a un diente para poder
reconstruirlo con materiales y técnicas adecuados que le devuelvan su función
dentro del aparato masticatorio” (Barrancos & Barrancos, 2.006, pág. 530).
2.2.1. Clasificación de las cavidades
Las diferentes preparaciones realizadas por el odontólogo con el propósito de eliminar toda
lesión cariosa fueron descritas por el Dr. Greene Vardiman Black en una clasificación que
LANATA (2005) fundamentó tomando en cuenta las causas de la caries dental. Esta clasificación
permite una ubicación de la lesión cariosa de acuerdo a la superficie de la pieza dentaria que se vea
afectada. Por lo tanto la clasificación más aceptada y utilizada es:
CLASE I: está se presenta en la cara oclusal de molares y premolares.
CLASE II: En caras proximales de Molares y Premolares.
CLASE III: Caras proximales de Incisivos y Caninos que no abarque el ángulo incisal.
CLASE IV: Caras Proximales de Incisivos y Caninos que abarque el ángulo incisal.
CLASE V: Tercio gingival de las Caras Libres de todos los Dientes.
2.3. Resinas compuestas
2.3.1. Antecedentes
Las resinas se empiezan a desarrollar en la primera mitad del siglo XX, en esa época los
silicatos eran los únicos materiales estéticos existentes, pero el gran inconveniente de estos
materiales era que tenían un tiempo de vida muy corto en boca por su acelerado desgaste. Estos
silicatos fueron sustituidos por resinas acrílicas de polimetilmetacrilato, estas contaban con un
color similar al de las piezas dentarias, eran sencillas de manipular, no podían disolverse ni
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diluirse en presencia de fluidos bucales, con un bajo valor económico pero presentaban dos
defectos: baja resistencia al desgaste y una alta contracción de polimerización; lo que en
consecuencia hacia que haya gran microfiltración en los contornos de la restauración (Baum et
al 1984).
A su vez las resinas acrílicas fueron reemplazadas por las resinas compuestas en “1962”
Hervás, Martínez, Cabanes, Barjau, & Fos (2006), fruto de las investigaciones del Dr. Ray. L.
Bowen, su principal aporte a estos materiales de restauración fue la matriz de “Bisfenol-A-
Glicidil Metacrilato (Bis-GMA)” que reduce la contracción de polimerización (Mount & Hume,
1999) y el silano que une a la matriz de resina y a las partículas de relleno por lo que las resinas
compuestas han ido mejorando con el pasar del tiempo (Baum et al 1984).
2.3.2. Definición
“Las resinas compuestas son combinaciones tridimensionales de por lo menos dos materiales
químicamente diferentes, con una interfase distinta, obteniéndose propiedades superiores a las
que presentan sus constituyentes de manera individual” (Baum et al, 1984, p.205).
2.3.3. Composición de las Resinas Compuestas
En su obra Mount & Hume (1999) señalaron que estos materiales de obturación se
encuentran conformados por los siguientes componentes:
Matríz orgánica se encuentra como lo señaló Anusavice (2004) conformada por
monómeros y estabilizadores, el monómero más usado en estas estructuras ha sido el Bis-
GMA “bis-fenol-A diglicidil metacrilato”, que es un monómero aromático muy viscoso el
cuál presenta cadenas de “diacrilato” que permiten que la contracción de polimerización se
reduzca. Mientras que Mount & Hume (1999) señalaron que el bis- GMA pueden ser
remplazadas parcial o totalmente con oligómeros derivados del dimetacrilato de uretano.
Relleno Inorgánico según Guzmán (1999) han sido señalados como partículas de relleno
inorgánicas, que mejoran las propiedades de la resina impidiendo la deformación de la
matriz, disminuyendo el coeficiente de expansión térmica, lo que le da resistencia a la
abrasión que es la que actúa al momento de la masticación y deglución. Los rellenos más
utilizados son “el cuarzo y el vidrio de borosilicato, pero además incluyen entre otros, al
silicato de litio y aluminio y diversos vidrios de aluminio silicatos” (Salinas, 2010,p.23).
Agente de unión para Toledo, Osorio, & Sánchez (2003) este agente es el elemento que
permite acoplar a ambas fases, además este agente acoplador tiene como responsabilidad
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7
controlar la durabilidad de la resina; ya que si hay pérdida de este componente habrá
pérdida de partículas y por lo tanto deterioro superficial del material.
Los mencionados hasta el momento son los componentes principales de las resinas
compuestas, más para Rodriguez & Pereira (2007) es necesario mencionar tres componentes
extras como son el “sistema activador” que va a ser el encargado de iniciar la polimerización,
los “pigmentos” que nos ayudan a obtener tonalidades similares a los de las piezas dentarias y
los “inhibidores de polimerización” los que nos ayudan a mantener las resinas en óptimo estado
y nos regalan un tiempo de manipulación más largo.
2.3.4. Clasificación de las resinas compuestas
Se han descrito varias clasificaciones para las resinas compuestas, con el propósito de ayudar
al profesional a elegir el material correcto para cada caso que se le presente en la consulta, así
tenemos que Mount & Hume (1999) destacaron la clasificación de Lutz y Phillips
describiéndola como lógica y simple la cual se basa en la distribución y la dimensión de las
partículas de relleno así tenemos:
Resinas de composite de macrorrelleno
Constituidas únicamente por partículas de macrorelleno, estas partículas van a tener un
tamaño promedio de “10 a 50 µm” (Rodriguez & Pereira, 2007), la desventaja de este tipo de
resina y por la que Cova, (2004) mencionó que ya no es utilizada en la actualidad es que sufre
un desgaste excesivo a la vez que va a desgastar a la pieza antagonista esto se da precisamente
por sus partículas de macrorrelleno.
Resinas de composite de microrrelleno
Estas resinas surgen en los años setenta, por la necesidad de superar el excesivo desgaste
sufrido por las resinas de macrorrelleno, van a estar constituidas por partículas amorfas de sílice
con un diámetro promedio de “0,04um”; al poseer partículas tan pequeñas son fáciles de pulir y
otorgan gran estética a la restauración, en la práctica esta clase de resinas son utilizadas
principalmente en el sector anterior ya que poseen baja resistencia a la tracción por lo que
pueden sufrir fracturas (Carrero, Duque, Ramirez, & Setien, s.f).
Resinas de composite híbridos
Van a estar constituidas tanto de partículas de micro como de macrorelleno, las ventajas que
nos brindan estos materiales al contener los dos tipos de partículas clínicamente son: una gama
de colores amplia por lo que resulta un trabajo altamente estético y estructuralmente una baja
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8
contracción de polimerización, alta resistencia al desgaste, a la abrasión y se las puede utilizar
tanto en el sector anterior como en el posterior (Anusavice, 1998).
En sus investigaciones Rodriguez & Pereira (2007) mencionaron que a esta clasificación
actualmente se le podrían añadir dos grupos más como son las resinas de híbridos modernos
que son resinas constituidas por partículas “sub-micrométricas” que van a tener un tamaño que
va desde “0.4µm a 1.0µm” por lo que van a ser más resistentes al desgaste, pero van a ser
difíciles de abrillantar; y las resinas de nanorelleno que son resinas formadas por partículas que
tienen un tamaño promedio de “0.01 µm” por lo que ofrecen propiedades tales como alta
translucidez, pulido superior y resistencia al desgaste.
Debido a que las resinas compuestas poseen otras cualidades aparte de las otorgadas por las
partículas de su composición Cova (2004) las clasificó por su viscosidad y su manera de
activación.
En cuanto a su viscosidad tenemos:
Resinas compuestas de baja viscosidad o fluidas: en los estudios realizados por Hervás,
Martínez, Cabanes, Barjau, & Fos (2006) destacaron que en esta clase de resinas se
disminuyó el contenido de partículas de relleno inorgánico, para mejorar su manipulación
pero lo que nos trae como consecuencia que tengan alta contracción de polimerización por
lo que estan indicadas para restauraciones pequeñas.
Resinas compuestas de alta viscosidad: a este tipo de resinas Rodriguez & Pereira (2007)
las llamó también resinas condensables van a estar formadas por una mayor cantidad de
partículas de relleno y son las más adecuadas a la hora de restaurar cavidades clase dos ya
que por su mayor relleno logran puntos de contacto mejores al utilizar una técnica de
condensación.
En cuanto a su manera de activación tenemos resinas que se activan químicamente o
autocurables, ya que se presentan con una base y un catalizador y al mezclar ambos se
activaran, también tenemos las resinas fotocurables que se activan en presencia de la luz
porque en su composición tienen elementos sensibles a esta llamados “fotoiniciadores”, y
por último las resinas duales que se pueden activar tanto químicamente como por luz
(Nocchi, 2.008)
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9
2.3.5. Propiedades de las resinas compuestas
Las propiedades de la resina compuesta van a depender de tres elementos importantes
primero de la clase de matriz resinosa, segundo de la clase de partículas de relleno de la
cantidad y tamaño de las mismas y por último del agente de unión silánico (Mount & Hume,
1999).
Resistencia a la abrasión
Particularidad de las resinas compuestas para negarse a la pérdida superficial, la cual va a
depender: del tamaño y cantidad de las partículas de relleno, de la ubicación de la pieza dentaria
en boca y del contacto oclusal de la misma. Esta pérdida puede ser ocasionada al momento de
la masticación, por el cepillado dental o por la utilización de elementos extraños como son los
palillos, lo que nos va a traer como consecuencia que la restauración tenga una vida útil corta
(Kreulen & Van Amerogen, 1991).
Textura superficial
Se conoce como textura superficial a la igualdad de la superficie de la resina en la
restauración, esta va a depender de la clase, tamaño y la cantidad de partículas de relleno y por
otro lado también depende de la técnica acabado y pulido utilizado (Rodriguez & Pereira,
2007).
Estabilidad de color
Los estudios realizados por Salinas (2010) establecieron que “las resinas pueden sufrir
cambios de color pasados 2 o 3 años hecha la restauración, puede ocurrir de dos maneras:
manchas superficiales y decoloración interna” (Salinas, 2010, p.31). Las manchas superficiales
se dan por el tipo de alimentación ya que los colorantes de ciertos alimentos como el café o té y
también el tabaco pigmentan la resina. La decoloración interna sucede por un proceso llamado
“fotooxidación” que se presenta en varios de los materiales químicos de la resina, siendo las
responsables de este proceso las aminas que activan el proceso de polimerización (Rodriguez &
Pereira, 2007).
Radiopacidad
Los elementos radiopacos agregados a las resinas pueden ser “bario, estroncio, circonio,
zinc, iterbio, itrio y lantanio” (Rodriguez & Pereira, 2007), esta característica de las resina
compuestas nos ayuda a diagnosticar caries secundaria alrededor o debajo de las restauraciones
(Mount & Hume, 1999).
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10
Coeficiente de expansión térmica
Es el atributo que poseen las resinas compuestas para contestar a los cambios térmicos de la
cavidad bucal (Mount & Hume, 1999). Si los coeficientes de expansión térmica fueran
similares entre las resinas compuestas y los tejidos de la pieza dentaria, tendríamos una
adaptación marginal adecuada, pero lamentablemente esto todavía no es una realidad ya que las
resinas compuestas se expanden más que los tejidos dentarios al momento de los cambios
térmicos. Esta propiedad tiene mucha relevancia en la longevidad de las restauraciones ya que
las temperaturas en boca van desde “0º C hasta los 60º C” (Rodriguez & Pereira, 2007).
Sorción acuosa y solubilidad
A esta propiedad se la define como la proporción de agua que es absorbida por la superficie
y masa de las resinas compuestas en un tiempo determinado. Al incorporar agua en la resina se
puede producir un fenómeno de degradación hidrolítica que no es más que la solubilidad de la
matriz resinosa; esta solubilidad puede ser contrarrestada aumentando el relleno de la resina
(Rodriguez & Pereira, 2007).
Por el contrario Mount & Hume (1999) mencionaron que al existir cierto nivel de solubilidad
en la resinas se produce una contracción que puede combatir a la contracción de
polimerización, lo que es bueno para una resina compuesta recién colocada, por lo que en este
caso sería aconsejable utilizar resinas hibridas.
Resistencia a la fractura
Las resinas compuestas que tengan mayor cantidad de relleno y partículas más gruesas
tendrán mayor resistencia a las fracturas, por lo general son resinas con alta viscosidad, esta
resistencia suele deteriorarse con el paso del tiempo a causa de la sorción acuosa (Marquis &
Shortall, 2003)
Resistencia a la compresión y a la tracción
Entre más relleno y más grandes las partículas la resina será más resistente a la compresión y
a la tracción. (Rodriguez & Pereira, 2007).
Módulo de elasticidad
Se refiere a la rigidez de un material, así un módulo de elasticidad mayor significa un
material con mayor rigidez, y un módulo de elasticidad menor significa un material más
elástico, las resinas compuestas con mayor cantidad de relleno poseen mayor rigidez,
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prácticamente igual a la dentina, pero menos rígidos que el esmalte al cual van a sustituir
(Mount & Hume, 1999).
Contracción de polimerización
Es la desventaja más significativa que poseen las resinas compuestas, esta propiedad va a
depender directamente de la cantidad de carga inorgánica que posean las resinas (Nocchi, 2008)
.
Las partículas que se encuentran formando la matriz orgánica de las resinas van a estar
separadas antes de la polimerización por una distancia de “4 nm”, pero al ser polimerizadas esta
distancia disminuye a “1.5 nm”, lo que provoca la disminución en el volumen de estos
materiales (Rodriguez & Pereira, 2007).
Esta contracción de polimerización es la responsable de la separación entre el material de
restauración y las paredes de la cavidad dentaria, esto sucede si la contracción supera a la
adhesión. Por el contario si esta contracción no logra superar la adhesión lo que se produce es
un estrés y por ende fracturas de las paredes de la cavidad (Bonilla, 2012).
Las resinas que se polimerizan mediante procesos químicos o llamadas autopolimerizables
tienen una dirección de polimerización hacia el centro de la restauración, por lo que producen
menos estrés sobre las paredes de la cavidad. En cambio las que se activan por luz o llamadas
fotopolimerizables tienen una dirección de polimerización que se dirige hacia la luz es por esto
que si incrementamos el tiempo de activación lograremos mayor contracción de polimerización
en estas resinas (Mount & Hume, 1999).
Se puede reducir esta contracción de polimerización realizando correctamente las
preparaciones cavitarias, colocando la resina compuesta en pequeños incrementos y
polimerizándola de la misma forma y al colocar bases cavitarias para disminuir la cantidad de
resina en la restauración (Bonilla, 2012).
2.4. Soluciones desinfectantes de la superficie dental
2.4.1. Hipoclorito de sodio como desproteinizante
La efectividad del cloro como agente blanqueador fue objeto de estudio del reconocido
químico francés Claude Loius Berthollet en el año de 1787, por lo que se le atribuye su
desarrollo como hipoclorito de sodio, este compuesto químico contiene cloro, hidróxido de
sodio y agua, su acción desinfectante fue constatada por Luis Pasteur a finales del siglo XIX
(Balandrano, 2007).
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“La Asociación Americana de Endodoncistas ha descrito al hipoclorito de sodio como un
líquido claro, pálido, verde-amarillento, extremadamente alcalino y con un fuerte olor clorado”
(American Association of Endodontics, 1998,p.85), que presenta una capacidad para disolver
tejidos y también una acción antibacteriana lo que la hace apropiada como sustancia de
irrigación en endodoncia (Lahoud & Galvéz, 2006).
Estrela (2002) mencionó que el hipoclorito de sodio actúa mediante tres acciones que son: la
saponificación, cloraminación y neutralización:
Saponificación: El hipoclorito de sodio actúa sobre los ácidos grasos y lípidos formando
jabón y glicerol respectivamente, lo cual reduce la tensión superficial del sustrato dentario
(Estrela, 2002).
Cloraminación: Es la reacción entre el cloro y el grupo amino lo que da como resultado
cloraminas y agua. Las cloraminas actúan en el metabolismo celular inhibiendo la acción
enzimática de las bacterias por medio de oxidación (Estrela, 2002).
Neutralización: donde neutraliza a un aminoácido dando como resultante una sal y agua,
degradando los aminoácidos y permitiendo que el pH disminuya (Estrela, 2002).
La utilización del hipoclorito de sodio como agente desproteinizante empieza tan solo en la
década de los ochenta a nivel de dentina con los estudios de Shellis (1983) , en el Ecuador el
auge de su aplicación empezó con las publicaciones por parte del dentista mexicano Roberto
Espinosa con los efectos que este tiene a nivel del esmalte en los que indica; que al colocar
hipoclorito de sodio en una concentración de “5,25%” sobre el esmalte por un tiempo de “60
segundos” antes del proceso de grabado ácido se logra la desproteinización de la zona
adamantina lo que da como consecuencia un área mayor de esmalte retentivo (Donoso &
Armas, 2011).
Así también Venezie (1994) en sus investigaciones sobre adhesión en esmalte mencionó que
al aplicar hipoclorito de sodio al 5,25% en pacientes con amelogénesis imperfecta previo al
uso de ácido fosfórico produce islas de retención para el adhesivo, resaltando así que los
pacientes que padecen de esta patología poseen un “3 a 4%” de proteínas en su peso, lo
contrario a un esmalte normal que solo presenta 0.5%, por lo que encuentra que existe una
relación directa entre hipoclorito de sodio al 5.25% y desproteinización, dando como resultado
un proceso de adhesión eficaz y duradero (Espinosa & Valencia, 2008).
2.4.2. Clorhexidina
Científicos en Inglaterra desarrollaron la clorhexidina mientras realizaban estudios sobre la
malaria en los años 40 y se extendió al público en el año de 1954 como un “antibacteriano” y
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“antiséptico” para lesiones en la piel. En el campo odontológico se la utilizó en un principio
para desinfección de la cavidad bucal y como irrigante en el área de endodoncia (Torres et
al.2009).
En los estudios realizados en su artículo “Soluciones para irrigación en endodoncia:
hipoclorito de sodio y gluconato de clorhexidina” Balandrano (2007) mencionó que la
clorhexidina posee tres “mecanismos de acción” el primero ocurre en el momento que la
clorhexidina es absorbida por el microorganismo y éste elimina materia intracelular, el segundo
consiste en producir trastornos metabólicos en la bacteria al dañar su barrera de
permeabilidad, y por último su acción de precipitación proteica que se lleva a cabo en el
citoplasma de las bacterias deteniendo el mecanismo reproductivo y vital de estas.
Por lo que es utilizada “para limpiar, humedecer, y sobretodo, desinfectar preparaciones
cavitarias”, (Araujo, Zis, & Dutra, 2000, pag:6) también se recomienda su uso antes o después
del grabado ácido ya que en investigaciones realizadas por Marcano (2013) se menciona que
el empleo de solución acuosa de clorhexidina al 2% durante 60 segundos, luego del
acondicionamiento con ácido y antes de la colocación de un sistema adhesivo nos brinda un
efecto adicional al de la desinfección de la cavidad ya que previene la degradación de la capa
hibrida, lo que conlleva a una mayor longevidad de las restauraciones con resina. (Marcano,
2013)
2.5. Clareamiento dental
La Odontología Estética Conservadora existe desde el principio de los tiempos así para la
cultura egipcia y otras culturas preromanas, el tener dientes limpios y sanos eran indicadores de
linaje y buena posición económica por lo que inventaban enjuagues y brebajes para conseguir
dicha estética , los procedimientos de clareamiento dentales fueron descritas por Truman en 1864
donde se usaban sustancias como: hipoclorito de sodio, el perborato de sodio y el peróxido de
hidrógeno, estas sustancias eran usadas solas o en combinación y con o sin la activación de calor
(Roesch, Peñaflor, Navarro, Dib, & Estrada, 2007).
El clareamiento dental es considerado uno de los tratamientos estéticos más comunes en
nuestro medio Sulieman (2003). Se lo puede definir como un procedimiento clínico que utiliza
agentes y mediadores químicos como el oxígeno, el hidrógeno, la úrea y el dióxido de carbono para
desencadenar una reacción de óxido-reducción y así convertir cadenas complejas de carbono en
compuestos simples, lo que permite la eliminación de pigmentaciones dentarias aclarando el color
inicial de una o varias piezas dentales (Cadenaro, 2006).
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14
2.5.1. Pigmentación dentaria
Las pigmentaciones dentales se presentan con frecuencia y son provocadas por diversas causas,
estas causas pueden ser sistémicas o locales (Watts, 2001), las pigmentaciones afectan tanto a
dientes vitales como no vitales y las podemos clasificar en dos grandes grupos: tinciones
extrínsecas y tinciones intrínsecas (Goldstein, Goldstein, Feinman, & Garber, 1990).
2.5.1.1. Pigmentaciones extrínsecas
También llamadas exógenas que ocurren cuando un agente externo mancha la superficie del
esmalte es decir, son manchas que se adquieren del medio post-eruptivas (Hattab, 1999). Si la
estructura de la pieza dentaria tiene defectos tales como: rugosidad, porosidad, grietas,
resquebrajaduras, surcos profundos, depresiones estas pigmentaciones se verán favorecidas
(Collins et all, 2004).
Estas pigmentaciones se producen por agentes cromógenos los cuales pueden ser primarios y
secundarios, los primarios son sustancias como: té, vino, nicotina, colorantes alimentarios, etc., y
los agentes cromógenos secundarios que son sustancias no teñidas tal es el caso del fluoruro de
estaño que se convierte en pigmentaciones gracias a reacciones químicas reductoras (Roesch et
all, 2007).
La mayoría de estas manchas pueden eliminarse con una minuciosa profilaxis dental, sin
embargo si estas pigmentaciones permanecen por largos periodos de tiempo en las piezas dentales
pueden tornarse intrínsecas, haciendo necesaria la aplicación de un agente aclarador para que la
pieza vuelva a su estado estético (Hattab, 1999).
2.5.1.2. Pigmentaciones intrínsecas
Estas pigmentaciones van a encontrarse en el espesor del esmalte y/o dentina y se pueden dar en
el periodo pre-eruptivo o post-eruptivo (Collins et all, 2004). Es así que (Hattab, 1999) señaló que
dentro de las pigmentaciones intrínsecas pre-eruptivas se han podido encontrar a la amelogénesis
imperfecta, dentinogénesis imperfecta , hipoplasia del esmalte ; las mismas que son alteraciones en
el desarrollo del esmalte y dentina. Más para (Sulieman, 2003) los traumatismo y la fluorosis
caben dentro de este grupo de estudio.
Y en lo referente a las manchas intrínsecas post-eruptivas tenemos: la desintegración pulpar,
hemorragias o residuos de sangre por traumatismos, hipercalcificación dentinaria, caries,
restauraciones en mal estado y envejecimiento dental (Sulieman, 2003).
Las características y el tratamiento de las pigmentaciones intrínsecas se pueden ver detalladas
en la figura N° 1.
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Figura N° 1: Pigmentaciones internas
Pigmentaciones intrinsecas. Fuente: (Nocchi, 2008) Odontología Restauradora sauld y estética
2.5.2. Tipos de clareamiento
En los estudios realizados por Roesch et all (2007) se clasificó a los clareamientos dentales en
dos grupos, los realizados en dientes vitales o clareamiento externo que pueden ser de tres clases y
los realizados en dientes no vitales o clareamiento interno.
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16
2.5.2.1. Clareamiento externo
El primero es el realizado exclusivamente por el profesional en el consultorio este tipo de
clareamiento se realiza con peroxido de hidrógeno al 35% aunque en la actualidad se ha incluido
el peróxido de carbamida en concentraciones de 22 a 35% (Goldstein, 1997), siguiendo siempre las
indicaciones del fabricante se puede decir que este método es el mas eficaz ya que contiene
peróxido en su más alto porcentaje y controlado por el profesional a más de que se obtienen
resultados inmediatos, sin dejar de seguir un protocolo de aislamiento y profilaxias antes de colocar
el agente aclarador porsupuesto (Roesch et all, 2007).
El segundo lo realiza el paciente en su casa pero con la vigilancia del profesional en este caso
el agente a elegir sera el peróxido de carbamina al 10%, el profesional debe frabricar unas cubetas
respetando siempre las siguientes indicaciones en su confección “a) respetar el margen gingival de
1mm aproximadamente, b) ser festoneado y c)utilizar un acetato rígido y perfectamente ajustado al
tercio cervical de las piezas dentarias, todo esto servira para evitar lesiones en los tejidos
periodontales, este mostrara resultados en tres semanas y no hay que olvidar indicar al paciente una
correcta técnica de cepillado para retirar todo el agente aclarador (Bertone & Zaiden, 2008).
Y por último el que se realizan los pacientes sin ninguna intervención del profesional con
productos que pueden encontrar en cualquier establecimuento comercial OTC (over-the-counter),
en este se utilizan el peróxido de hidrógeno y el de carbamina; pero en muy bajos porcentajes y en
el mercado se los puede encontrar en muchas presentaciones por su gran demanda, pero no hay
que olvidar que si se usan demasiado pueden llegar a producir una hipersensibilidad a cambios
térmicos, asi como daño en tejidos periodontales y en la pulpa de las piezas dentarias (Roesch et al.
2007).
2.5.2.2. Clareamiento interno
Este tipo de clareamiento se lo realiza cuando el paciente presenta: necrosis pulpar, productos
hemáticos en los conductos, o porque se realizó una técnica inadecuada al cortar la gutapercha, es
esclusivamente realizado por el profesional, y para esta utilizamos el peroxido de hidrógeno pero
en conbinación con perborato de sodio la cual se puede colocar de manera ambulatoria o
termocatalítica siguiendo igualmente las instrucciones del fabricante, esta técnica debe siempre ser
realiza con un aislamieto correcto de la pieza dentaria y primeramente desobturando el conducto
3mm por debajo de la unión amelo-cementaria para luego obturar este espacio con ionomero de
vidrio de restauración para que los agentes clareadores no tengan contacto con los materiales de
obturación y evitar la resorción radicular (Greenwall, 2002).
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17
2.5.3. Agentes clareadores
2.5.3.1. Peróxido de hidrógeno
El peróxido de hidrógeno esta formando parte de la mayoria de agentes clareadores, su
concentración puede variar desde 1,5 hasta 35% según se lo vaya a emplear en el consultorio o en
casa (Nocchi, 2008), este se va a descomponer en óxigeno y agua, las moléculas de óxigeno
ingresan en la pieza dentaria expulsando a la molécula de color y dando como resultado el
aclaramiento del diente (Greenwall, 2002).
2.5.3.2. Peróxido de carbamida
El peróxido de carbamida posee diferentes concentraciones según sea el uso que necesitemos
darle, asi tenemos que para uso exclusivo en el consultorio lo tenemos en una concentración
maxima de 35% y para utilización en el hogar lo podemos encontrar en concentraciones de 10 hasta
22%, (Nocchi, 2008) este peróxido se descompone en peróxido de hidrógeno y urea al contacto con
tejidos o saliva, como mencionamos anteriormente el peróxido de hidrógeno se separa en óxigeno y
agua lo que provoca el clareamiento. (Greenwall, 2002).
2.5.3.3. Perborato de sodio
Como mencionamos anteriormente se lo utiliza en asosiación con el peróxido de hidrógeno para
aclaramiento de dientes no vitales (Hirata, 2012), este se va a disociar al contacto con agua en
mataborato de sodio, peróxido de hidrógeno y óxigeno (Nocchi, 2008), por lo que es un fuerte
agente oxidante (Joubert, 2010).
2.5.4. Mecanismo de acción de los agentes aclaradores
El mecanismo de acción de los agentes clareadores se basa en la separación de sus
componentes, tanto si hablamos de peróxido de hidrógeno como si lo hacemos del peróxido de
carbamida. Es asi que al contacto con la saliba o los tejidos, el peróxido de hidrógeno se
descompondra en agua y oxígeno, estas moléculas de óxigeno van a ingresar en la pieza dentaria
y expulsaran a la molécula de color dando como resultado el aclaramiento del diente, ya que el
peróxido de carbamida esta compuesto de peróxido de hidrógeno también se disociara en agua y
óxigeno, y su otro componente que es la urea se va a descomponer en amonio y dióxido de
carbono (Lynch, 1995), el dióxido de carbono permite neutralizar el pH, y el amoniaco permite
que las moléculas de óxigeno liberadas del peróxido de hidrógeno penetren mas facilmente en la
estructura dental ya que aumentan su permeabilidad (Nocchi, 2008).
Por lo que Hanks (1993) concluyo que la permeabilidad que presenta la estructura del esmalte y
la dentina son las que permiten el proceso de aclaramiento actuando así sobre la parte orgánica de
estas estructuras.
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18
2.5.5. Indicaciones Contraindicaciones y Consecuencias
2.5.5.1. Indicaciones
Nocchi (2008) mencionó que los tratamientos clareadores ya sea para dientes vitales o no
vitales están indicados en las siguientes circunstancias:
Dientes con coloración amarillenta que no sea removida con la profilaxis.
Dientes con pigmentaciones intrínsecas.
En casos de fluorosis
Dientes necrosados
Prerequisito para carillas de cerámica
2.5.5.2. Contraindicaciones
Golstein (2002) mencionó que para dientes vitales se tienen las siguientes contraindicaciones:
Dientes jóvenes con cavidades pulpares extensas
Dientes con restauraciones extensas
Dientes con lesiones cariosas
Dientes hipersensibles
2.5.5.3. Consecuencias
Miranda & Armas (2011) mencionaron ciertas consecuencias microscópicas que se podrían dar
al usar tratamientos clareadores como son:
Porosidad en el esmalte
Reabsorciones radiculares externas
Reducción en los niveles de calcio y fosfato del esmalte
Pérdida de fuerza adhesiva
Disminución la microdureza de la dentina y el esmalte
Mayor adhesión de colonias de Streptococo Mutans.
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19
CAPITULO III
3. MATERIALES Y MÉTODOS
3.1. Tipo de Estudio
Este es un estudio de tipo experimental ya que aplicamos hipoclorito de sodio al 5.25%
como pontecializador y desproteinizante previo a la aplicación de peróxido de hidrógeno al 35%
como aclarador dental; comparativo ya que comparamos tres grupos de muestra; in vitro ya que
se realizó el estudio en piezas extraídas y analítico-descriptivo ya que analizamos los
resultados y los describimos comparándolos con la literatura.
3.2. Universo y Muestra
Se recolectaron 60 terceros molares permanentes superiores e inferiores los cuales fueron
extraídos por órdenes terapéuticas y seleccionadas según los criterios de inclusión y exclusión a
continuación descritos:
Cuando no se conoce el tamaño de la población
El tamaño de la población de estudio es indeterminado, por ello el tamaño de la
muestra se calcula en función de la fórmula:
DONDE: (Tabla Nº 1)
Z = 1,96 (95% DE CONFIABILIDAD SEGURIDAD)
e = 13,0% (5% - 15% MARGEN DE ERROR, PRECISION)
PQ = 0,25
p: proporción de individuos que poseen en la población la característica
de estudio. Este dato es generalmente desconocido y se suele suponer que
p=q=0.5 que es la opción más segura
n= ¿?
TAMAÑO DE LA MUESTRA
Tabla Nº 1: Significado de la formula
Fuente: Autor
Elaboración: Ing. Jaime Molina
2
2 *
e
PQZn
Page 35
20
Así tenemos que:
n = 3.8416 X 0.2500 = 57
0.0169
Tabla Nº 2: Tamaño de la muestra
Fuente: Autor
Elaboración: Ing. Jaime Molina
3.2.1. Criterios de Inclusión
Terceros molares completamente sanos esto quiere decir:
• Piezas libres de caries
• Con un cierre apical completo
• Piezas que no presenten obturaciones
Error Tamaño de la muestra
n =
3 muestras
(grupos
1,2y3))
5% 384 128
6% 267 89
7% 196 65
8% 150 50
9% 119 40
10% 96 32
11% 79 26
12% 67 22
13% 57 19
14% 49 16
15% 43 14
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21
• Piezas que no presenten fractura radicular o coronaria.
3.2.2. Criterios de Exclusión
• Cualquier otra pieza dentaria que no sea un tercer molar.
• Piezas con apertura apical
• Piezas con caries
• Piezas con obturaciones
• Piezas con fractura radicular o coronaria.
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22
3.3. Operacionalización de Variables
VARIABLES
CONCEPTO
(DEFINICIÓN)
INDICADORES
TÉCNICA
EVALUACIÓN
OBSERVACIÓN
ENCUESTA
ESCALA
DEPENDIENTE
MICRO FILTRACIÓN
Acción física de
penetración de un
fluido sobre un
material con
porosidad
Colorante al
interior
Observación
Evaluación
(microscópica)
Ordinal
0: Ninguna
1: Leve
2: Moderada
3: Severa
Numérica
(mm penetrados)
INDEPENDIENTE
AGENTE
ACLARADOR
El
blanqueamiento
dental es un
procedimiento
clínico que trata de
conseguir el
aclaramiento del
color de uno o
varios dientes
aplicando un agente
químico
Según
indicaciones del
fabricante
Evaluación
(tiempo, cantidad)
Nominal
1: Sin
tratamiento (placebo)
2. Con
hipoclorito de sodio
y peróxido de
hidrogeno
3: Solamente con
peróxido de
hidrogeno
(si/no)
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23
3.4. Metodología
3.4.1. Recolección de la muestra
Se recolectaron 60 terceros molares a través de peticiones a diferentes odontólogos, los
cuales se conservaron en suero fisiológico a temperatura ambiente para mantener su hidratación
hasta el momento de la experimentación (Figura 2).
3.4.2. Limpieza de la muestra
Se realizó la limpieza de las 60 piezas de la siguiente manera:
Con ultrasonido (NSK AS2000) para retirar restos tisulares (Figura 3).
Figura N° 2: Recolección de la muestra
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
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24
Con pieza de mano de baja velocidad (NSK EC E7403696), cepillo profiláctico y una
suspensión de piedra pómez y agua (Figura 4).
Figura N° 3: Profilaxis utilizando ultrasonido (NSK AS2000)
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
Figura N° 4: Profilaxis utilizando pieza de mano de baja velocidad (NSK EC E7403696) y cepillo
profiláctico
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
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25
Luego se lavaron con ayuda de la jeringa triple (Figura 5).
Para luego colocarlas en suero fisiológico hasta el momento de la experimentación.
3.4.3. Preparación de la cavidad
Se realizaron cavidades clase V en cada una de las piezas dentarias en su cara vestibular,
utilizando una pieza de mano de alta velocidad (UNIK) y fresas de diamante, primero una fresa
esférica de diamante no. 3 y para finalizar una fresa cilíndrica de diamante, estas fueron
cambiadas cada cuatro cavidades (Figura 6). Las cavidades fueron estandarizadas con una
dimensión de 3mm de profundidad, 3mm de alto y 6 mm de ancho, ocupando el tercio medio de
cada una de las piezas (Figura 7). Todas las cavidades fueron lavadas con agua y secadas por no
más de dos segundos para evitar la deshidratación de la dentina (Rencoret, Monsalves, & Bader,
2012).
Figura N° 5: Lavado luego de la profilaxis
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
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26
A B
Figura N° 6: Preparación cavitaria: A) primero con una fresa esférica de diamante B) terminando con una
fresa cilíndrica de diamante
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
Figura N° 7: Estandarización de cavidades
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
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27
3.4.4. Restauración con resina compuesta
La restauración de las piezas dentarias se la realizó de la siguiente manera:
a) Se gravaron las preparaciones cavitarias con gel de ácido fosfórico al 35% (3M ESPE) por
un tiempo de 15 segundos, se lavaron las cavidades con un chorro de spray agua-aire durante 30
segundos y se secaron con con aire de la jeringa triple(Figura8).
b) Se aplicaron dos capas de adhesivo Adper Single Bond 2 (3M ESPE) consecutivamente
con un microbrush, luego se sopló cuidadosamente por 5 segundos con aire y se fotoactivó
durante 20 segundos (Figura9).
A
C
B
Figura N° 8: Grabado ácido: A) Colocación del ácido fosfórico B) Lavado C) Secado
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
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28
c) La apliacación de la resina Filtek Z350 XT (3M ESPE) se la realizó mediante una técnica
incremental en tres incrementos con la ayuda de instrumental de niquel-titaneo. El primer
incremento se lo aplicó desde el borde cavo superficial cervical hasta el centro de la pared axial
y se fotomolimerizo por 40 segundos. El segundo incremento se aplicó desde el borde
cavosuperficial oclusal hasta el centro de la pared axial y se fotomolimerizo por 40 segundos.
Finalmente se colocó el último incremeto llenando toda la cavidad y se fotomolimerizó
directamente sobre la resina durante 40 segundos(Figura 10) (Rojas, Marín, Roco, Terrazas, &
Bader, 2011).
A B
Figura N° 9: Sistema adhesivo: A) Colocación del adhesivo con un microbrush B) Fotoactivación
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
Figura N° 10: Restauración de la cavidad: A) Aplicación de la resina B) Fotoactivación
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
B A
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29
La fotopolimerización se realizó con una lámpara modelo DB-685-SUPER DUAL (COXO)
y la fibra òptica se posiciono lo mas cerca posible del materialde restauración (Figura11).
Las piezas restauradas se almacenaron en suero fisiologico a temperatura ambiente durante
48 horas.
3.4.5. Pulimiento de las Restauraciones
Se pulieron todas las restauraciones de resina con discos Polifix y Diamond Gloss del kit
especial (TDV) (Figura12).
Figura N° 11: Lámpara de fotopolimerización
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
Figura N° 12: Pulimiento de las resinas
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
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30
3.4.6. Separación de los cuerpos de prueba
Las 60 piezas dentales fueron separadas aleatoriamente en grupos de 20 piezas
nombrándolos como A, B y C los cuales fueron colocados en frascos individuales con cierre
hermético respectivamente rotulados (Figura13):
Grupo A: fue nuestro grupo control
Grupo B: tratado primero con hipoclorito de sodio al 5.25% y luego con peróxido de
hidrógeno al 35%.
Grupo C: tratado con peróxido de hidrógeno al 35%
3.4.7. Colocación del desproteinizante (hipoclorito de sodio 5.25%)
Para este procedimiento utilizamos pieza de mano de baja velocidad (NSK) y un cepillo
profiláctico. Se mezcló 4 ml de hipoclorito de sodio al 5.25% con un ¼ de cucharada de piedra
pómez y se cepillo a cada una de las piezas en su cara vestibular (grupo B) durante 60 segundos
(Espinosa & Valencia, 2008) . Luego se lavaron las piezas con un chorro de agua proveniente
de la jeringa triple por un tiempo de 20 segundos a una distancia de 1 cm aproximadamente y se
secaron para tenerlas listas para el siguiente fase (Figura 14).
Figura N° 13: Grupos de prueba
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
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31
Figura N° 14: Piedra Pómez e Hipoclorito
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
3.4.8. Aplicación del agente clareador
A los grupos B y C los colocamos en bloques de plastilina para facilitarnos la aplicación del
agente clareador a base de peróxido de hidrógeno al 35% (FGM Whiteness HPmaxx) siguiendo
las instrucciones del fabricante (Figura15).
B C
A
Figura N° 15: A) Agente clareador (FGM Whiteness HPmaxx) B) GRUPO B C) GRUPO C
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
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32
a) Utilizando la placa de mezcla y la espátula procedimos a mezclar el peróxido de hidrógeno
(fase 1) con el espesante (fase 2), en una proporción de 21 gotas de peróxido con 7 gotas de
espesante (3 gotas de peróxido para 1 gota de espesante) indicada para 20 dientes, se mezcló
hasta obtener un gel de color purpura (Figura 16).
A B
C D
Figura N° 16: Mezcla del agente clareador A) Fase 1 peróxido de hidrógeno B) Fase 2 espesante
C) Mezcla de las dos fases D) Gel color purpura listo para colocar en los cuerpos de prueba
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
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33
b) Con la ayuda de un pincel cubrimos la superficie vestibular con 1 mm de gel clareador y lo
dejamos actuar por 15 minutos, durante ese tiempo con el pincel movimos el gel en cuatro
ocasiones para liberar eventuales burbujas de oxígeno y renovar el mejor contacto posible del
gel con las piezas (Figura17).
Figura N° 17: Aplicación del agente clareador en los grupos B y C
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
Page 49
34
c) Pasados los 15 minutos se removió el gel clareador con la ayuda de una sonda de succión y
una gasa para dejarlos listos para una nueva aplicación de gel (Figura 18).
d) Se repitió este procedimiento por dos ocasiones más completando así tres aplicaciones de
15 minutos cada una.
e) Al final las piezas se limpiaron, lavaron y secaron con la ayuda de la jeringa triple.
3.4.9. Sellado de conductos y superficies dentales
Se sellaron los ápices de las piezas con ionómero de vidrio de autopolimerización Ketac
Molar Easymix (3M ESPE), primero se acondicionaron los ápex de cada una de las 60 piezas
A
B
Figura N° 18: Limpieza del gel clareador A) con sonda de succión B) con gasa
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
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35
con una gota de líquido de Ketac Molar Easymix (3M ESPE) durante 10 segundos para luego
lavarlas y secarlas con la ayuda de la jeringa triple luego de lo cual se procedió a colocar el
ionómero de vidrio. Se cubrieron todas las superficies externas de las piezas con dos capas de
esmalte de uñas dejando únicamente 1mm alrededor de las restauraciones de resina (Figura19).
Para evitar que el colorante penetre por otra zona que no sea la de estudio.
3.4.10. Proceso de Termociclado
Se colocó cada uno de los grupos en una media nylon nueva para realizar el proceso de
termociclado, que fue de 100 ciclos en una solución acuosa de azul de metileno al 1%. Este
régimen se lo realizo entre 4° C y 60 °C manteniendo las piezas 30 segundos en cada baño
térmico y llevándolas a temperatura ambiente durante 15 segundos entre baño y baño (Rencoret,
Monsalves, & Bader, 2012) (Figura20).
GRUPO A
GRUPO B
GRUPO C
CCCCC CC
Figura N° 19: Sellado de superficies dentales
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
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36
Figura N° 20: Proceso de termociclado
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
3.4.11. Corte de las piezas dentarias
Las muestras fueron cortadas con disco de diamante masterdent en el Laboratorio de
Protesis de la Facultad de Odontologia, con un motor de alta velocidad (Figura 21). Los cortes
se llevaron a cabo siguiendo el eje mayor de las piezas y sin irrigación para evitar que el agente
marcador se disuelva,pero de forma intermitente para que el calor no fracture las piezas
(Rencoret et al., 2012).
A B
Figura N° 21: Corte de las piezas dentarias A) disco de diamante masterdent B) motor de alta
velocidad
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
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37
3.4.12. Observación al estereoscopio de los cuerpos de muestra
Se observó la pared en que había más colorante en cada uno de los cortes obtenidos
(Figuras23,24,25) mediante el estereoscopio Carl Zeiss Modelo: Jena, Laboval 3 (Figura 22) del
Laboratorio de Histopatología de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del
Ecuador (anexo 1), para lo cual se utilizó una escala de análisis de profundidad de la tinción
expresada en porcentajes de 0 a 100% basada en la relación existente entre el grado de
penetración de colorante en la interfase diente-restauración y la profundidad de la cavidad.
Figura N° 22: Estereoscopio Carl Zeiss Modelo: Jena, Laboval 3
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
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38
GRUPOA
GRUPO B
Figura N° 23: Fotografía de diente no tratado
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
Figura N° 24: Fotografía de diente tratado con hipoclorito de sodio y peróxido de hidrógeno
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
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39
GRUPOC
3.5. Recolección de datos
Los resultados de microfiltración fueron recogidos en (mm) para lo cual nos ayudamos con
una regla digital TRUPER STAILESS STEEL (Figura 26). Estos resultados fueron clasificados
en cuadros específicos para cada uno de los grupos.
Figura N° 25: Fotografía de diente tratado con peróxido de hidrógeno
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
Figura N° 26: Regla digital TRUPER STAILESS STEEL
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
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40
GRUPO A DIENTES NO TRATADOS
PIEZA Nº MEDIDA (mm)
1 1.31 mm
2 2.10 mm
3 1.81 mm
4 1.20 mm
5 0.45 mm
6 0.89 mm
7 2.00 mm
8 0.50 mm
9 1.10 mm
10 1.17 mm
11 0.59 mm
12 1.00 mm
13 1.13 mm
14 1.24 mm
15 1.10 mm
16 1.05 mm
17 1.20 mm
18 1.23 mm
19 0.30 mm
20 1.30 mm
Tabla Nº 3: Valores de microfiltración en (mm) del Grupo B
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
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41
GRUPO B DIENTES TRATADOS CON HIPOCLORITO DE SODIO AL 5.25% Y
PERÓXIDO DE HIDRÓGENO
PIEZA Nº MEDIDA (mm)
1 3.00 mm
2 1.24 mm
3 2.40 mm
4 2.00 mm
5 2.18 mm
6 2.50 mm
7 2.16 mm
8 1.88 mm
9 1.70 mm
10 2.40 mm
11 2.00 mm
12 2.25 mm
13 2.30 mm
14 3.00 mm
15 2.21 mm
16 2.55 mm
17 2.88 mm
18 2.65 mm
19 1.90 mm
20 1.79 mm
Tabla Nº 4: Valores de microfiltración en (mm) del Grupo B
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
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42
GRUPO C DIENTES TRATADOS CON PERÓXIDO DE HIDRÓGENO
PIEZA Nº MEDIDA (mm)
1 2.00 mm
2 2.40 mm
3 3.00 mm
4 1.20 mm
5 1.35 mm
6 1.13 mm
7 2.10 mm
8 1.50 mm
9 2.12 mm
10 2.23 mm
11 1.50 mm
12 2.90 mm
13 1.80 mm
14 2.52 mm
15 1.85 mm
16 1.80 mm
17 2.87 mm
18 2.59 mm
19 2.20 mm
20 2.96 mm
Tabla Nº 5: Valores de microfiltración en (mm) del Grupo C
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
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43
CAPITULO IV
4. RESULTADOS
Los resultados que obtenidos en mm se los transformo a porcentajes para su mejor
entendimiento mediante la siguiente formula: Penetración del colorante en la interface (mm) x
100/ profundidad total de la cavidad (3mm) (Rencoret, Monsalves, & Bader, 2012), para luego
ser analizados por un experto para ver si hay diferencias estadísticamente significativas entre
cada grupo. (Tabla 6, 7,8).
PIEZA Nº FORMULA MEDIDA (%)
1 1.31mmx100/3mm 43.33
2 2.10mmx100/3mm 70.00
3 1.81mmx100/3mm 60.33
4 1.20mmx100/3mm 40.00
5 0.45mmx100/3mm 15.00
6 0.89mmx100/3mm 29.66
7 2.00mmx100/3mm 66.66
8 0.50mmx100/3mm 16.66
9 1.10mmx100/3mm 36.66
10 1.17mmx100/3mm 39.00
11 0.59mmx100/3mm 19.66
12 1.00mmx100/3mm 33.33
13 1.13mmx100/3mm 37.66
14 1.24mmx100/3mm 41.33
15 1.10mmx100/3mm 36.66
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44
16 1.05mmx100/3mm 35.00
17 1.20mmx100/3mm 40.00
18 1.23mmx100/3mm 41.00
19 0.30mmx100/3mm 10.00
20 1.30mmx100/3mm 43.33
PROMEDIO 37.784%
Tabla Nº 6: Valores de microfiltración en porcentaje del Grupo A
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
PIEZA Nº FORMULA MEDIDA (%)
1 3.00mmx100/3mm 100.00
2 1.24mmx100/3mm 41.33
3 2.40mmx100/3mm 80.00
4 2.00mmx100/3mm 66.66
5 2.18mmx100/3mm 72.66
6 2.50mmx100/3mm 83.33
7 2.16mmx100/3mm 72.00
8 1.88mmx100/3mm 62.66
9 1.70mmx100/3mm 56.66
10 2.40mmx100/3mm 80.00
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45
Tabla Nº 7: Valores de microfiltración en porcentaje del Grupo B
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
11 2.00mmx100/3mm 66.66
12 2.25mmx100/3mm 75.00
13 2.30mmx100/3mm 76.66
14 3.00mmx100/3mm 100.00
15 2.21mmx100/3mm 73.66
16 2.55mmx100/3mm 85.00
17 2.88mmx100/3mm 96.00
18 2.65mmx100/3mm 88.33
19 1.90mmx100/3mm 63.33
20 1.79mmx100/3mm 59.66
PROMEDIO 74.984 %
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46
PIEZA Nº FORMULA MEDIDA (%)
1 2.00mmx100/3mm 66.66
2 2.40mmx100/3mm 80.00
3 3.00mmx100/3mm 100.00
4 1.20mmx100/3mm 40.00
5 1.35mmx100/3mm 45.00
6 1.13mmx100/3mm 37.66
7 2.10mmx100/3mm 70.00
8 1.50mmx100/3mm 50.00
9 2.12mmx100/3mm 70.66
10 2.23mmx100/3mm 74.33
11 1.50mmx100/3mm 50.00
12 2.90mmx100/3mm 96.66
13 1.80mmx100/3mm 60.00
14 2.52mmx100/3mm 84.00
15 1.85mmx100/3mm 61.66
16 1.80mmx100/3mm 60.00
17 2.87mmx100/3mm 95.66
18 2.59mmx100/3mm 86.33
19 2.20mmx100/3mm 73.33
20 2.96mmx100/3mm 97.66
PROMEDIO 70.034
Tabla Nº 8: Valores de microfiltración en porcentaje del Grupo C
Fuente: Autor
Elaboración: Autor
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47
4.1. Análisis estadístico de los resultados
Lo primero que hicimos es verificar que las muestras tomadas provienen de una población con
distribución Normal, esto se realiza con las pruebas de Kolmogorov – Smirnov y Shapiro-Wilk
(Tabla 9) (menor a 30 datos), luego a demostrar:
Ho: Es distribución Normal
Ha: No es distribución Normal
Pruebas de normalidad
Kolmogorov-Smirnova Shapiro-Wilk
Estadísti
co
gl Sig. Estadísti
co
gl Sig.
DIENTES NO TRATADOS ,203 20 0,030 ,926 20 0,131
DIENTES TRATADOS CON
HIPOCLORITO DE SODIO AL 5.25% Y
PERÓXIDO DE HIDRÓGENO
,071 20 0,200* ,977 20 0,882
DIENTES TRATADOS CON
PERÓXIDO DE HIDRÓGENO
,104 20 0,200* ,954 20 0,434
Tabla Nº 9: Análisis estadístico con prueba de Kolmogorov-Smirnov y Shapiro-Wilk
Fuente: Autor
Elaboración: Ing. Jaime Molina
De la prueba de Kolmogorov-Smirnov y Shapiro-Wilk se tiene que tanto el Grupo A (dientes no
tratados o grupo control), como el Grupo B (dientes tratados con hipoclorito de sodio y peróxido
de hidrógeno) y el Grupo C (dientes tratados con peróxido de hidrógeno) provienen de poblaciones
con distribución Normal
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48
NOMENCLATURA
Tabla Nº 10: Nomenclatura
Fuente: Autor
Elaboración: Ing. Jaime Molina
Luego se procede a realizar la prueba ANOVA (Análisis de Varianza). El análisis de varianza
ANOVA, sirve para comparar varios grupos de variables cuantitativas. Se aplica para contrastar la
igualdad de medias de tres o más poblaciones independientes, con distribución Normal y
varianzas similares (Tabla 11y 12).
ANOVA de un factor
Ho: (hipótesis nula) Todas las muestras tienen medias similares
Ha: (hipótesis alternativa) Existe alguna o varias muestras que no son similares
Tabla Nº 11: Análisis estadístico con prueba de ANOVA
Fuente: Autor
Elaboración: Ing. Jaime Molina
DIENTES NO TRATADOS (grupo control) GRUPO A
DIENTES TRATADOS CON HIPOCLORITO
DE SODIO AL 5.25% Y PERÓXIDO DE
HIDRÓGENO
GRUPO B
DIENTES TRATADOS CON PERÓXIDO DE
HIDRÓGENO
GRUPO C
Descriptivos
MEDIDA
N Media Desviación
típica
Error típico Intervalo de confianza para la
media al 95%
Límite inferior Límite superior Mínimo Máximo
GRUPO A 20 37,7840 15,62911 3,49478 30,4694 45,0986 10,00 70,00
GRUPO B 20 74,9840 14,93622 3,33984 67,9936 81,9744 41,33 100,00
GRUPO C 20 70,0340 19,64935 4,39373 60,8378 79,2302 37,67 100,00
Total 60 60,9340 23,48399 3,03177 54,8674 67,0006 10,00 100,00
Page 64
49
ANOVA de un factor
MEDIDA
Suma de
cuadrados
gl Media cuadrática F Sig.
Inter-grupos 16322,700 2 8161,350 28,688 0,000
Intra-grupos 16215,681 57 284,486
Total 32538,381 59
Tabla Nº 12: Análisis estadístico con ANOVA
Fuente: Autor
Elaboración: Ing. Jaime Molina
Con la prueba ANOVA rechazamos Ho, existe alguna media que no es similar a la demás. La
prueba de Tukey determina cuales son similares y cuales diferentes:
PRUEBA DE TUKEY:
Pruebas post hoc
Comparaciones múltiples
Variable dependiente: MEDIDA_porcent
HSD de Tukey
(I) AGENTES
ACLARADORES
(J) AGENTES
ACLARADORES
Diferencia de
medias (I-J)
Error típico Sig. Límite
inferior
Límite
superior
GRUPO A GRUPO B -37,20000
* 5,33372 0,000 -50,0352
* -24,3648
GRUPO C -32,25000* 5,33372 0,000 -45,0852
* -19,4148
GRUPO B GRUPO A 37,20000
* 5,33372 0,000 24,3648
* 50,0352
GRUPO C 4,95000 5,33372 0,625 -7,8852 17,7852
GRUPO C GRUPO A 32,25000
* 5,33372 0,000 19,4148
* 45,0852
GRUPO B -4,95000 5,33372 0,625 -17,7852 7,8852
Tabla Nº 13: Comparaciones múltiples prueba de Tukey
Fuente: Autor
Elaboración: Ing. Jaime Molina
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50
Tabla Nº 14: Tukey en porcentajes
Fuente: Autor
Elaboración: Ing. Jaime Molina
De la prueba de Tukey se observa que la media del grupo A es menor que las medias de los
grupos B y C que son similares entre ellas (Tabla 13 y 14) (Gráfico1).
37,784
74,984 70,034
GRUPO A GRUPO B GRUPO C
Medias entre los grupos
MEDIDA_porcent
HSD de Tukeya
AGENTES
ACLARADORES
N Subconjunto para alfa = 0.05
1 2
GRUPO A 20 37,7840
GRUPO C 20 70,0340
GRUPO B 20 74,9840
Sig. 1,000 0,625
Gráfico N° 1: Porcentajes de Microfiltración
Fuente: Autor
Elaboración: Ing. Jaime Molina
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4.2. Discusión
La microfiltración sigue siendo la mayor causa de fracaso en lo que a restauraciones con resina
compuesta se refiere, a pesar de las ventajas que nos ofrecen y que tecnológicamente han avanzado
mucho, aun no llegan a su meta ideal que sería lograr una brecha diente- restauración de cero esto
quiere decir una unión perfecta con los tejidos dentarios, una de las principales causas para que
esto suceda es la contracción de polimerización ya que produce tenciones internas que hacen que
aumente la brecha diente restauración y por lo tanto haya microfiltración (Diez, 2005).
Como mencionaron Rojas et all. (2011) la microfiltracion es la responsable de caries
secundarias, irritación pulpar y por lo tanto hipersensibilidad post-operatoria.
Uno de los tratamientos estético mas solicitados por los pacientes en la actualidad son los
clareamientos, que al utilizar sustancias químicas, como el peróxido de hidrógeno van a ser
procedimientos muy conservadores. En los últimos años se a buscado mejorar estos procesos
clareadores utilizando sustancias ácido abrasivas como pretratamiento para mejorar el mecanismo
de acción de estos agentes oxidantes , pero en vez de ser un beneficio para el tratamiento estas
sustancias han terminado por alterar la pulpa y la estructura superficial de las piezas dentarias
(Costa, Riehl, & Kina, 2010).
El hipoclorito de sodio es un poderozo desproteinizante ya que elimina proteinas que no son
eliminadas en el momento de la profilaxis, por lo que nos brinda una superficie dental porosa ideal
para la adhesión (Espinosa & Valencia, 2008), es por esto que la utilizamos como sustancia
potenciadora del proceso de clareamiento.
Existen algunos estudios que presentan el probable aumento que provocarian los tratamientos
clareadores en la microfiltración de restauraciones de resina compuesta. Es por esto que en el
presente estudio se determinó el grado de microfiltración en restauraciones de resina compuesta,
luego de someterlas a un tratamiento clareador con peróxido de hidrógeno y utilizando hipoclorito
de sodio como desproteinizante para potenciar el clareamiento.
El análisis de los resultados obtenidos en este estudio, mediante la prueba de Tukey, indica que
no existen diferencias significativas entre el grupo tratado solo con peróxido de hidrógeno y al
que le adicionamos hipoclorito de sodio antes de aplicar el peróxido de hidrógeno , por lo tanto
estos formarian un grupo aparte del grupo control.
Todos los grupos de este estudio manifestaron microfiltración pero con diferencias los grupos a
los cuales se aplico el sistema clareador Whiteness HPMAXX obtuvieron mayores valores de
microfiltración que el grupo control que no fue tratado.
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Los resultados obtenidos demuestran que los tratamientos clareadores a base de peróxido de
hidrégeno al 35% si afectan a la brecha diente-restauracion haciendo que esta aumente y por lo
tanto aumentando la microfiltración, estos resultados son similares a los expuestos por (Crim,
1992) en donde se concluyo que el peróxido de carbamida al 10% afectó negativamente el sellado
marginal de las restuaraciones en cavidades clase V hechas en premolares, al igual que en los
estudios realizados por (Ulupaki, Benderli, & Ulupaqui, 2003) en el cual se utilizó también
peróxido de carbamina al 10% en preparaciones cavitarias clase V de terceros molares restaurados
con resina compuesta, igualmente aquí se presentó incremento de la microfiltración. En cambio
Barkhordar, Kempler, & Plesh (1997) utilizaron peróxido de hidróegeno al 30% y (Rencoret et all,
2012) utilizó peróxido de hidrógeno al 35% en los dos estudios se obtuvieron aumentos en la
microfiltración. Con estas investigaciones podemos señalar que no hay cambios al utilizar peróxido
de hidrógeno o peróxido de carbamida ya que ambos clareadores aumentaron la microfiltración en
restauraciones de resina compuesta, por lo que concuerdan con los resultados obtenidos en el
presente estudio.
Sin embargo, existen estudios como los de Klukowska et all (2008) donde se utilizó peróxido
de hidrógeno al 14 y 38% y peróxido de carbamida al 20%, en donde no se encontró aumento de la
microfiltracion, la explicacion para estos resultados podria ser que al momento del corte de los
cuerpos de prueba se utilizó un micromotor con irrigación lo que posiblemente diluyo el agente
marcador, ademas que se seccionaron las piezas en 3 segmentos lo que ocasinaria mayor dilución
del agente marcador, a difencia de este estudio donde se realizaron los cortes sin irrigación alguna
pero de forma intermitente para que el calor no fracture las piezas.
Otra de las razones para los resultados de este estudio podria ser lo mencionado por Lima, y
otros (2008) y Durner, y otros (2011) que los enlaces polimericos que estan formando la estructura
de las resinas compuestas serian afectados por los agentes clareadores, lo que provocaria su
degeneración y afectaria a la unión de la resina con los tejidos dentarios y por lo tanto contribuiria
al aumento de la microfiltracon al utilizar el peróxido de hidrógeno al 35%.
Por otra parte debemos tener en cuenta que el presente estudio fue in-vitro por lo cual no
tenemos todas las condiciones presentes en la cavidad bucal como lo es la saliva que ayudaria a
remineralización y fortalecimiento de la unión diente restauración (Rencoret et al., 2012).
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CAPITULO V
5. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
5.1. Conclusiones
La utilización de hipoclorito de sodio como agente desproteinizante al 5.25% previo al
empleo de peróxido de hidrógeno como agente aclarador al 35% provoca el aumento de
la microfiltración en un 74,984%.
La utilización de un agente aclarador a base de peróxido de hidrógeno al 35% provoca un
aumento en la microfiltración de 70,034%.
Mediante la prueba de Tukey se demostró que los resultados entre estos dos grupos son
similares, y mayores que los resultados del grupo de control con (37,784%). Podemos decir
entonces que el peróxido de hidrógeno al 35% como agente aclarador provoca un aumento
significativo de la microfiltración en piezas restauradas con resina compuesta, y
descartamos que la aplicación previa de hipoclorito de sodio produzca una diferencia
importante en este aumento.
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5.2. Recomendaciones
Implementar consentimientos informados en la clínica de la facultad para los tratamientos
clareadores, donde se informe a los pacientes de las consecuencias de estos tratamientos
especialmente de los cambios de restauraciones de resina compuesta tras la realización de
estos procedimientos, ya que aceleran el envejecimiento natural de las resinas y considerar
que pueden estar afectadas por la microfiltración aunque clínicamente no se vean signos de
esto.
Se aconseja que en las clínicas de la facultad se realicen tratamientos clareadores solo a
pacientes que posean pocas restauraciones, y que dichas restauraciones sean cambiadas
aunque clínicamente no se vean afectadas después del tratamiento clareador.
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